Summary

Storskalig småmolekylär läkemedelsscreening för åldersrelaterade sömnstörningar med hjälp av Drosophila melanogaster

Published: October 20, 2023
doi:

Summary

Här presenteras ett protokoll för läkemedelsscreening med hög genomströmning för att förbättra sömnen genom att övervaka bananflugornas sömnbeteende i en äldre Drosophila-modell .

Abstract

Sömn, en viktig del av hälsa och allmänt välbefinnande, innebär ofta utmaningar för äldre individer som ofta upplever sömnstörningar som kännetecknas av förkortad sömntid och fragmenterade mönster. Dessa sömnstörningar korrelerar också med en ökad risk för olika sjukdomar hos äldre, inklusive diabetes, hjärt- och kärlsjukdomar och psykiska störningar. Tyvärr är befintliga läkemedel för sömnstörningar förknippade med betydande biverkningar som kognitiv försämring och beroende. Följaktligen finns det ett akut behov av att utveckla nya, säkrare och effektivare läkemedel mot sömnstörningar. De nuvarande metoderna för läkemedelsscreening är dock fortfarande begränsande faktorer eftersom de nuvarande metoderna för läkemedelsscreening är höga kostnader och långa försöksperioder.

Detta protokoll beskriver en kostnadseffektiv screeningmetod med hög genomströmning som använder Drosophila melanogaster, en art med en mycket bevarad sömnregleringsmekanism jämfört med däggdjur, vilket gör den till en idealisk modell för att studera sömnstörningar hos äldre. Genom att administrera olika små föreningar till åldrade flugor kan vi bedöma deras effekter på sömnstörningar. Dessa flugors sömnbeteenden registreras med hjälp av en infraröd övervakningsenhet och analyseras med datapaketet Sleep and Circadian Analysis MATLAB Program 2020 (SCAMP2020). Detta protokoll erbjuder en billig, reproducerbar och effektiv screeningmetod för sömnreglering. Bananflugor, på grund av sin korta livscykel, låga djurhållningskostnader och enkla hantering, fungerar som utmärkta ämnen för denna metod. Som en illustration visade Reserpine, ett av de testade läkemedlen, förmågan att främja sömnlängden hos äldre flugor, vilket belyser effektiviteten av detta protokoll.

Introduction

Sömn, ett av de väsentliga beteenden som är nödvändiga för människans överlevnad, kännetecknas av två huvudtillstånd: REM-sömn (rapid eye movement) och NREM-sömn (non-rapid eye movement)1. NREM-sömn består av tre stadier: N1 (övergången mellan vakenhet och sömn), N2 (lätt sömn) och N3 (djup sömn, långsam vågsömn), som representerar utvecklingen från vakenhet till djup sömn1. Sömn spelar en avgörande roll för både fysisk och psykisk hälsa2. Åldrande minskar dock den totala sömnlängden, sömneffektiviteten, sömnprocenten för långsamma vågor och REM-sömnprocenten hos vuxna3. Äldre individer tenderar att tillbringa mer tid i lätt sömn jämfört med sömn med långsamma vågor, vilket gör dem mer känsliga för nattliga uppvaknanden. När antalet uppvaknanden ökar minskar den genomsnittliga sömntiden, vilket resulterar i ett fragmenterat sömnmönster hos äldre, vilket kan vara förknippat med överdriven excitation av Hcrt-neuroner hos möss4. Dessutom bidrar åldersrelaterade nedgångar i cirkadiska mekanismer till en tidigare förskjutning av sömnlängden 5,6. I kombination med fysisk sjukdom, psykisk stress, miljöfaktorer och läkemedelsanvändning gör dessa faktorer äldre vuxna mer mottagliga för sömnstörningar, såsom sömnlöshet, REM-sömnbeteendestörning, narkolepsi, periodiska benrörelser, restless legs syndrome och sömnrelaterade andningsstörningar 7,8.

