Den eksperimentelle designen som presenteres her gir en nyttig reproduksjonsmodell for studier av antigenspesifikke CD8+ T-celler under lymfeknute (LN) metastase, som utelukker forstyrrelse av tilskuer-CD8+ T-celler.
Tumorantigenspesifikke CD8+ T-celler fra drenerende lymfeknuter får en akkumulerende betydning ved montering av antitumorimmunrespons under tumorigenese. Imidlertid danner kreftceller i mange tilfeller metastatiske loci i lymfeknuter før de metastaserer videre til fjerne organer. I hvilken grad de lokale og systematiske CD8+ T-celleresponsene ble påvirket av LN-metastase, er fortsatt uklart. For dette formål satte vi opp en murine LN-metastasemodell kombinert med en B16F10-GP melanomcellelinje som uttrykker surrogatneoantigenet avledet fra lymfocytisk choriomeningittvirus (LCMV), glykoprotein (GP) og P14 transgene mus som har T-cellereseptorer (TCR) som er spesifikke for GP-avledet peptid GP33-41 presentert av klasse I store histokompatibilitetskompleks (MHC) molekyl H-2Db. Denne protokollen gjør det mulig å studere antigenspesifikke CD8+ T-celleresponser under LN-metastase. I denne protokollen ble C57BL/6J-mus subkutant implantert med B16F10-GP-celler, etterfulgt av adoptivoverføring med naive P14-celler. Da subkutan tumor vokste til ca. 5 mm i diameter, ble primærtumor skåret ut, og B16F10-GP-celler ble injisert direkte i tumordrenerende lymfeknute (TdLN). Deretter ble dynamikken til CD8 + T-celler overvåket under prosessen med LN-metastase. Samlet har denne modellen gitt en tilnærming til nøyaktig å undersøke de antigenspesifikke CD8 + T-celleimmunresponsene under LN-metastase.
Kreftimmunterapi, spesielt immunsjekkpunktblokaden (ICB), har revolusjonert kreftbehandling1. ICB blokkerer de koinhibitoriske immunreseptorene (som PD-1, Tim-3, LAG-3 og TIGIT), som er sterkt uttrykt i utmattede CD8 + T-celler i tumormikromiljøet (TME), noe som fører til gjenopplivning av utmattede CD8 + T-celler2. Tatt i betraktning heterogeniteten til utmattede CD8 + T-celler, viste akkumulerende bevis at tumorspesifikke CD8 + T-celler avledet fra periferien, inkludert drenering av lymfeknute (dLN), men ikke i TME, medierer effekten av ICB 3,4,5,6,7,8. Nylig ble TdLN-avledede TCF-1 + TOX-tumorspesifikke CD8 + T-celler (TdLN-TTSM) bekreftet å være de ekte responderne på ICB som legemliggjør flere funksjonelle egenskaper til konvensjonelle minne T-celler og kan ytterligere utvide og differensiere til avkom, utmattede celler ved ICB-behandling9. Samlet sett bekreftet disse funnene betydningen av LN i montering av antitumorimmunitet.
Lymfeknute fungerer som et kritisk sted for å lette priming og aktivering av tumorspesifikke CD8 + T-celler ved å gi strukturelt grunnlag så vel som biologiske signaler10. Flere typer kreftceller frø ofte vaktpostlymfeknute (SLN, den første LN som drenerer en primærtumor) før systematisk spredning11. Tilstedeværelsen av SLN-metastase er knyttet til dårlig utfall i human kreft, og prekliniske modeller viste at tumorceller i TdLN kunne spre seg til fjerne organer gjennom både lymfekar og blodkar i noden 12,13,14,15. SLN-biopsi representerer nå en standardprosedyre for å veilede etterfølgende behandlingsbeslutninger i mange solide tumortyper som kan unngå unødvendig reseksjon av uinvolvert LN16,17. Selv for den involverte LN er det fortsatt kontroversielt om og når kirurgisk reseksjon er nødvendig, da flere studier har vist at fjerning av regional LN ikke viste forbedret totaloverlevelse sammenlignet med de som fikk stråling eller systemisk behandling uten regional LN-reseksjon 18,19. En tolkning er at metastatisk LN (mLN) med mikroskopisk sykdom kan beholde en viss kapasitet til å utdanne immunceller og gi noen terapeutiske fordeler. Så det er kritisk viktig å belyse hvordan LN-metastase påvirker antitumorimmunresponsen, spesielt egenskapene og funksjonene til TdLN-TTSM.
