Summary

蛍光In Situハイブリダイゼーションによるホルマリン固定パラフィン包埋サンプルにおける遺伝子増幅のロバスト検出

Published: July 12, 2024
doi:

Summary

このプロトコールは、ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織標本の遺伝子増幅を視覚化するための再現性のある方法を提供します。

Abstract

染色体外DNA(ecDNA)などの限局性遺伝子増幅は、がんの発生と治療抵抗性に重要な役割を果たします。シーケンシングベースの方法論によりecDNAの偏りのない同定が可能になりますが、蛍光 in situ ハイブリダイゼーション(FISH)などの細胞遺伝学ベースの手法は、臨床検体中のecDNAを同定するための時間と費用対効果に優れています。ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織サンプルへのFISHの適用は、特に生存可能な標本が核型検査に利用できない場合に、増幅された遺伝子を検出するためのユニークな方法を提供します。ただし、この手法にはコンセンサス手順が不足しています。このプロトコルは、このプロトコルが克服し標準化することを目指している独自の課題を提示するFFPE組織サンプル中のecDNAを含む遺伝子増幅を検出するためにFISHを実施するための包括的で完全に最適化された段階的な指示を提供します。このプロトコルに従うことで、研究者は遺伝子増幅を評価するための高品質なイメージングデータを再現性よく取得することができます。

Introduction

限局性がん遺伝子増幅の研究は、がんの形成、進行、および治療抵抗性を促進するため、非常に重要です1。重要なことに、がん遺伝子と免疫調節遺伝子は染色体外DNA(ecDNA)として増幅する可能性があり、その非対称遺伝はがんの遺伝的不均一性を促進します2,3。ecDNAは、治療抵抗性と好ましくない臨床転帰に関連しています4,5,6

ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織標本は、病理学研究室の膨大なアーカイブリソースであり、レトロスペクティブ研究のための豊富な情報を提供します。しかし、PCRやシーケンシングによりFFPE検体から分子データを抽出することは、固定中の核酸の断片化、分解、架橋などの理由から困難です7。FFPE組織の分子解析に利用できる一連の技術の中で、蛍光 in situ ハイブリダイゼーション(FISH)は特定のDNA配列の視覚化に有効であることが証明されています8

現代の分子診断技術の進歩にもかかわらず、FISHがシングルセルレベルで遺伝子増幅を視覚化および定量化する能力は、腫瘍形成と臨床転帰の根底にある分子メカニズムに関する貴重な洞察を提供します。目的の標的遺伝子に相補的な蛍光標識プローブを使用することにより、FISHはがん遺伝子の局在を便利に解決し、他の技術では不可能または高価である個々の細胞内のがん遺伝子増幅(ecDNAなど)の形態を推測できます。したがって、FISHは、腫瘍の不均一性とクローン進化を評価するための経済的な方法を提供します9。さらに、自動化、イメージング、および計算解析の進歩により、FISHデータのハイスループット解析が容易になり、大規模組織コホート10にわたる遺伝子増幅の堅牢な定量が可能になりました。

しかし、FISHをFFPE組織に適用すると、架橋アーチファクトやバックグラウンドの自家蛍光など、固有の課題があります。これらの障害を克服するには、正確で再現性のある結果を確保するために、各手順を慎重に最適化する必要があります。この論文では、FISHを適用してFFPE組織サンプルの遺伝子増幅を調査するための、完全に最適化されたステップバイステップのプロトコルを提供します。ERBB2(HER2)遺伝子座を標的とするプローブを使用して、FISHが乳がん患者のFFPEサンプルのERBB2増幅状態を堅牢に検出できることを実証します。ERBB2がecDNAとして増幅されるかどうかを推定することさえ可能です。既存の文献と実験結果を統合することにより、FISHベースの分析の方法論的考慮事項、技術的課題、および潜在的な落とし穴を解明します。また、さまざまながん種における遺伝子増幅プロファイリングの臨床的関連性についても議論し、その予後的意義と個別化治療戦略の可能性を強調します。

要約すると、この論文は、FFPE組織標本の遺伝子増幅を研究するための貴重なツールとしてのFISHの重要性を強調し、腫瘍生物学への比類のない洞察を提供し、腫瘍学における臨床的意思決定を導きます。FISHベースの分析は、補完的な分子アッセイによる継続的な改良と統合により、がんの病因に関する理解を深め、精密医療の時代における患者の転帰を改善する態勢を整えています。