Epidemiologiska studier har visat att sömnstörningar är nära kopplade till kroniska sjukdomar hos äldre9, inklusive depression 10, hjärt- och kärlsjukdomar11 och demens12. Att ta itu med sömnstörningar spelar en avgörande roll för att förbättra och behandla kroniska sjukdomar och förbättra livskvaliteten för äldre vuxna. För närvarande förlitar sig patienter främst på läkemedel som bensodiazepiner, icke-bensodiazepiner och melatoninreceptoragonister för att förbättra sömnkvaliteten13. Bensodiazepiner kan dock leda till nedreglering av receptorer och beroende efter långvarig användning, vilket orsakar allvarliga abstinenssymtom vid utsättning14,15. Icke-bensodiazepiner medför också risker, inklusive demens 16, frakturer17 och cancer18. Den vanliga melatoninreceptoragonisten, ramelteon, minskar sömnlatensen men ökar inte sömnlängden och har leverfunktionsrelaterade problem på grund av omfattande förstapassageeliminering19. Agomelatin, en melatoninreceptoragonist och serotoninreceptorantagonist, förbättrar depressionsrelaterad sömnlöshet men utgör också en risk förleverskador. Följaktligen finns det ett akut behov av säkrare läkemedel för att behandla eller lindra sömnstörningar. Nuvarande strategier för läkemedelsscreening, baserade på molekylära och cellulära experiment i kombination med automatiserade system och datoranalys, är dock dyra och tidskrävande. Strukturbaserade strategier för läkemedelsdesign, som förlitar sig på receptorstruktur och egenskaper, kräver en tydlig förståelse av receptorns tredimensionella struktur och saknar prediktiva möjligheter för läkemedelseffekter22.

År 2000, baserat på de sömnkriterier som föreslogs av Campbell och Tobler 1984 23, etablerade forskare enkla djurmodeller för att studera sömn24, inklusive Drosophila melanogaster, som uppvisade sömnliknande tillstånd25,26. Trots anatomiska skillnader mellan Drosophila och människor bevaras många neurokemiska komponenter och signalvägar som reglerar sömnen hos Drosophila i däggdjurs sömn, vilket underlättar studier av mänskliga neurologiska sjukdomar 27,28. Drosophila används också i stor utsträckning i studier av dygnsrytm, trots skillnader i kärnoscillatorer mellan flugor och däggdjur 29,30,31. Därför fungerar Drosophila som en värdefull modellorganism för att studera sömnbeteende och genomföra sömnrelaterad läkemedelsscreening.

Denna studie föreslår ett kostnadseffektivt och enkelt fenotypbaserat tillvägagångssätt för screening av småmolekylära läkemedel för att behandla sömnstörningar med hjälp av åldrade flugor. Sömnregleringen hos Drosophila är mycket bevarad25, och den nedgång i sömn som observeras med åldern kan vara reversibel genom läkemedelsadministrering. Således kan denna sömnfenotypbaserade screeningmetod intuitivt återspegla läkemedelseffekten. Vi matar flugorna med en blandning av läkemedlet som undersöks och mat, övervakar och registrerar sömnbeteende med hjälp av Drosophila Activity Monitor (DAM)32 och analyserar insamlade data med hjälp av SCAMP2020 datapaket med öppen källkod i MATLAB (figur 1). Statistisk analys utförs med hjälp av statistik- och grafprogram (se Materialförteckning). Som ett exempel demonstrerar vi effektiviteten av detta protokoll genom att presentera experimentella data om Reserpine, en småmolekylär hämmare av den vesikulära monoamintransportören som rapporteras öka sömnen33. Detta protokoll ger ett värdefullt tillvägagångssätt för att identifiera läkemedel för behandling av åldersrelaterade sömnproblem.

