Summary

Hibridación Reacción en cadena ARN Fluorescencia de montaje completo Hibridación in situ de genes quimiosensoriales en apéndices olfativos de mosquitos

Published: November 17, 2023
doi:

Summary

El artículo describe los métodos y reactivos necesarios para realizar la hibridación in situ de fluorescencia in situ de ARN de reacción en cadena de hibridación (HCR RNA WM-FISH) para revelar información sobre la resolución espacial y celular de los genes receptores quimiosensoriales en la antena del mosquito y el palpo maxilar.

Abstract

Los mosquitos son vectores eficaces de enfermedades mortales y pueden navegar por su entorno químico utilizando receptores quimiosensoriales expresados en sus apéndices olfativos. Comprender cómo se organizan espacialmente los receptores quimiosensoriales en los apéndices olfativos periféricos puede ofrecer información sobre cómo se codifica el olor en el sistema olfativo de los mosquitos e informar nuevas formas de combatir la propagación de enfermedades transmitidas por mosquitos. La aparición de la hibridación in situ de fluorescencia in situ de ARN de reacción en cadena de hibridación de tercera generación (HCR RNA WM-FISH) permite el mapeo espacial y el perfil de expresión simultánea de múltiples genes quimiosensoriales. Aquí, describimos un enfoque paso a paso para realizar HCR RNA WM-FISH en la antena del mosquito Anopheles y el palpo maxilar. Investigamos la sensibilidad de esta técnica examinando el perfil de expresión de los receptores olfativos ionotrópicos. Preguntamos si la técnica HCR WM-FISH descrita era adecuada para estudios multiplexados mediante la conexión de sondas de ARN a tres fluoróforos espectralmente distintos. Los resultados proporcionaron evidencia de que HCR RNA WM-FISH es robustamente sensible para detectar simultáneamente múltiples genes quimiosensoriales en la antena y los apéndices olfativos palpes maxilares. Investigaciones posteriores atestiguan la idoneidad de HCR WM-FISH para el perfil de coexpresión de dianas de ARN dobles y triples. Esta técnica, cuando se aplica con modificaciones, podría ser adaptable para localizar genes de interés en los tejidos olfativos de otras especies de insectos o en otros apéndices.

Introduction

Los mosquitos vectores como Anopheles gambiae dependen de un rico repertorio de genes quimiosensoriales expresados en sus apéndices olfativos periféricos para prosperar en un mundo químico complejo e identificar olores relevantes para el comportamiento que emanan de huéspedes humanos, detectar fuentes de néctar ylocalizar sitios de oviposición. La antena del mosquito y el palpo maxilar están enriquecidos con genes quimiosensoriales que impulsan la detección de olores en estos apéndices olfativos. Tres clases principales de canales iónicos activados por ligandos impulsan la detección de olores en los apéndices olfativos de los mosquitos: los receptores de olores (OR), que funcionan con un correceptor de olores obligado (Orco); los receptores ionotrópicos (IR), que interactúan con uno o más correceptores IR (IR8a, IR25a e IR76b); los receptores gustativos quimiosensoriales (GR), que funcionan como un complejo de tres proteínas para detectar el dióxido de carbono (CO2)1,2.

La hibridación in situ de fluorescencia de ARN es una poderosa herramienta para detectar la expresión de ARNm endógeno3. En general, este método utiliza una sonda de ácido nucleico monocatenario marcada con fluoróforos con secuencia complementaria a un ARNm diana. La unión de la sonda de ARN fluorescente al ARN diana permite la identificación de células que expresan una transcripción de interés. Los avances recientes permiten ahora la detección de transcripciones en tejidos de mosquitos de monte entero 4,5. La primera generación de tecnología de reacción en cadena de hibridación (HCR) utilizaba un amplificador HCR basado en ARN; esto se mejoró en un método de segunda generación que, en cambio, utilizó ADN diseñado para el amplificador HCR 6,7. Esta actualización dio como resultado un aumento de 10 veces en la señal, una disminución drástica en el costo de producción y una mejora significativa en la durabilidad de los reactivos 6,7.

En el protocolo, describimos la utilización de un método de hibridación in situ de fluorescencia de ARN de montaje completo HCR de tercera generación (HCR RNA WM-FISH) diseñado para detectar la localización espacial y la expresión de cualquier gen 8,9. Este método de dos pasos utiliza primero sondas de ácido nucleico específicas para el ARNm de interés, pero que también contienen una secuencia de reconocimiento del iniciador; el segundo paso utiliza horquillas marcadas con fluoróforos que se unen a la secuencia del iniciador para amplificar la señal fluorescente (Figura 1). Este método también permite la multiplexación de dos o más sondas de ARN y la amplificación de las señales de la sonda para facilitar la detección y cuantificación del ARN8. La visualización de la abundancia de transcripciones y los patrones de localización del ARN de los genes quimiosensoriales expresados en los apéndices olfativos ofrece la primera línea de información sobre las funciones de los genes quimiosensoriales y la codificación de los olores.

