Aquí se describe un protocolo para el aislamiento y cultivo de las células endoteliales murinas pulmonar. Este método consiste en la disociación mecánica y enzimática del tejido pulmonar, así como un proceso de purificación de 2 pasos con anti-PECAM-1 y anti-ICAM-2 anticuerpos conjugados a perlas magnéticas, lo que produce una población pura de células endoteliales microvasculares su mayoría de origen.
Las células endoteliales proporcionar un modelo de investigación útil en muchas áreas de la biología vascular. Desde su primer aislamiento 1, las células endoteliales de vena umbilical (HUVEC) han demostrado que son convenientes, fáciles de obtener y la cultura, y por lo tanto son las células más estudiadas endoteliales. Sin embargo, la investigación se centró en los procesos como los demás la angiogénesis, la permeabilidad o muchos, las células endoteliales microvasculares (EC) es un modelo mucho más fisiológicamente relevantes para el estudio 2. Por otra parte, los CE aislado de ratones knock-out proporcionar una herramienta útil para el análisis de la ex vivo función de las proteínas. Varios métodos para aislar y microvascular cultura EC de origen diferentes han sido reportados hasta la fecha 3-7, pero el aislamiento constante y la cultura de la pura EC sigue siendo un gran problema técnico en muchos laboratorios. Aquí, ofrecemos un protocolo de paso a paso en un método fiable y relativamente fácil de aislar y cultivar células de los pulmones del ratón endotelial (MLECs). En este enfoque, el tejido pulmonar obtenido a partir de 6 – a 8 días de edad los cachorros primero se corta en pedazos, digeridos con colagenasa / dispasa (C / D) y la solución dispersa mecánicamente en una sola célula de la suspensión. MLECS se purificó a partir de la suspensión celular mediante la selección positiva con anti-PECAM-1 anticuerpo conjugado con Dynabeads utilizando un concentrador de partículas magnéticas (MPC). Tales células purificadas se cultivan en cultivo de tejidos recubiertos de gelatina (TC) los platos hasta que se hacen confluentes. En ese momento, las células se purifica utilizando Dynabeads junto a anti-ICAM-2 de anticuerpos. MLECs obtenidos con este protocolo muestran un fenotipo de adoquín, como se visualiza mediante microscopía óptica de contraste de fase, y su fenotipo endotelial ha sido confirmado mediante análisis de FACS con anticuerpos anti-VE-cadherina 8 y 9 VEGFR2 anti-anticuerpos y la tinción de inmunofluorescencia de VE-cadherina. En nuestras manos, este procedimiento de aislamiento de dos etapas consistente y fiable rendimiento de una población pura de MLECs, que puede ser más culta. Este método permitirá a los investigadores para aprovechar el creciente número de eliminatorias y ratones transgénicos que se correlacionan directamente en estudios in vivo con los resultados de los experimentos in vitro realizados en MLECs aisladas y por lo tanto ayudar a revelar los mecanismos moleculares de los fenotipos vasculares observados en vivo.
Microvascular EC han demostrado ser un modelo útil en muchas áreas de la biología vascular y se cree que son fisiológicamente más relevantes para el estudio (por ejemplo, la angiogénesis) que ampliamente estudiado HUVECs 3. Anteriormente, se ha informado de que microvascular EC se puede obtener de los riñones, el corazón, el tejido adiposo piel, retina, el cerebro, los gliomas, y también de pulmón 2, 4-7, 10, 11. Sin embargo, un método consistente y fiable para el aislamiento de complicaciones microvasculares EC sigue siendo necesaria. El procedimiento que aquí se presenta es una modificación de un protocolo previamente publicado 2, se diferencia de la mayoría de los procedimientos publicados, ya que utiliza los cachorros de animales adultos. Esto es crucial para el éxito de aislamiento como las células de los animales jóvenes tienen un potencial mayor proliferación y cultivos derivados de los tejidos tienden a producir un mayor número de células. Una semana de edad los animales parecen ser óptimo, pero ratones más jóvenes (de un día 4), también se puede utilizar. Además, el número mayor o menor de las crías puede ser utilizado en caso necesario, como hemos tenido éxito en aislar MLECs de un cachorro. Sin embargo, mientras que la escala hacia arriba o hacia abajo el proceso de aislamiento, la densidad celular recubrimiento debe permanecer sin cambios, ya que esto también es fundamental para la proliferación celular. El proceso de purificación de 2 pasos de MLECs usando perlas magnéticas conjugadas primero en anti-PECAM-1 y de anti-ICAM-2 anticuerpos es mucho más eficiente en la obtención de cultivos puros CE de los procedimientos de purificación se ha descrito anteriormente en un solo paso. Este protocolo elimina la necesidad de utilizar técnicas manuales muy laborioso, y centrifugación en gradiente de FACS menos eficientes de ordenación de las células de descartar la contaminación como los fibroblastos, las células sanguíneas y células musculares lisas. La población resultante LMCE se puede utilizar para el análisis in vitro de las respuestas de la angiogénesis, la permeabilidad vascular y la transmigración de leucocitos, cicatrización de heridas, así como el análisis bioquímico de las vías de señalización. Si es necesario, MLECs se puede platear en diferentes superficies, tales como fibronectina cubreobjetos recubiertos de gelatina o por inmunofluorescencia o matrices de electrodos para trans-endotelial de resistencia (TER) mediciones. Resultados obtenidos se pueden comparar directamente con los fenotipos observados en vivo, que es especialmente importante en el contexto de la creciente cantidad de octavos de final y las líneas de ratones transgénicos. La implementación exitosa de este método de análisis in vitro de los mecanismos celulares subyacentes defectos observados en vivo, ya se ha presentado 12.
The authors have nothing to disclose.
Esta investigación fue financiada en parte por la Asociación Americana del Corazón conceder 0950118G.to MC-W.
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Spring scissors | Fine Science Tools | 15032-13 | ||
forceps | Fine Science Tools | 11223-20 | ||
14G cannula | Fisher | 1482516N | ||
20 ml syringe | BD | 309661 | ||
BSA | Sigma-Aldrich | A7030-100G | ||
anti-rat IgG Dynabeads | Invitrogen | 110.35 | ||
Magnetic Particle Concentrator (MPC) | Invitrogen | 123-21D | ||
anti-mouse PECAM-1 antibody (CD-31) | BD Pharmingen | 553369 | ||
anti-mouse ICAM-2 antibody (CD-102) | BD Pharmingen | 553326 | ||
Collagenase/Dispase (C/D) | Roche Applied Science | 11097113001 | 100mg/ml stock solution can be prepared and stored at -20°C | |
DMEM | Cellgro Mediatech | 10-013-CV | ||
Bovine Skin Gelatin | Sigma-Aldrich | #G9391-100G | ||
Vasculife EnGS-Mv complete kit (VL) | Lifeline Cell Technology | LL0004 | ||
0.05% Trypsin/EDTA | Mediatech | 25-052-CI | ||
Cell strainer 70 μm nylon | Falcon | 352350 | ||
tissue culture flask 75 cm2 | TPP | 90076 |