Protocol

Detta protokoll använder de 30 dagar gamla w1118-flugorna från Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC_3605, se materialtabell). 1. Beredning av de åldrade bananflugorna MatlagningFörbered ett vanligt odlingsmedium för majsstärkelse genom att blanda 50 g/L cornflakes, 110 g/L socker, 5 g/L agar och 25 g/L jäst. Värm cornflakes och jäst med gelatinvatten och lös sedan upp alla ämnen helt. N?…

Representative Results

Reserpine är en småmolekylär hämmare av den vesikulära monoamintransportören (VMAT), som hämmar återupptaget av monoaminer i presynaptiska vesiklar, vilket leder till ökad sömn33. De sömnfrämjande effekterna av Reserpine undersöktes hos 30 dagar gamla flugor, där kontrollgruppen enbart matades med lösningsmedlet dimetylsulfoxid (DMSO). I Reserpine-gruppen uppvisade äldre flugor signifikant ökad sömn under både dag och natt jämfört med DMSO-gruppen. Figur 5…

Discussion

Den beskrivna metoden är lämplig för snabb screening av små och medelstora sömnläkemedel. För närvarande är de flesta vanliga metoder för läkemedelsscreening med hög kapacitet baserade på biokemiska och cellulära nivåer. Till exempel undersöks receptorns struktur och egenskaper för att söka efter specifika ligander som kan binda till den22. Ett annat tillvägagångssätt innebär att man analyserar bindningssätt och styrka hos molekylära fragment av utvalda läkemedel med hjäl…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Prof. Junhai Hans labbmedlemmar för deras diskussion och kommentarer. Detta arbete stöddes av National Natural Science Foundation of China 32170970 till Y.T och “Cyanine Blue Project” i Jiangsu-provinsen till Z.C.Z.

Materials

Ager BIOFROXX 8211KG001
Artificial Climate Box PRANDT PRX-1000A official website:https://www.nbplt17.com/PLTXBS-Products-20643427/
DAM2 Drosophila Activity Monitor TriKineics DAM2 official website:https://www.trikinetics.com/
DAM2system TriKineics version:v3.03 official website:https://www.trikinetics.com/
DAMFileScan TriKineics version:1.0.7.0 official website:https://www.trikinetics.com/
Dimethyl Sulfoxide SIGMA 276855
Drosophila Activity Monitoring Incubator Tritech Research DT2-CIRC-TK official website:https://www.tritechresearch.com/DT2-CIRC-TK.html
Drosophila Bottles Biologix 51-17720 official website:http://biologixgroup.com/goods.php?id=48
Drosophila: w1118 Bloomington Drosophila Stock Center  BDSC_3605
Excel Microsoft version:Excel 2016 official website:https://www.microsoftstore.com.cn/software/office/excel
Glass tubes TriKinetics PPT5x65 official website:https://www.trikinetics.com/
MATLABR2022b MathWorks version:9.13.0.2049777 official website:https://ww2.mathworks.cn/products/matlab.html
Prism GraphPad Version:Prism 8.0.1 official website:https://www.graphpad.com/features
Reserpine MACKLIN R817202-1g
Saccharose SIGMA 1245GR500
SCAMP Vecsey Lab N/A official website:https://academics.skidmore.edu/blogs/cvecsey/

