İşte sabit akış koşulları altında plasental eksplantların kültürlenmesi için bir protokol. Bu yaklaşım, dinamik fizyolojik ortamların replikasyonunu sağlayarak geleneksel statik villöz kültür sistemlerini geliştirir.
Mevcut ex vivo plasental eksplant kültür modelleri, öncelikle kuyu plakaları kullanılarak statik kültür sistemlerinde topraklanır. Bununla birlikte, bu modeller, plasentanın plazma veya kan akışı nedeniyle sürekli hafif kesme stresi ile karşılaştığı utero ortamdaki dinamiği yetersiz bir şekilde yansıtmaktadır. Bu sınırlamayı ele almak için, ex vivo plasental eksplant yetiştiriciliğini maternal vücutta yaşanan in utero akış koşullarına yaklaştırmak için bir akış kültürü sistemi tasarlanmıştır. Bu yaklaşımda, plasental eksplantlar, birbirine bağlı beş akış odası dizisinde yetiştirilir. Bu ayar, fizyolojik oksijen konsantrasyonlarını ve tutarlı bir akış hızını korur. Toplanan veriler, akış koşulları altında, doku morfolojisinin korunmasının, geleneksel statik yöntemlere kıyasla kayda değer bir gelişme gösterdiğini ortaya koymaktadır. Bu yenilikçi teknik, dinamik in vivo ortamın daha sadık bir temsilini sunarak, ex vivo plasental eksplant kültürünün basit bir yolunu sunar. Ayrıca, bu çalışma, fetö-maternal arayüzün işlevsel dinamiklerini araştırmak için yeni olanaklar sunmaktadır. Uygulanabilir dinamik metodolojileri benimseyerek, plasental biyolojinin daha derin bir şekilde anlaşılması kolaylaştırılır ve maternal-fetal sağlık için öneminin altı çizilir.
1960’lardan bu yana, bir kuyu plakasının dibinde plasental eksplant yetiştiriciliği, feto-maternal arayüzü 1,2,3’ü incelemek için kullanılmıştır. Bu yöntem köklü ve basittir, tek hücre kültürlerine ek olarak çeşitli çalışmalar için insan dokusunun kullanılmasını sağlar 2,3. Zamanla, plasental eksplant kültürleri için deneysel tasarımlar, oksijen konsantrasyonu4 ve dokunun kuyu plakasının dibine çökelmesini önlemek için 2,5,6 ile ilgili olarak değiştirilmiştir. Bununla birlikte, bu yöntem uterus içindeki in vivo koşullara, özellikle sabit bir akışın varlığınauyarlanmamıştır 3.
Gebeliğin başarısı, intervillöz boşluğun maternal kanla yeterli ve tutarlı bir şekilde perfüzyonuna, kan ve kan yoluyla bulaşan maddelerin sürekli giriş ve çıkışı ile dinamik bir devre oluşturmasınabağlıdır 7,8,9,10,11,12. Plasenta, biri maternal kan ve diğeri fetal kan için olmak üzere iki farklı kan tedarik sistemine sahiptir ve bu da hem fetal hem de maternal sistemler tarafından ikili perfüzyonla sonuçlanır13. Maternal kan, ilk trimesterin sonunda plasentanın intervillöz boşluğunu perfüze etmeye başlar ve genişlemiş uterus spiral arterlerindenyavaşça akar 10,11,14. Sonuç olarak, plasentalı villöz ağaçlar anne kanıyla yıkanır ve fetüse besin ve oksijen sağlar. Bu maternal kan, uteroplasental venler yoluyla maternal dolaşıma geri dönmeden önce intervillöz boşluktan akar. İntervillöz boşluktan geçişi sırasında, oksijen ve besin maddelerinin fetal kana difüzyonu ve aktif alımı, anne kanında daha düşük oksijen ve besin seviyelerine yol açar12,15. Bununla birlikte, intervillöz boşluğun kanı, dakikada yaklaşık iki ila üç kez tamamen taze, oksijen açısından zengin kanla değiştirilir ve sürekli bir besin ve gaz kaynağı sağlanır13. Özellikle, plasenta bariyerinin en dış kısmı olan sinsitiotrofoblast, doğrudan anne kanına maruz kalan plasental villöz ağacın tek bileşenidir15,16,17. Sonuç olarak, sinsitiyotrofoblast, akan maternal kandan sürekli hafif bir kayma gerilimi yaşar 3,14.
