このプロトコールは、ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織標本の遺伝子増幅を視覚化するための再現性のある方法を提供します。
染色体外DNA(ecDNA)などの限局性遺伝子増幅は、がんの発生と治療抵抗性に重要な役割を果たします。シーケンシングベースの方法論によりecDNAの偏りのない同定が可能になりますが、蛍光 in situ ハイブリダイゼーション(FISH)などの細胞遺伝学ベースの手法は、臨床検体中のecDNAを同定するための時間と費用対効果に優れています。ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織サンプルへのFISHの適用は、特に生存可能な標本が核型検査に利用できない場合に、増幅された遺伝子を検出するためのユニークな方法を提供します。ただし、この手法にはコンセンサス手順が不足しています。このプロトコルは、このプロトコルが克服し標準化することを目指している独自の課題を提示するFFPE組織サンプル中のecDNAを含む遺伝子増幅を検出するためにFISHを実施するための包括的で完全に最適化された段階的な指示を提供します。このプロトコルに従うことで、研究者は遺伝子増幅を評価するための高品質なイメージングデータを再現性よく取得することができます。
限局性がん遺伝子増幅の研究は、がんの形成、進行、および治療抵抗性を促進するため、非常に重要です1。重要なことに、がん遺伝子と免疫調節遺伝子は染色体外DNA(ecDNA)として増幅する可能性があり、その非対称遺伝はがんの遺伝的不均一性を促進します2,3。ecDNAは、治療抵抗性と好ましくない臨床転帰に関連しています4,5,6。
ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織標本は、病理学研究室の膨大なアーカイブリソースであり、レトロスペクティブ研究のための豊富な情報を提供します。しかし、PCRやシーケンシングによりFFPE検体から分子データを抽出することは、固定中の核酸の断片化、分解、架橋などの理由から困難です7。FFPE組織の分子解析に利用できる一連の技術の中で、蛍光 in situ ハイブリダイゼーション(FISH)は特定のDNA配列の視覚化に有効であることが証明されています8。
現代の分子診断技術の進歩にもかかわらず、FISHがシングルセルレベルで遺伝子増幅を視覚化および定量化する能力は、腫瘍形成と臨床転帰の根底にある分子メカニズムに関する貴重な洞察を提供します。目的の標的遺伝子に相補的な蛍光標識プローブを使用することにより、FISHはがん遺伝子の局在を便利に解決し、他の技術では不可能または高価である個々の細胞内のがん遺伝子増幅(ecDNAなど)の形態を推測できます。したがって、FISHは、腫瘍の不均一性とクローン進化を評価するための経済的な方法を提供します9。さらに、自動化、イメージング、および計算解析の進歩により、FISHデータのハイスループット解析が容易になり、大規模組織コホート10にわたる遺伝子増幅の堅牢な定量が可能になりました。
しかし、FISHをFFPE組織に適用すると、架橋アーチファクトやバックグラウンドの自家蛍光など、固有の課題があります。これらの障害を克服するには、正確で再現性のある結果を確保するために、各手順を慎重に最適化する必要があります。この論文では、FISHを適用してFFPE組織サンプルの遺伝子増幅を調査するための、完全に最適化されたステップバイステップのプロトコルを提供します。ERBB2(HER2)遺伝子座を標的とするプローブを使用して、FISHが乳がん患者のFFPEサンプルのERBB2増幅状態を堅牢に検出できることを実証します。ERBB2がecDNAとして増幅されるかどうかを推定することさえ可能です。既存の文献と実験結果を統合することにより、FISHベースの分析の方法論的考慮事項、技術的課題、および潜在的な落とし穴を解明します。また、さまざまながん種における遺伝子増幅プロファイリングの臨床的関連性についても議論し、その予後的意義と個別化治療戦略の可能性を強調します。
要約すると、この論文は、FFPE組織標本の遺伝子増幅を研究するための貴重なツールとしてのFISHの重要性を強調し、腫瘍生物学への比類のない洞察を提供し、腫瘍学における臨床的意思決定を導きます。FISHベースの分析は、補完的な分子アッセイによる継続的な改良と統合により、がんの病因に関する理解を深め、精密医療の時代における患者の転帰を改善する態勢を整えています。
FISHは、細胞遺伝学的診断のための迅速で手頃な価格のオプションです。特に、ecDNAががんに存在するかどうかを判断する際には、FISHの証拠が依然としてゴールドスタンダード1です。FFPE組織中のFISHは、患者の生検標本の遺伝子状態を迅速に決定することができるため、より迅速な診断と疾患の進行全体にわたる変化の追跡が可能になります。この手法は、病理学のためにすでに収集されている臨床サンプルの検査に特に価値があります。
このプロトコルには、いくつかの重要な手順が含まれます。最初のステップは、徹底的な脱パラフィンです。残留パラフィンは、FISHのハイブリダイゼーションを阻害する可能性があります。ステップ2後もサンプルがワックス状に見える場合は、新鮮なキシレンまたはその代替品で再度処理する必要があります。
第二に、タンパク質の抽出と消化が重要です。これらのプロセスは、FISHプローブへのDNAのアクセス性を高めるだけでなく、自家蛍光を大幅に低減します。このプロトコルには、3つの除タンパクステップが含まれています。0.2 N HClと10 mMのクエン酸による治療は簡単ですが、プロテイナーゼKの消化には最適化が必要な場合があります。過剰消化は、プロテイナーゼKを使用する際の最も一般的なエラーであり、ハロー状の核をもたらします。消化時間を短縮すると、核の形態が改善されます。さらに、最初のサンプルと最後のサンプルの間の時間差を最小限に抑えるために、4つ以上のサンプルを同時に分解しないことをお勧めします。無傷の核でさえ、高倍率および高解像度の顕微鏡下ではハローとして現れる可能性があることに注意することが重要です。これは、原子核が同じ焦点面上にないためです。したがって、複数のZスタックを取り、最大投影を実行して核の形態を検査することをお勧めします。