Protocol

この研究プロトコルは、テキサス大学サウスウェスタンメディカルセンターの治験審査委員会(IRB)によって承認されました。手術前にすべての患者からインフォームドコンセントが得られました。 1. 試薬・材料調製 8.212 mLのHCl(37% w/wまたは12.1 N)を491.788 mLのddH2Oにゆっくりと加えて、ドラフト内で0.2 Nの塩化ナトリウム(HCl)溶液を調製します。注意: 水に酸をゆっくりと加えます。酸に水を加えないでください。 1.47 gのクエン酸三ナトリウム(二水和物)を400 mLのddH2Oに溶解して、10 mMクエン酸溶液(pH 6.0)を調製します。HClを使用してpH 6.0に調整し、最終容量をddH2Oで500 mLにします。バッファーをRTで保存します。 100 μL の Tween-20 を 900 μL の ddH2O に加えて、10% Tween-20 溶液を調製します。 5 mLのIGEPAL CA-630を45 mLのddH2Oに加えて、10% IGEPAL溶液を調製します。 44.1 gの三ナトリウム(二水和物)と87.65 gの塩化ナトリウム(NaCl)を900 mLのddH2Oに溶解して、20x SSC(pH 7.0、3 M NaCl、0.3 Mクエン酸ナトリウム)溶液を調製します。HClを使用してpH 7.0に調整し、最終容量をddH2Oで1000 mLにします。緩衝液をRTで保存します。 100 mLの20x SSCを900 mLのddH2Oに加えて、2x SSC溶液を調製します。必要に応じて、0.5mLの防腐剤を加えます(材料表)。RTで保管してください。 910 μL の ddH2O、500 μL の 20x SSC、50 μL の 10% Tween-20、40 μL の RNase A、1 mL の 50% デキストラン硫酸塩、および 2.5 mL のホルムアミドを混合して、プローブハイブリダイゼーションバッファーを調製します。1mLに分量し、-20°Cで保存します。 100 mLの2x SSC、15 mLの10% IGEPAL、および385 mLのddH2Oを混合して、0.3% IGEPAL溶液で0.4x SSCを調製します。 5 mLの10% IGEPALを495 mLの2x SSC溶液に加えて、0.1% IGEPAL溶液で2x SSCを調製します。RTで保管してください。 使用前に、1 μLのProteinase Kを99 μLのTris-EDTAバッファーに加えて、Proteinase K消化バッファーを新たに調製します。 1 mgのDAPIを1 mLのddH2Oに溶解して、1 mg/mLのDAPI保存ストックを調製します。-20°Cで光を避けて保存します。2x SSC溶液999 μLにDAPI保存ストック1 μLを加えて、DAPIワーキング溶液を調製します。使用するまで光を避けてください。 2.サンプルの前処理 注:ここで使用しているスライドには試験片が含まれています。 スライドを60〜90°Cで20分間または一晩熟成させます(図1)。注:このステップにより、パラフィンの融解が容易になります。通常、20分の加熱で十分です。スケジュールに合わせて一晩に延長することができます。 スライドをキシレンまたはその代替品にCoplinジャーに10分間浸して脱パラフィンします。新鮮なキシレンまたはその代替品でこの手順を繰り返します。Coplinジャーで次のすべての前処理および洗浄手順を実行します。注:キシレン代替品は、キシレンの安全で環境に優しい代替品です。代替品の1つ( 材料の表を参照)は、キシレンと同等に、またはそれ以上に機能します。キシレン代替品はキシレンよりも臭いが少ないですが、ドラフト内での使用をお勧めします。キシレン代替品にアクセスできない場合、すべての手順は、変更なしでキシレンベースの脱パラフィン処理に適合します。 キシレン代替品を100%エタノールで5分間洗い流します。 スライドを70%エタノール浸漬で5分間再水和します。 スライドを0.2 N塩酸(HCl)に室温で20分間浸漬します。注:HClは、塩基性核タンパク質などの酸可溶性タンパク質を効果的に抽出して、FISHプローブ11へのDNAアクセシビリティを改善します。 スライドを10 mMの高温クエン酸溶液に浸し、90〜95°Cで20分間インキュベートします。注:高温下でのクエン酸処理は、同様に酸可溶性タンパク質を抽出します。どちらの酸処理も、細胞外マトリックスタンパク質を抽出して自家蛍光を減少させると考えられています12。クエン酸溶液をスライドに塗布する前に、目的の温度範囲に予熱することをお勧めします。電子レンジはそのための便利な方法です。真空調理器などのウォーターバスは、高温インキュベーションに最も効果的で経済的なソリューションです。 