Plasental akış ortamı ile ilgili mevcut bilimsel bilgiler ve modern teknik gelişmeler, artık akış koşulları altında plasental eksplantların uyarlanmış ve fizyolojik olarak yaklaşık bir şekilde yetiştirilmesine izin vermektedir. Ayrıca, kanıtlar, kesme kuvvetlerinin sinsitiyotrofoblast 18,19,20,21’in biyolojik işlevlerini etkilediğini göstermektedir. Kan akışını açıklayan iyi bilinen bir yaklaşım plasental çift lob perfüzyon sistemidir22. Bununla birlikte, bu deneyler önemli bir uzmanlık gerektirir, zaman kısıtlamalıdır (sadece birkaç saat boyunca yapılır) ve yalnızca üçüncü trimester plasental örneklerle uygulanabilir 3,23. Buna karşılık, hem birinci hem de üçüncü trimester plasental dokuları barındıran, sabit akış ayarları altında ex vivo plasental villöz eksplant kültürü için basit ve müdahaleci olmayan bir teknik geliştirdik3. Bu kurulumda, plasental eksplantlar seri bağlı beş akış odasında yetiştirilir. Villöz eksplantlar, ince metal plakalar üzerinde iğne şeklindeki yükseltiler kullanılarak odanın tabanına sabitlenir. İnşa edilen akış devresi daha sonra hem oksijen konsantrasyonunun hem de akış hızınındüzenlendiği bir biyoreaktöre aktarılır 3. Akış kültürü sonuçları, doku bütünlüğünün tipik olarak kullanılan statik yönteme kıyasla daha iyi korunduğunu göstermektedir3. Ayrıca, bu dinamik yaklaşım, doku eksplant kültürü için yeni ve uyarlanmış deneysel tasarımlara olanak tanıyarak, doğal çevreyi daha yakından taklit eden in vitro deneylere olanak tanır3.
Bu çalışma, utero ortamdaki dinamiği çoğaltmak için tasarlanmış plasental eksplantlar için bir akış kültürü tekniğine benzersiz bir bakış açısı sunmaktadır 3,23. Bulgular, akış koşulları altında kültürlenen doku morfolojisinin geleneksel statik kültivasyon yöntemine kıyasla daha iyi korunduğunu ortaya koymaktadır3. Özellikle, ne statik ne de akış kültürü koşulları plasental damarların perfüzyonunu kolaylaştırmasa da, villöz stroma içindeki feto-plasental kan damarlarının yıkımı ağırlıklı olarak statik kültürde gözlenirken, kan damarlarının bütünlüğünün akış kültüründe daha uzun bir süre boyunca daha iyi korunduğu görülmüştür3.
Bu gözlem için olası bir açıklama, literatürdeiyi belgelenmiş bir işlev olan sinsitiyotrofoblastın önemli koruyucu ve endokrin rolüyle bağlantılı olabilir 12,24,25,26. Bu göz önüne alındığında, villusun dış tabakasının genel bütünlüğünün, kan damarları da dahil olmak üzere altta yatan stroma’nın korunmasına önemli ölçüde katkıda bulunduğu düşünülebilir. Sonuç olarak, akış koşulları altında kan damarlarının sürekli hücresel bütünlüğü, ortamın sürekli akışına bağlanabilir. Bu hareket, eksplantların pasif hareketine yardımcı olarak plasenta bariyeri boyunca gazların, besinlerin ve nanopartiküllerin (hücre dışı veziküller gibi) değişimini kolaylaştırır. Bu da, kan damarı morfolojisinin korunmasını olumlu yönde etkileyebilir. Ayrıca, mekanosensasyon fenomeni, çeşitli dokularda doku morfogenezinde rol oynar27,28. Çalışmalar, mekanosensitivitenin hücresel süreçleri birden fazla düzeyde etkilediğini ve sonuçta doku ve organ işlevselliğini etkileyen bir dizi biyokimyasal yanıtı tetiklediğini göstermiştir29. Özellikle, mekanosensitif proteinler, gebelik28 boyunca sinsitiyotrofoblast tarafından eksprese edilir. Ayrıca, çalışma, doku yüzeyindeki mikrovillusların bu bağlamda rol oynayabileceğini düşündürmektedir28.
