Hier presenteren we de intracraniële injectie van AAV-vectoren voor TL-etikettering van neuronen en glia in de visuele cortex.
Intracraniële injectie van virale vectoren ontwikkeld om een fluorescerend eiwit tot expressie is een veelzijdige labeling techniek voor visualisatie van specifieke subsets van cellen in verschillende hersengebieden, zowel in vivo en in de hersenen secties. In tegenstelling tot de injectie van fluorescerende kleurstoffen, virale etikettering biedt targeting van individuele celtypen en is minder kostbaar en tijdrovend dan het vaststellen van transgene muis lijnen. In deze techniek wordt een adeno-geassocieerde virale (AAV) vector geïnjecteerd met behulp van intracranially stereotaxische coördinaten, een micropipet en een automatische pomp voor precieze aflevering van AAV naar het gewenste gebied met minimale schade aan het omringende weefsel. Injectie parameters kunnen worden aangepast aan de individuele experimenten door het aanpassen van het dier leeftijd bij injectie, injectie locatie, het volume van de injectie, de mate van injectie, AAV serotype en de promotor rijden genexpressie. Afhankelijk van de gekozen omstandigheden kunnen viraal geïnduceerde transgenexpressie laten visualisatie van groepen cellen, individuele cellen of fijne cellulaire processen, tot op het niveau van de dendritische spines. Het experiment hier getoond toont een injectie van double-stranded AAV uiten van groen fluorescerend eiwit voor de etikettering van neuronen en glia in de muis primaire visuele cortex.
Viraal gemedieerde genafgifte biedt veel mogelijkheden voor de studie van neurologische processen en behandeling van hersenaandoeningen 1,2,3. De grote veelzijdigheid van deze techniek kan ook worden benut om fluorescent label-cellen voor het afbeelden van zowel in vitro als in vivo 4. Hier laten we zien een gedetailleerde procedure voor de transductie van neuronen en glia in de muis visuele cortex met behulp van een double-stranded adeno-vereniging virus dat versterkt groen fluorescent ei…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd mogelijk gemaakt door subsidies van de NIH (EY012977), een Career Award in de Biomedische Wetenschappen aan de Burroughs Wellcome Fonds, de Stichting Whitehall, en de Sloan Foundation (AKM).
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Stoelting Mouse and Neonatal Rat Adaptor | Stoelting | 51625 | Regular stereotax for securing animals for surgery may be substituted | |
Extra Fine Bonn Scissors, 8.5cm, straight tip, cutting edge 13mm | Fine Science Tools | 14084-08 | ||
Eye Dressing Forceps, 10cm, tip width 0.5mm, curved | Fine Science Tools | 11152-10 | ||
Dumont #5/45 Forceps- Dumoxel Standard Tip, 11cm, angled | Fine Science Tools | 11251-35 | Extra-fine tipped forceps for performing craniotomy | |
Standard Pattern Forceps, straight, 2.5mmx1.35mmtip, 12cm | Fine Science Tools | 11000-12 | ||
Microtorque Control Box and Tech2000 handpiece | Ram Products, Inc. | TECH2000ON/OFF | Dental drill | |
Micro Drill Stainless Steel Burrs 1.4mm tip diameter | Fine Science Tools | 19008-14 | ||
Wiretrol micropipettes, to deliver 1-5 Ul | VWR International/ Drummond | 5-000-1001 or 53480-287 | ||
Mineral oil | VWR International | 29447-338 | ||
Manual Micromanipulator and Tilting Base (right-handed) | World Precision Instruments, Inc. | M3301-M3-R | Used for determining stereotaxic co-ordinates | |
UltraMicroPump (UMP3) (one) with SYS-Micro4 Controller | World Precision Instruments, Inc. | UMP3-1 | ||
Sutures | VWR International | 95056-952 | ||
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | ||
Tobradex | Available from your institution’s veterinary services |