Protocol

1. Consideraciones y preparación de los materiales Decida si el montaje completo o la criosección de tejido serán apropiados. Este protocolo está optimizado para la obtención de imágenes in situ de montaje completo de ARN en la antena del mosquito Anopheles y el palpo maxilar sin crioseccionamiento. Si las muestras tienen un grosor superior a 5 mm, se recomienda crioseccionar para permitir la penetración de la sonda. Identificar los genes de interés y copiar …

Representative Results

Detección robusta de genes quimiosensoriales en la antena de AnophelesInvestigamos la sensibilidad del método HCR FISH (Figura 1) para detectar la expresión de receptores quimiosensoriales en tejidos olfativos de mosquitos. Guiados por los datos de transcripción de ARN informados anteriormente en la antena del mosquito hembra de Anopheles, generamos sondas para apuntar a una variedad de IR. Los valores promedio de transcripción de cuatro estudios i…

Discussion

La tercera generación de reacción en cadena de hibridación (HCR) destaca por su sensibilidad y robustez para visualizar varias dianas de ARN8. HCR WM-FISH se ha utilizado con éxito en embriones de Drosophila, pollo, ratones y pez cebra, así como en larvas de nematodos y pez cebra 10,16,17. Las antenas de los mosquitos y los palpos maxilares suelen ser propensos a una alta autofluorescencia y…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Margo Herre y al laboratorio de Leslie Vosshall por compartir su protocolo de hibridación in situ para apéndices olfativos de Aedes aegypti . Este trabajo fue apoyado por subvenciones de los Institutos Nacionales de Salud a C.J.P. (NIAID R01Al137078), una beca Hanna Gray del HHMI a J.I.R, una beca Johns Hopkins Postdoctoral Accelerator Award a J.I.R, y una beca postdoctoral del Instituto de Investigación de la Malaria Johns Hopkins a J.I.R. Agradecemos al Instituto de Investigación de la Malaria Johns Hopkins y a Bloomberg Philanthropies por su apoyo.

Materials

Amplification buffer Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence 50 mL
Calcium Chloride (CaCl2) 1M  Sigma-Aldrich  21115-100ML
Chitinase Sigma-Aldrich C6137-50UN
Chymotrypsin Sigma-Aldrich CHY5S-10VL 
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich 472301
Eppendorf tube VWR 20901-551 1.5 mL
Forceps Dumont 11251 Number 5
Gel loading tip Costar 4853 1-200 µL tip
Hairpins  Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence h1 and h2 initiator splits
HEPES (1M) Sigma-Aldrich H0887
IR25a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK149  AGAP010272
IR41t.1 probe Molecular Instruments  Probe Set ID: PRK978 AGAP004432
IR64a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK700  AGAP004923
IR75d probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK976 AGAP004969
IR76b probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRI998 AGAP011968
IR7t probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRL355 AGAP002763
IR8a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK150 AGAP010411
LoBind Tubes VWR 80077-236 0.5 mL DNA/RNA LoBind Tubes
Magnessium Chloride (MgCl2) 1M Thermo Fisher AM9530G
Methanol Fisher  A412-500
Nuclease-free water Thermo Fisher 43-879-36
Nutator Denville Scientific Model 135 3-D Mini rocker
Orco probe Molecular Instruments Probe set ID PRD954 AGAP002560
Paraformaldehyde (20% ) Electron Microscopy Services  15713-S
Phosphate Buffered Saline (10X PBS) Thermo Fisher AM9625
Probe hybridization buffer Molecular Instruments https://www.molecularinstruments.com/ 50 mL
Probe wash buffer Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence 100 mL
Proteinase-K Thermo Fisher AM2548
Saline-Sodium Citrate (SSC) 20x  Thermo Fisher 15-557-044
SlowFade Diamond Thermo Fisher  S36972 mounting solution
Sodium Chloride (NaCl) 5M Invitrogen AM9760G
Triton X-100  (10%) Sigma-Aldrich  93443
Tween-20 (10% ) Teknova T0027
Watch glass Carolina 742300  1 5/8" square; transparent

Referências

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Citar este artigo
Raji, J. I., Potter, C. J. Hybridization Chain Reaction RNA Whole-Mount Fluorescence In situ Hybridization of Chemosensory Genes in Mosquito Olfactory Appendages. J. Vis. Exp. (201), e65933, doi:10.3791/65933 (2023).

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