Referências

  1. Le Bon, O. Relationships between REM and NREM in the NREM-REM sleep cycle: a review on competing concepts. Sleep Medicine. 70, 6-16 (2020).
  2. Krueger, J. M., Frank, M. G., Wisor, J. P., Roy, S. Sleep function: Toward elucidating an enigma. Sleep Medicine Reviews. 28, 46-54 (2016).
  3. Ohayon, M. M., Carskadon, M. A., Guilleminault, C., Vitiello, M. V. Meta-analysis of quantitative sleep parameters from childhood to old age in healthy individuals: developing normative sleep values across the human lifespan. Sleep. 27 (7), 1255-1273 (2004).
  4. Li, S. B., et al. Hyperexcitable arousal circuits drive sleep instability during aging. Science. 375 (6583), eabh3021 (2022).
  5. Rodriguez, J. C., Dzierzewski, J. M., Alessi, C. A. Sleep problems in the elderly. Medical Clinics of North America. 99 (2), 431-439 (2015).
  6. Gulia, K. K., Kumar, V. M. Sleep disorders in the elderly: a growing challenge. Psychogeriatrics. 18 (3), 155-165 (2018).
  7. Wolkove, N., Elkholy, O., Baltzan, M., Palayew, M. Sleep and aging: 1. Sleep disorders commonly found in older people. Canadian Medical Association Journal. 176 (9), 1299-1304 (2007).
  8. Suzuki, K., Miyamoto, M., Hirata, K. Sleep disorders in the elderly: Diagnosis and management. Journal of General and Family Medicine. 18 (2), 61-71 (2017).
  9. Foley, D. J., et al. Sleep complaints among elderly persons – an epidemiologic-study of 3 communities. Sleep. 18 (6), 425-432 (1995).
  10. Yu, D. S. Insomnia Severity Index: psychometric properties with Chinese community-dwelling older people. Journal of Advanced Nursing. 66 (10), 2350-2359 (2010).
  11. Hoevenaar-Blom, M. P., Spijkerman, A. M., Kromhout, D., van den Berg, J. F., Verschuren, W. M. Sleep duration and sleep quality in relation to 12-year cardiovascular disease incidence: the MORGEN study. Sleep. 34 (11), 1487-1492 (2011).
  12. Rebok, G. W., Rovner, B. W., Folstein, M. F. Sleep disturbance and Alzheimer’s disease: relationship to behavioral problems. Aging (Milano). 3 (2), 193-196 (1991).
  13. Schroeck, J. L., et al. Review of safety and efficacy of sleep medicines in older adults. Clinical Therapeutics. 38 (11), 2340-2372 (2016).
  14. Pericic, D., Strac, D. S., Jembrek, M. J., Vlainic, J. Allosteric uncoupling and up-regulation of benzodiazepine and GABA recognition sites following chronic diazepam treatment of HEK 293 cells stably transfected with alpha1beta2gamma2S subunits of GABA (A) receptors. Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 375 (3), 177-187 (2007).
  15. Lader, M. History of benzodiazepine dependence. Journal of Substance Abuse Treatment. 8 (1-2), 53-59 (1991).
  16. Chen, P. L., Lee, W. J., Sun, W. Z., Oyang, Y. J., Fuh, J. L. Risk of dementia in patients with insomnia and long-term use of hypnotics: a population-based retrospective cohort study. Plos One. 7 (11), e49113 (2012).
  17. Kang, D. Y., et al. Zolpidem use and risk of fracture in elderly insomnia patients. Journal of Preventive Medicine and Public Health. 45 (4), 219-226 (2012).
  18. Kao, C. H., et al. Relationship of zolpidem and cancer risk: a Taiwanese population-based cohort study. Mayo Clinic Protocols. 87 (5), 430-436 (2012).
  19. Sateia, M. J., Kirby-Long, P., Taylor, J. L. Efficacy and clinical safety of ramelteon: an evidence-based review. Sleep Medicine Reviews. 12 (4), 319-332 (2008).
  20. Friedrich, M. E., et al. Drug-induced liver injury during antidepressant treatment: results of amsp, a drug surveillance program. The International Journal of Neuropsychopharmacology. 19 (4), pyv126 (2016).
  21. Entzeroth, M., Flotow, H., Condron, P. Overview of high-throughput screening. Current Protocols in Pharmacology. Chapter 9, (2009).
  22. Ferreira, L. G., Dos Santos, R. N., Oliva, G., Andricopulo, A. D. Molecular docking and structure-based drug design strategies. Molecules. 20 (7), 13384-13421 (2015).
  23. Campbell, S. S., Tobler, I. Animal sleep – a review of sleep duration across phylogeny. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 8 (3), 269-300 (1984).