スライドを2x SSCで短時間すすぎ、pHを中和します。 100-200 μL(切片のサイズによっては組織を完全に覆う程度)のProteinase K消化バッファーを添加して組織を消化し、室温で1分間インキュベートします。注:プロテイナーゼK消化は、FISHプローブのアクセシビリティをさらに向上させ、自家蛍光を減少させます。消化時間は、組織の種類に基づいて最適化する必要があります。ほとんどの場合、1分間の消化で十分です。過剰消化はハロー状の核形態につながり、消化時間を短縮する必要があります。 プロテイナーゼKの消化を直ちに停止し、スライドを70%エタノールに2分間浸漬して脱水し、続いて85%および100%エタノール処理をそれぞれ2分間行います。 3. FISHとイメージング 2 μL の FISH プローブストックを 8 μL のハイブリダイゼーションバッファーで希釈して FISH ハイブリダイゼーションミックスを調製し、スライドに適用します。サンプルをカバースリップで覆います。注:使用されるFISHプローブの合計ストックは、画質に応じて0.5〜4μLの範囲です。信号が低すぎる場合は、プローブ入力を増やします。バックグラウンドが高すぎる場合、特に核の外側に蛍光破片が観察される場合は、FISHプローブの入力を減らしてください。ハイブリダイゼーションバッファーは、市販のプローブに付属するものでも、セクション1のように調製したものでもよい。 スライドをスライドモートハイブリダイゼーションシステムなどのホットプレートに置き、DNAを75°Cで2〜5分間変性させます。次に、スライドを37°Cに設定された別のホットプレートに移し、一晩でハイブリダイズします。注意: ホットプレートにハイブリダイゼーション中に湿度を維持するためのウォータートレイまたはリザーバーがある場合、カバースリップをゴムセメントでシールする必要はありません。 ハイブリダイゼーション後、スライドを0.3% IGEPAL CA-630洗浄バッファーを含む40〜60°C温めた0.4x SSCに浸し、カバースリップを慎重に取り外します。暗闇の中でそれぞれ5分間、最初の10〜15秒間攪拌しながら、洗浄を2回続けます。注意: スライドを洗浄バッファーに浸すと、カバースリップが静かに解放されます。 スライドをSSCで0.1%IGEPAL CA-630を使用して、暗闇のRTで5分間洗浄し、最初の10〜15秒間攪拌します。 自家蛍光をクエンチするには、スライドを自家蛍光クエンチングキット( 材料表を参照)で150 μLの試薬(50 μL + 50 μL + 50 μL の試薬A、B、C)を2〜5分間適用し、2x SSCで5分間洗浄します。注: これはオプションの手順です。組織の自家蛍光は、主にコラーゲンやエラスチンなどの細胞外マトリックス成分に由来します。また、リソソームやミトコンドリアにはリポフスチン、NADPH、フラビン補酵素が含まれているため、その影響も大きく受けます。アルデヒドの固定と血球の存在も自家蛍光を増加させる可能性があります13,14。 DAPIでスライドを10分間染色します。スライドを2x SSCバッファーで5分間すすぎます。注:スライドを自家蛍光クエンチングキットで処理しない場合、DAPI染色は2分に短縮できます。 スライドを脱イオン水にすばやく1秒以内に浸し、ペーパータオルで余分な水分を吸収してすばやく乾かします。注: これはオプションの手順です。脱イオン水処理は、スライド上のSSCバッファーの塩結晶の堆積を効果的に防止し、イメージング品質を向上させます。しかし、このような低イオン条件下では、FISHプローブと標的DNAとの間の水素結合が弱まり、プローブの解離やシグナル損失につながります。したがって、水処理ステップを非常に短時間維持することが重要です。 スライドを乾燥させ、色あせ防止封入剤でマウントします。イメージングする前に、カバーガラスをマニキュアで密封します。注:スライドを自家蛍光消光試薬で処理する場合は、製造元の指示に従って、スライドに退色防止封入剤を封入してください。さらに、封入剤の種類、硬化性または非硬化性に応じて、サンプルを1〜24時間硬化させてから、シールおよびイメージングする必要があります。イメージングに最適な屈折率を達成するために、サンプルを少なくとも一晩硬化させることをお勧めします。 60×オイルレンズを使用して蛍光シグナルを捕捉します。DAPIチャンネルを使用してフォーカスを調整します。複数のZスタックを取得するようにしてください。通常、1μm間隔で5〜10個のzスタックで十分です。最高の解像度を達成するために、最大の3D投影を実行します。デコンボリューションまたはその他の背景クリアリングアルゴリズムを適用して、画質をさらに向上させます。

