Une technique pour effectuer la microscopie intravitale du ganglion inguinal (LN) est décrite. Cette technique permet en temps réel,<em> In vivo</em> Une étude de la microvascularisation des ganglions lymphatiques et de la structure à la fois lors de l'homéostasie et de l'infection. Cette technique peut être adaptée à des études de trafic cellulaire et à d'autres sites ganglionnaires.
Les ganglions lymphatiques (LN), situés à travers le corps, sont une composante intégrante du système immunitaire. Ils servent un site pour l'induction de la réponse immunitaire adaptative, et donc, le développement de cellules effectrices. En tant que tel, LNS sont la clé de la lutte contre les pathogènes envahisseurs et le maintien de la santé. Le choix de la LN à l'étude est dicté par l'accessibilité et le modèle désiré, le ganglion lymphatique inguinal est bien situé et supporte facilement les études de modèles biologiquement pertinentes de la peau et les muqueuses génitales d'infection.
La LN inguinale, comme tous les ganglions, dispose d'un réseau microvasculaire étendue lui fournissant le sang. En général, ce réseau microvasculaire comprend l'artériole l'alimentation principale de la LN que par la suite les branches et les aliments de haute veinules endothéliales (HEV). HEV sont spécialisés pour faciliter le trafic des cellules immunitaires dans le LN pendant les deux homéostasie et de l'infection. Comment réguler le trafic HEV dans la LN en vertu de ces circonstances est une zone d'exploration intense. La LN nourrissent artériole, a une influence directe sur l'amont HEV et l'alimentation principale de nutriments et de cellules du sang riche dans le LN. Par ailleurs, des changements dans l'artériole alimentation sont impliqués dans la facilitation de l'induction de la réponse immunitaire adaptative. Le système microvasculaire LN a une importance évidente dans le maintien d'un approvisionnement en sang optimal à la LN et de réglementer l'afflux de cellules immunitaires dans le LN, qui sont des éléments cruciaux dans la fonction LN et la réponse adéquate suite immunitaire.
La possibilité d'étudier la microvascularisation LN in vivo est la clé pour élucider la façon dont le système immunitaire et le système microvasculaire interagissent et s'influencent les uns les autres au sein de l'LN. Ici, nous présentons une méthode pour l'imagerie in vivo du ganglion lymphatique inguinal. Nous nous concentrons sur l'imagerie de la microvascularisation de la LN, en accordant une attention particulière aux méthodes qui assurent l'étude des vaisseaux sains, la capacité à maintenir l'imagerie des vaisseaux viables sur un certain nombre d'heures, et la quantification de l'ampleur du navire. Méthodes pour la perfusion de la microcirculation avec des médicaments vasoactifs ainsi que le potentiel de tracer et de quantifier le trafic cellulaire sont également présentés.
Microscopie intravitale de la LN inguinale permet une évaluation directe de la fonctionnalité microvasculaires et en temps réel de l'interface directe entre les cellules immunitaires, les LN, et la microcirculation. Cette technique pourrait être combinée avec des techniques immunologiques nombreuses et l'étiquetage des cellules fluorescentes ainsi que pour étudier la vascularisation manipulé de LNS autres.
Microscopie intravitale du ganglion lymphatique inguinal présentée ici permet de microvascularisation image du ganglion in-vivo. Ainsi, il facilite un moyen de direct, en temps réel d'observation. L'imagerie de la microvascularisation LN est un site unique qui permet d'étudier l'interface entre la réponse immunitaire et le système vasculaire. Utiliser cette préparation, l'accent peut être dirigé spécifiquement à la réponse immunitaire, des altérations dans le système vasculaire, ou à l'interaction entre les deux.
Comme avec toutes les approches expérimentales, la norme microscopie intravitale a la fois des avantages et des limites. Standard IVM, tels que la préparation est décrit ici peut facilement être modifié, et a déjà été démontré par les auteurs pour permettre à la microscopie à épifluorescence via l'introduction de colorants traceur fluorescent ou de populations de cellules étiquetées. Bien IVM norme ne donne pas la possibilité de imagerie tridimensionnelle et de traçage, comme serait donné par microscopie à deux photons ou d'angiographie, le suivi de la cellule est toujours réalisé en deux dimensions permettant de cellule à cellule et cellule-à-vasculaire à l'interaction observés et quantifiés et en liaison avec l'administration in vivo et coloration subséquente avec des anticorps fluorescents peuvent être utilisés pour fournir des données sur les protéines / marqueur d'expression en temps réel.
Notamment, les techniques d'imagerie alternatives nécessitent un environnement statique pour les images; de serrage de la zone chirurgicale ou l'ajout d'une lamelle sur une préparation plat est souvent nécessaire. Cette limite, voire élimine, la capacité à perfuser activement médiateurs vasculaires ou d'autres sur la préparation d'évaluer l'intégrité vasculaire et de la physiologie etc, ou l'utilisation d'autres techniques telles que des expériences menées dans la vasodilatation de la préparation IVM. Par ailleurs, la norme IVM ne nécessite pas une préparation complètement à plat et n'est pas affectée par le mouvement, tels que celui généré par la respiration de l'animal. Cela permet IVM standard à utiliser dans des zones plus chirurgical avec une plus grande reproductibilité. Ceci est illustré par la préparation ganglion lymphatique inguinal décrites ici. Etant donné la taille et la forme des ganglions lymphatiques, la préparation ne peut être faite à plat, sans blesser les tissus et l'emplacement du nœud donne lieu à des mouvements significatifs dus à la respiration des animaux. Ces questions seraient difficiles à surmonter par d'autres méthodes, mais sont facilement traitées en utilisant la préparation IVM standard décrit.
En résumé, la préparation détaillée ci-dessus peuvent être combinés avec n'importe quel nombre d'autres biochimiques, vasculaires et / ou techniques immunologiques telles que le transfert de parties de cellules activées ou étiquetés, l'induction de l'hypoxie, et la sur-expression de l'épuisement des médiateurs vasculaires. Cependant, des applications supplémentaires sont dépendants de la santé de la préparation initiale. Par conséquent, il est essentiel de toujours tester la santé de la vascularisation observée et évaluée. Points clés pour atteindre une préparation de la santé sont d'assurer la préparation est constamment perfusé avec PSS équilibré à la température du corps et de minimiser le contact et le stress placé sur la zone opérée pendant la chirurgie.
The authors have nothing to disclose.
Ce travail est financé par les Instituts canadiens de recherche en santé, la Fondation canadienne pour l'innovation, Université de British Columbia Centre for Blood Research et l'Université du Nord de la Colombie-Britannique.
Name of the reagent | Company |
---|---|
Sodium Bicarbonate | Sigma Aldrich |
Sodium Chloride | Sigma Aldrich |
Potassium Chloride | Sigma Aldrich |
Calcium Chloride Dihydrate | Sigma Aldrich |
Sodium Nitroprusside | Sigma Aldrich |
Phenylephrine | Sigma Aldrich |
Acetylcholine | Sigma Aldrich |
Magnesium chloride heptahydrate | Sigma Aldrich |
Sodium Pentobarbitol |