في جراحة بقاء الرحم في الفئران تصاريح التلاعب في التعبير الجيني الجزيئي خلال التنمية. نحن هنا وصف استخدام الترددات العالية التصوير بالموجات فوق الصوتية لتوجيه حقن فيروسات نواقل في مخ الفأر الجنينية في اليوم (E) 9.5.
في جراحة بقاء الرحم في الفئران تصاريح التلاعب في التعبير الجيني الجزيئي خلال التنمية. ومع ذلك ، لأن جدار الرحم غير شفاف في وقت مبكر خلال مرحلة التطور الجنيني ، هي محدودة إلى حد كبير القدرة على استهداف أجزاء معينة من الجنين لmicroinjection. لحسن الحظ ، عالية التردد تصاريح التصوير بالموجات فوق الصوتية لتوليد الصور التي يمكن استخدامها في الوقت الحقيقي لتوجيه إبرة microinjection في منطقة الجنينية المثيرة للاهتمام. نحن هنا وصف استخدام التصوير لتوجيه مثل هذه الحقن لنواقل فيروسات في النظام البطين من الدماغ المقدم الفأر الجنينية في اليوم (E) 9.5. هذا الأسلوب يستخدم البطن للسماح بالوصول إلى أبواق الرحم ، والمصممة خصيصا لوحة تسمح الأجنة المضيفة أن يستحم في المياه المالحة في حين التقط هم وحقن. عملية جراحية ناجحة في كثير من الأحيان نتيجة في معظم أو كل من الباقين على قيد الحياة حقن الأجنة في أي نقطة زمنية لاحقة من الاهتمام (بشكل أولي أو بعد الولادة). ويمكن استخدام المبادئ الموصوفة هنا مع تعديلات طفيفة لإجراء الحقن في السائل سلوي E8.5 من الأجنة (العدوى مما يسمح على طول مدى الخلفي الأمامي من الأنبوب العصبي ، والتي لم تغلق حتى الآن) ، أو في نظام من البطين الدماغ في E10.5/11.5. وعلاوة على ذلك ، في منتصف العصبية الأعمار (~ E13.5) ، ويمكن استخدام التصوير بالموجات فوق الصوتية الحقن المباشر في مناطق الدماغ محددة لعدوى فيروسية أو زرع الخلايا. استخدام التصوير بالموجات فوق الصوتية لتوجيه الحقن في الرحم في الفئران هي تقنية قوية جدا تسمح للتلاعب الجزيئية والخلوية من أجنة فئران في السبل التي من شأنها أن يكون الأمر خلاف ذلك صعبة للغاية إن لم يكن مستحيلا.
ويمكن إجراء عمليات الحقن الفيروسية باستخدام الموجات فوق الصوتية من التوجيه E11.5 – E8.5 ، حيث يمكن حقنه فقط الكيس الذي يحيط بالجنين في E8.5 ، في حين يمكن حقنها كل من الكيس الذي يحيط بالجنين ونظام من البطين – E9.5 E11.5. عندما يقوم بشكل صحيح ، والجسيمات الفيروسية حقنها في نظام التوجيه باستخدام الموجات فوق الصوتية البطين الحصول على الخلايا المبطنة للنظام البطين ، وبالتالي يمكن أن تصيب مختلف الهياكل الدماغ المقدم من الدماغ المتوسط (اللحاء الجديد ، العقد القاعدية ، الدماغ البيني ، والعين ، الخ.) والدماغ المؤخر (Figure1C). فيروس يحقن في الكيس الأمنيوسي لديه حق الوصول إلى الخلايا على السطح الخارجي للجنين. بالإضافة إلى الفيروسات ، ويمكن أيضا توجيه الموجات فوق الصوتية يمكن استخدامها لحقن الخلايا في الأجنة النامية. ولذلك ، فإن هذا الأسلوب يوفر خيارات متعددة للاختيار من بينها (التنموية الفترة الزمنية ، والفيروسات ، هيكل / الخلايا) عند تصميم التجربة.