Representative Results

HER2陽性乳がんとHER2陽性乳がんと陰性乳がんの両方からのFFPEサンプルを使用して、FISHイメージングの結果を実証しました。 HER2 ( ERBB2 遺伝子によってコードされる)の増幅は、HER2分子標的療法の利用可能性と有効性により、好ましいマーカーです。それどころか、HER2、エストロゲン受容体(ER)、およびプロゲステロン受容体(PR)の発現を欠くトリプルネガティブ乳がんの患者は、治療の選択肢が限られているため、転帰が悪いという課題に直面しています。したがって、 HER2 の状態を決定することは、乳がんの研究と治療において非常に重要です15。 トリプルネガティブ乳がんサンプルでは、ほとんどの核が HER2/ERBB2 FISHシグナルを表す2つの異なるドットを示しています。一部の核は、セクショニングバイアスによりドットが1つしかない場合があります(図2左)。対照的に、HER2陽性のサンプルは、2つの異なるパターンで豊富なFISHシグナルを示します。1つのパターンは、原子核全体に点在していることを示しています(図2中央)。このパターンは、ecDNAがユニークで組織化された核領域を占有しない可能性があるため、ecDNAの形態の特徴である16。さらに、有糸分裂中のecDNAの非対称的な偏属は、コピー数の変動を引き起こし、核間のシグナルの不均一性につながります17。一部の核は時折クラスターを示すことがあり、これはecDNAハブ18 を示しています(図2、右)。他のタイプのHER2増幅は、主に棒状の凝縮凝集体を示します。この形態は、均質染色領域(HSR)19 や切断融合ブリッジ(BFB)サイクル20など、染色体に基づく増幅を示している可能性が高い。特に、ecDNA、HSR、およびBFB増幅は、同じ核内で共存できます。したがって、焦点増幅の形態を推測するために、複数の核を調べることをお勧めします。 図 1: FFPE サンプルの FISH の概略図。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。 図2:乳がんFFPEサンプルの代表的なFISH画像。 倍率:600倍。スケールバー:10μmこの 図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Discussion

FISHは、細胞遺伝学的診断のための迅速で手頃な価格のオプションです。特に、ecDNAががんに存在するかどうかを判断する際には、FISHの証拠が依然としてゴールドスタンダード1です。FFPE組織中のFISHは、患者の生検標本の遺伝子状態を迅速に決定することができるため、より迅速な診断と疾患の進行全体にわたる変化の追跡が可能になります。この手法は、病理学のためにすでに収集されている臨床サンプルの検査に特に価値があります。

このプロトコルには、いくつかの重要な手順が含まれます。最初のステップは、徹底的な脱パラフィンです。残留パラフィンは、FISHのハイブリダイゼーションを阻害する可能性があります。ステップ2後もサンプルがワックス状に見える場合は、新鮮なキシレンまたはその代替品で再度処理する必要があります。

第二に、タンパク質の抽出と消化が重要です。これらのプロセスは、FISHプローブへのDNAのアクセス性を高めるだけでなく、自家蛍光を大幅に低減します。このプロトコルには、3つの除タンパクステップが含まれています。0.2 N HClと10 mMのクエン酸による治療は簡単ですが、プロテイナーゼKの消化には最適化が必要な場合があります。過剰消化は、プロテイナーゼKを使用する際の最も一般的なエラーであり、ハロー状の核をもたらします。消化時間を短縮すると、核の形態が改善されます。さらに、最初のサンプルと最後のサンプルの間の時間差を最小限に抑えるために、4つ以上のサンプルを同時に分解しないことをお勧めします。無傷の核でさえ、高倍率および高解像度の顕微鏡下ではハローとして現れる可能性があることに注意することが重要です。これは、原子核が同じ焦点面上にないためです。したがって、複数のZスタックを取り、最大投影を実行して核の形態を検査することをお勧めします。