Dikkate değer ek bir bakış açısı, mitokondrinin akışa hücresel tepkideki potansiyel rolüdür. Örneğin, endotel hücrelerinde mitokondri, çevresel uyaranlara30 hücresel tepkiler için sinyal dönüştürücüler olarak hizmet eder. TEM3 yoluyla statik kültürlenmiş dokuda gözlenen lipid damlacıklarının artmış birikimi, mitokondriyal disfonksiyona bağlı apoptoz indüksiyonu ile ilişkilendirilmiştir31. Altta yatan mekanizmaları ve temel faktörleri ortaya çıkarmak ve bunları aşağı akış sinyal yollarına bağlamak için daha fazla araştırma gereklidir. Bu keşif, dokunun kayma stresini nasıl algıladığı ve buna nasıl tepki verdiğine dair anlayışımızı geliştirebilir ve kültürde villöz eksplantların canlılığının ve bütünlüğünün iyileştirilmesine dönüşebilir23.
Birkaç kritik protokol adımı tekrarlanmalı ve dikkatle yürütülmelidir. Plasental doğumdan sonra, doku mümkün olduğunca çabuk kültürlenmelidir. Eksplant hazırlığı sırasında, görünür enfarktüsleri olan alanlardan kaçınmak çok önemlidir. Sıkışmayı önlemek için eksplantların forseps ile nazikçe tutulması önemlidir. İşlem boyunca dokunun sıvı ile kapalı tutulması ve hızlı bir şekilde yürütülmesi önerilir.
Bu çalışmanın, sunulan akış sistemi içindeki kesin kesme gerilimini belirleyemediğini kabul etmek önemlidir, bu da gelecekteki araştırmalardabir sınırlama olarak düşünülmelidir 3,23. Bununla birlikte, in vivo belirli bir plasental villus için kesin akış hızının ve kayma geriliminin, intervillöz boşluğun geometrik özellikleri, villusun bu boşluk içindeki konumu ve maternal spiral arterlere ve uterus venlerine yakınlığı ve açısı gibi çok sayıda parametreden etkilendiğini kabul etmek önemlidir 3,19,23,32 . Plasentanın bireyler arasında değişen geometrik yapısının karmaşıklığı da dikkate alınmalıdır23,32. İntervöz boşluk32 içindeki kan akışını tahmin eden matematiksel modeller ve sinsityotrofoblast19,28 üzerindeki duvar kayma gerilimi hesaplamaları zaten mevcuttur. İlginç bir şekilde, bir çalışma, sinsityotrofoblast üzerindeki kayma geriliminin üçüncü trimesterde ilk trimester28’e kıyasla daha düşük olduğunu tahmin ederken, bir diğeri sinsitiotrofoblast19 üzerinde uzamsal olarak heterojen duvar kesme gerilimi gösterdi. Belirli bir plasental villus için kesin akış hızının ve kayma geriliminin belirlenmesi bir zorluk olmaya devam etmektedir 3,19,23,32. Bu tür hesaplamalar, gelecekteki araştırmalar için kayma gerilimi aralığının yaklaşık bir tahminini sunar, ancak devam eden anatomik ayarlamalar ve optimizasyon gerektirebilirler23. Ayrıca, gelecekteki çalışmalar, intervillöz uzayın karmaşık geometrisini ve deney başına örnek sayısını artırmak için stratejileri açıklayan yeni ve rafine akışlı kültür teknikleri geliştirebilir3. Potansiyel olarak alternatif akış odalarının kullanılmasıyla akış sisteminin devam eden ilerlemesi ve geliştirilmesi beklenmektedir (Brugger ve diğerleri, yayınlanmamış veriler, 2023).
Sonuç olarak, bu çalışma, kültürlenmiş villöz eksplantların yapısal bütünlüğünü koruyan, kolayca uygulanabilir bir ex vivo akış kültürü tekniği göstererek sağlam bir temel oluşturmaktadır. Plasental fonksiyonel biyoloji çalışmalarında dinamik tekniklerin önemini vurgulayarak, akış kültürü sistemlerinde daha fazla ilerlemenin ve yeni fikirlerin ve hipotezlerin üretilmesinin önünü açmaktadır 3,23.