فمن الأهمية بمكان أن الفيروس أو حقن الخلايا التعبير عن مراسل لسهولة تحديد الخلايا المصابة / حقن. تاريخيا ، استخدمت الإنسان الفوسفاتيز القلوية المشيمة (PLAP) أو GFP. من التجربة ، وجدنا PLAP يمكن أن تكون مفيدة جدا الجين مراسل لأن كلا PLAP النسيجية وتلطيخ المناعى غلة خلية واحدة حادة ومتميزة وصمة عار أن يسمح احد لتحليل مورفولوجيا الخلايا والموقف ، وإجراء تحليل نسيلي. منذ الفيروسية التعبير GFP يمكن باهتة ، قد لا يكون المراسل GFP مثالية للتلوين الأنسجة ، ولكن من المفيد إذا كان أحد يريد الحصول على الخلايا وحيدة الخلية عن طريق الفرز مضان تنشيط (FACS).
The authors have nothing to disclose.
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Micromanipulator | Narishige | 91084361683D | ||
HI-7 pipette holder | Narishige | 9108436141 | ||
10 mm support arm | Carl Zeiss | 9108436206 | ||
IP iron base plate | Carl Zeiss | 9108436167 | ||
CI-1 connector for pipette holder | Carl Zeiss | 9108436257 | ||
1mm ID tubing | Carl Zeiss | 911013 | ||
3-way luer lock stopcock (pkg 10) | Carl Zeiss | K420163-4503 | ||
Motor controller, 2-4 axes | Newport | 860-c2 | ||
Joystick | Newport | PMC200-J | ||
Micrometer adapter | Newport | ADAPT-BM17-375 | ||
Motorized drive | Newport | CMA-25CC | ||
Cable assembly | Newport | 860I-10 | ||
25 mm translation stage | Newport | UMR8-25 | ||
Micrometer | Newport | BM17-25 | ||
Base plate | Newport | M-PBN8 | ||
Inner mounting bracket | Newport | EQ80-I | ||
Outer mounting bracket | Newport | EQ80-E | ||
Man. infusion/withdrawl pump | Stoelting | 51222 | ||
25 μl microsyringe | Stoelting | 51113 | ||
24″x12″x0.5″ metric board plate | Edmund | NT03-640 | ||
Set of self-adjusting feet | Edmund | NT34-841 | ||
Bar-type lens holder | Edmund | NT03-669 | ||
Right angle post clamp | Edmund | NT53-357 | ||
2″ post holder | Edmund | NT03-646 | ||
4” steel post | Edmund | NT36-499 | ||
6” steel post | Edmund | NT36-503 | ||
12/pk set screws, 1/4-20 x 1/2″ | Edmund | NT03-644 | ||
Additional Materials: | ||||
PBS, pH7.4 | Invitrogen | 10010049 | ||
Slide warmer | Fisher Scientific | Numerous options | ||
Double Edge Razor Blades | Electron Microscopy Sciences | 72000 | ||
Borosilicate Glass O.D: 1.0mm, I.D.: 0.05mm | Sutter Instruments | B100-50-10 | ||
1cc Insulin Syringe U-100 27G5/8 | Becton Dickinson | 329412 | ||
Autoclip Applier | Becton Dickinson | 427630 | ||
Autoclips, 9mm (to close skin incision) | Becton Dickinson | 427631 | ||
5.0 Silk sutures | Fisher | S-1173 | ||
Sterilube ophthalmic ointment | Fera pharmaceuticals | 48102-012-35 | ||
MB-10 or equivalent disinfectant | Quip labs | |||
10% bleach | Multiple sources |
“One of the following ultrasound backscatter microscopes can be used for this procedure. Although in the video the P40 from Paradigm-Medical is used, the P40 is no longer commercially available, and has been replaced by the P60, which is similarly priced and can be used for the same application. The additional materials described for stage construction are for use with Paradigm-Medical device(s). The Vevo 2100 comes with equipment for small animal imaging.
Anesthetic and Analgesic
The Nembutal solution (50 mg/mL injectable sodium pentobarbital; produced by Abbott laboratories) can be obtained from Bulter Schein Animal Health. Note that this is a schedule II controlled substance and requires a Drug Enforcement Agency (DEA) license to obtain.
The Bupivacaine solution (0.25%; produced by Hospira, Inc, among others) can be obtained from a number of distributors, including Moore Medical.