  24. Hendricks, J. C., Sehgal, A., Pack, A. I. The need for a simple animal model to understand sleep. Progress in Neurobiology. 61 (4), 339-351 (2000).
  25. Hendricks, J. C., et al. Rest in Drosophila is a sleep-like state. Neuron. 25 (1), 129-138 (2000).
  26. Shaw, P. J., Cirelli, C., Greenspan, R. J., Tononi, G. Correlates of sleep and waking in Drosophila melanogaster. Science. 287 (5459), 1834-1837 (2000).
  27. Ly, S., Pack, A. I., Naidoo, N. The neurobiological basis of sleep: Insights from Drosophila. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 87, 67-86 (2018).
  28. Jeibmann, A., Paulus, W. Drosophila melanogaster as a model organism of brain diseases. International Journal of Molecular Sciences. 10 (2), 407-440 (2009).
  29. Morse, D., Sassone-Corsi, P. Time after time: inputs to and outputs from the mammalian circadian oscillators. Trends in Neuroscience. 25 (12), 632-637 (2002).
  30. De Nobrega, A. K., Lyons, L. C. Drosophila: an emergent model for delineating interactions between the circadian clock and drugs of abuse. Neural Plasticity. 2017, 4723836 (2017).
  31. Reppert, S. M., Weaver, D. R. Coordination of circadian timing in mammals. Nature. 418 (6901), 935-941 (2002).
  32. Koudounas, S., Green, E. W., Clancy, D. Reliability and variability of sleep and activity as biomarkers of ageing in Drosophila. Biogerontology. 13 (5), 489-499 (2012).
  33. Nall, A. H., Sehgal, A. Small-molecule screen in adult Drosophila identifies VMAT as a regulator of sleep. Journal of Neuroscience. 33 (19), 8534-8464 (2013).
  34. Jin, X., Gu, P., Han, J. Protocol for Drosophila sleep deprivation using single-chip board. STAR Protocols. 2 (4), 100827 (2021).
  35. Kashyap, A., Singh, P. K., Silakari, O. Counting on fragment based drug design approach for drug discovery. Current Topics in Medicinal Chemistry. 18 (27), 2284-2293 (2018).
  36. Qi, W., Ding, D., Salvi, R. J. Cytotoxic effects of dimethyl sulphoxide (DMSO) on cochlear organotypic cultures. Hearing Research. 236 (1-2), 52-60 (2008).
  37. Nishimura, M., Ueda, N., Naito, S. Effects of dimethyl sulfoxide on the gene induction of cytochrome P450 isoforms, UGT-dependent glucuronosyl transferase isoforms, and ABCB1 in primary culture of human hepatocytes. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 26 (7), 1052-1056 (2003).
  38. Solovev, I. A., Shaposhnikov, M. V., Moskalev, A. A. Chronobiotics KL001 and KS15 extend lifespan and modify circadian rhythms of Drosophila melanogaster. Clocks Sleep. 3 (3), 429-441 (2021).
  39. Cavas, M., Beltran, D., Navarro, J. F. Behavioural effects of dimethyl sulfoxide (DMSO): changes in sleep architecture in rats. Toxicology Letters. 157 (3), 221-232 (2005).
  40. Pfeiffenberger, C., Lear, B. C., Keegan, K. P., Allada, R. Locomotor activity level monitoring using the Drosophila Activity Monitoring (DAM) System. Cold Spring Harbor Protocols. 2010 (11), 5518 (2010).
  41. Gilestro, G. F. Video tracking and analysis of sleep in Drosophila melanogaster. Nature Protocols. 7 (5), 995-1007 (2012).
  42. Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. High-throughput ethomics in large groups of Drosophila. Nature Methods. 6 (6), 451-457 (2009).
  43. Kabra, M., Robie, A. A., Rivera-Alba, M., Branson, S., Branson, K. JAABA: interactive machine learning for automatic annotation of animal behavior. Nature Methods. 10 (1), 64-67 (2013).
  44. Donelson, N. C., et al. High-resolution positional tracking for long-term analysis of Drosophila sleep and locomotion using the "tracker" program. Plos One. 7 (5), e37250 (2012).
  45. Cichewicz, K., Hirsh, J. ShinyR-DAM: a program analyzing Drosophila activity, sleep and circadian rhythms. Communications Biology. 1, 25 (2018).

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Z., Wang, Y., Zhao, J., Han, S., Zhang, Z. C., Tian, Y. High-Throughput Small Molecule Drug Screening For Age-Related Sleep Disorders Using Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (200), e65787, doi:10.3791/65787 (2023).

View Video