最後に、自家蛍光の消光をお勧めします。酸抽出とプロテイナーゼK消化はタンパク質由来のバックグラウンドを大幅に低減できますが、蛍光代謝物は依然としてイメージング品質に影響を与える可能性があります。

FISHは、局所的な遺伝子増幅の同定において比類のない空間分解能を提供しますが、限界があります。まず、PCRや次世代シーケンシング(NGS)ベースのアプローチと比較して、コンテンツとスループットが低いです。通常、1枚のスライドに異なる色の1〜3個のFISHプローブを、特殊な機器なしで1枚のスライドに適用できます。それにもかかわらず、自動化技術の進歩により、 in situ sequencing21のようなハイコンテントでハイスループットなFISHが実現可能になりました。次に、FISHプローブの設計には事前情報が必要です。がんにおける再発性焦点増幅事象を特定するための継続的な取り組みにより、実験室および臨床アプリケーション向けに事前に設計されたFISHパネルの作成が可能になりました。例えば、MYCファミリーのがん遺伝子は、小細胞肺がんにおいて化学療法抵抗性を媒介するためにecDNAとして頻繁に増幅されます。したがって、MYC、MYCL、およびMYCN遺伝子を標的とするFISHパネルは、生検における治療反応の決定を迅速化できます。それに比べて、NGSは、関心のある遺伝子のより偏りのないスクリーニングを可能にします。しかし、NGSベースの技術の中では、計算コストの高い解析22 による全ゲノムシーケンシングのみがecDNAを特徴づけることができる。

要約すると、FFPEサンプルの焦点遺伝子増幅を調査するための堅牢で包括的な手順を示します。FISHのシグナルパターンを調べることで、遺伝子座が増幅されるかどうか、またどのように増幅されるかが明確に明らかになります。間期核の画像解析23 に機械学習を統合して、コピー数や増幅形態(染色体またはecDNA)に関する細胞遺伝学的情報を抽出することで、分子診断プロセスの効率化とがんの発症メカニズムの理解が深まると期待しています。

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SWは、テキサス州の癌予防研究所(RR210034)の学者であり、支援を受けています

Materials

DAPI Tocris Bioscience 5748 Nucleus staining
Dextran sulfate 50% solution EMD Millipore Sigma S4030 Probe hybridization buffer
ERBB2 (HER2) FISH Probe Empire Genomics ERBB2-20-RE FISH probe
Ethanol Decon Labs 2716 Dehydrating and hydrating tissue
Formamide Thermo Scientific Chemicals 205821000 Probe hybridization buffer
Formula 83 (Xylene substitute) CBG Biotech CH0104A Removing paraffin
Hydrochloric acid Fisher Chemical A144-500 Sample pretreatment
IGEPAL CA-630  Thermo Scientific Chemicals J19628K2 Slide washing
Proclin 300 Sigma-Aldrich 48914-U Preservative for SSC buffer (optional)
Proteinase K (800 units/mL) New England Biolabs P8107S Protein digestion
RNase A (20 mg/mL) New England Biolabs T3018L Probe hybridization buffer
Slide Moat Hybridization System Boekel Scientific 280001 Sample denature and hybridization. Alternative hot plates are acceptable.
Sodium chloride Fisher Chemical S2713 SSC buffer
Sodium citrate dihydrate Fisher BioReagents FLBP3271 SSC buffer and sample pretreatment
Tris-EDTA (TE) buffer Fisher BioReagents BP2473500 Proteinase K digestion buffer
Tween-20 Fisher BioReagents BP337-500 Probe hybridization buffer
Vectashield antifade mounting media Vector Laboratories  H190010 Slide mounting
Vector TrueVIEW Vector Laboratories  SP8400 Autofluorescence quenching kit

Referências

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Citar este artigo
Gilbreath, C., Peng, Y., Wu, S. Robust Detection of Gene Amplification in Formalin-Fixed Paraffin-Embedded Samples by Fluorescence In Situ Hybridization. J. Vis. Exp. (209), e66978, doi:10.3791/66978 (2024).

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