The authors have nothing to disclose.
Yazarlar, doku örneklemesi için Bettina Amtmann ve Petra Winkler’in mükemmel teknik desteğini minnetle takdir ediyorlar. Bu araştırma, Avusturya Bilim Fonu FWF (DOC 31-B26) ve Avusturya Graz Tıp Üniversitesi tarafından Gebelikte İnflamatuar Bozukluklar Doktora Programı (DP-iDP) aracılığıyla finanse edilmiştir.
6-well plates | NUNC, ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | 140675 | |
Alexa Fluor 555 goat-anti-mouse | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | A21422 | Diluted in PBS, 1:200 |
antibody diluent | Dako, Santa Clara, CA, USA | S3022 | |
anti-β-actin (AC-15) | Abcam, Cambridge, UK | ab6276 | Stock concentration: 2.1 mg/mL, diluted in antibody diluent, 1:10,000 |
Bioreactor TEB500 | TEB500, EBERS Medical Technology SL, Zaragoza, Spain | Serial Number: TEB505 / 1000EW/ 117 | |
CD34 Class II (QBEnd-10) | Dako, Santa Clara, CA, USA | M7165 | Stock concentration: 12 mg/l, diluted in antibody diluent, 1:500 |
CPD 030 critically point dryer | Bal-Tec, Balzers, Liechtenstein) | Critically point dryer | |
DAPI | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | D21490 | Diluted in PBS, 1:1000 |
Ebers TEB505 Series Software | TEB500, EBERS Medical Technology SL, Zaragoza, Spain | Series Software 1.4 | |
Endothelial Cell Growth Medium MV | PromoCell PC-C-22120, Heidelberg, Germany; | C-22120 | Used without EGCS/h and FCS, any other medium suitable for the tissue can be used |
Excelsior AS Tissue Processor | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | ||
Exosome-depleted fetal bovine serum | Gibco by Life Technologies, ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | A2720803 | |
Histolab Clear | Histolab, Askim, Sweden | 14250-TY | |
Hydrogen Peroxide Block | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | TA125H202Q | |
Kaiser’s Glycerin Gelatine | Merck, Darmstadt, Germany | 1092420100 | |
Leica DM 6000 B microscope | Leica, Wetzlar, Germany | Equipped with an Olympus DP 72 Camera | |
Leica UC7 ultramicrotome | Leica Microsystems, Vienna, Austria) | ||
Metal plate with needles | In-house construction | ||
Microtome | Microtome Microm HM 355 S, ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | ||
Microwave oven | Miele, Guetersloh, Germany | ||
Olympus microscope (BX63) | Olympus, Hamburg, Germany | Serial Number: 1A52421 | |
PBS | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | 10010015 | |
Penicillin/Streptomycin | Gibco by Life Technologies, ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | 2585627 | |
Primary antibody enhancer | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | TL-125-PB | |
ProLong Gold Antifade Reagent | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | P36934 | |
Pumping tube | Tygon, Bartelt, Graz, Austria | 6.078 175 | 1.02 mm diameter |
QV500 Flow chambers | Kirkstall Ltd., Quasi Vivo, North Yorkshire, UK | QV500 | Other chambers would work as well |
SCD 500, sputter coater | Bal-Tec, Balzers, Liechtenstein | Sputter coater | |
Substrate amino-ethyl carbazole, AEC substrate kit | Abcam, Cambridge, UK | ab64252 | |
Superfrost Plus slides | Menzel-Glaeser, Braunschweig, Germany | J1800AMNZ | |
Syringe Filter | Corning Incorporated, NY, USA | 431219 | 0.2 µm Pore SFCA Membrane, air filter for the reservoir bottle |
TAAB epoxy resin | Agar Scientific, Stansted, Essex, UK | T001 | |
UltraVision LP-Detection System HRP-Polymer | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | TL-125-HL | |
UltraVision Protein Block | ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA | TA125BPQ | |
Zeiss EM 900 transmission electron microscope | Zeiss, Oberkochen, Germany | ||
Zeiss Sigma 500 field emission scanning electron microscope | Zeiss, Cambridge, UK | Used with a back-scattered electron detector at 5 kV acceleration voltage |