最後に、自家蛍光の消光をお勧めします。酸抽出とプロテイナーゼK消化はタンパク質由来のバックグラウンドを大幅に低減できますが、蛍光代謝物は依然としてイメージング品質に影響を与える可能性があります。
FISHは、局所的な遺伝子増幅の同定において比類のない空間分解能を提供しますが、限界があります。まず、PCRや次世代シーケンシング(NGS)ベースのアプローチと比較して、コンテンツとスループットが低いです。通常、1枚のスライドに異なる色の1〜3個のFISHプローブを、特殊な機器なしで1枚のスライドに適用できます。それにもかかわらず、自動化技術の進歩により、 in situ sequencing21のようなハイコンテントでハイスループットなFISHが実現可能になりました。次に、FISHプローブの設計には事前情報が必要です。がんにおける再発性焦点増幅事象を特定するための継続的な取り組みにより、実験室および臨床アプリケーション向けに事前に設計されたFISHパネルの作成が可能になりました。例えば、MYCファミリーのがん遺伝子は、小細胞肺がんにおいて化学療法抵抗性を媒介するためにecDNAとして頻繁に増幅されます。したがって、MYC、MYCL、およびMYCN遺伝子を標的とするFISHパネルは、生検における治療反応の決定を迅速化できます。それに比べて、NGSは、関心のある遺伝子のより偏りのないスクリーニングを可能にします。しかし、NGSベースの技術の中では、計算コストの高い解析22 による全ゲノムシーケンシングのみがecDNAを特徴づけることができる。
要約すると、FFPEサンプルの焦点遺伝子増幅を調査するための堅牢で包括的な手順を示します。FISHのシグナルパターンを調べることで、遺伝子座が増幅されるかどうか、またどのように増幅されるかが明確に明らかになります。間期核の画像解析23 に機械学習を統合して、コピー数や増幅形態(染色体またはecDNA)に関する細胞遺伝学的情報を抽出することで、分子診断プロセスの効率化とがんの発症メカニズムの理解が深まると期待しています。
The authors have nothing to disclose.
SWは、テキサス州の癌予防研究所(RR210034)の学者であり、支援を受けています
DAPI | Tocris Bioscience | 5748 | Nucleus staining |
Dextran sulfate 50% solution | EMD Millipore Sigma | S4030 | Probe hybridization buffer |
ERBB2 (HER2) FISH Probe | Empire Genomics | ERBB2-20-RE | FISH probe |
Ethanol | Decon Labs | 2716 | Dehydrating and hydrating tissue |
Formamide | Thermo Scientific Chemicals | 205821000 | Probe hybridization buffer |
Formula 83 (Xylene substitute) | CBG Biotech | CH0104A | Removing paraffin |
Hydrochloric acid | Fisher Chemical | A144-500 | Sample pretreatment |
IGEPAL CA-630 | Thermo Scientific Chemicals | J19628K2 | Slide washing |
Proclin 300 | Sigma-Aldrich | 48914-U | Preservative for SSC buffer (optional) |
Proteinase K (800 units/mL) | New England Biolabs | P8107S | Protein digestion |
RNase A (20 mg/mL) | New England Biolabs | T3018L | Probe hybridization buffer |
Slide Moat Hybridization System | Boekel Scientific | 280001 | Sample denature and hybridization. Alternative hot plates are acceptable. |
Sodium chloride | Fisher Chemical | S2713 | SSC buffer |
Sodium citrate dihydrate | Fisher BioReagents | FLBP3271 | SSC buffer and sample pretreatment |
Tris-EDTA (TE) buffer | Fisher BioReagents | BP2473500 | Proteinase K digestion buffer |
Tween-20 | Fisher BioReagents | BP337-500 | Probe hybridization buffer |
Vectashield antifade mounting media | Vector Laboratories | H190010 | Slide mounting |
Vector TrueVIEW | Vector Laboratories | SP8400 | Autofluorescence quenching kit |
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