Hittil har både prekliniske og kliniske data avslørt noen strukturelle og cellulære endringer i mLN20. Imidlertid er de dynamiske endringene av tumorspesifikke CD8 + T-celler under LN-metastase ikke avgrenset. Derfor er det nødvendig å utvikle en overbevisende modell for LN-metastase for videre undersøkelse. Faktisk har flere studier rapportert mLN musemodeller på forskjellige måter 14,21,22. For eksempel ble spontan metastase i aksillære LN utført ved implantasjon av 4T1 brystkreftceller i brystfettputen22. I en annen studie genererte Reticker-Flynn et al. melanomcellelinjer med høy forekomst av spredning fra subkutan primærtumor til LN gjennom seriell inokulering av tumorceller dyrket fra dissosiert mLN-vev (ni runder)14. En annen vanlig modell ble utarbeidet ved injeksjon av tumorceller i fotputen, og metastatiske loci ville bli dannet i popliteal LN22. Spesielt er det vanskelig å evaluere de nøyaktige tidspunktene for intervensjon fordi LN-metastase i disse modellene ikke alltid er trofast.
I denne studien ble en murine LN-metastatisk modell etablert gjennom intranodal injeksjon av B16F10-GP-celler23,24, generert ved CRISPR/Cas9-mediert innsetting av LCMV-virusglykoprotein (GP) gensekvens i genomet til B16F10-cellelinje9. Deretter ble disse musene overført med P14-celler som har transgene T-cellereseptorer (TCR) som spesifikt gjenkjenner H-2Db GP33-41-epitopen 25,26 og den systemiske og lokale dynamikken til antigenspesifikke CD8 + T-celler under LN-metastase kunne undersøkes. Vår eksperimentelle design gir en nyttig modell for studiet av immunresponser, spesielt de antigenspesifikke CD8 + T-cellene under LN-metastasen som utelukker forstyrrelsen av tilskuer-CD8 + T-celler. Disse resultatene vil påvirke de kliniske behandlingsalternativene for å fjerne eller beholde mLN og kaste nytt lys over manipulering av mLN for å oppnå maksimal terapeutisk nytte.
Under tumorigenese sluker antigenpresenterende celler (APCer) tumorantigener og migrerer til TdLN hvor de primer CD8 + T-celler. Etter priming og aktivering forlater CD8 + T-celler TdLN og infiltrerer svulsten for å drepe tumorceller10. Gjennom TdLN-reseksjon og administrering av FTY720 som blokkerer utgangen av immunceller fra lymfoide organer, har flere studier vist den sentrale rollen til TdLN for å sikre effekten av PD-1 / PD-L1 sjekkpunktbehandling34,…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Science Foundation for Outstanding Young Scholars of China (nr. 82122028 til LX), National Natural Science Foundation of China (nr. 82173094 til LX), Natural Science Foundation of Chong Qing (nr. 2023NSCQ-BHX0087 til SW).
1.5 mL centrifuge tube | KIRGEN | KG2211 | |
100 U insulin syringe | BD Biosciences | 320310 | |
15 mL conical tube | BEAVER | 43008 | |
2,2,2-Tribromoethanol (Avertin) | Sigma | T48402-25G | |
2-Methyl-2-butanol | Sigma | 240486-100ML | |
70 μm nylon cell strainer | BD Falcon | 352350 | |
APC anti-mouse CD45.1 | BioLegend | 110714 | Clone:A20 |
B16-GP cell line | Beijing Biocytogen Co.Ltd, China | Custom | |
BSA-V (bovine serum albumin) | Bioss | bs-0292P | |
cell culture dish | BEAVER | 43701/43702/43703 | |
centrifuge | Eppendorf | 5810R-A462/5424R | |
cyclophosphamide | Sigma | C0768-25G | |
Cyclophosphamide (CTX) | Sigma | PHR1404 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Gibco | C11995500BT | |
EDTA | Sigma | EDS-500g | |
FACS tubes | BD Falcon | 352052 | |
fetal bovine serum | Gibco | 10270-106 | |
flow cytometer | BD | FACSCanto II | |
hemocytometer | PorLab Scientific | HM330 | |
isoflurane | RWD life science | R510-22-16 | |
KHCO3 | Sangon Biotech | A501195-0500 | |
LIVE/DEAD Fixable Near-IR Dead Cell Stain Kit, for 633 or 635 nm excitation | Life Technologies | L10199 | |
needle carrier | RWD Life Science | F31034-14 | |
NH4Cl | Sangon Biotech | A501569-0500 | |
paraformaldehyde | Beyotime | P0099-500ml | |
PE anti-mouse TCR Vα2 | BioLegend | 127808 | Clone:B20.1 |
Pen Strep Glutamine (100x) | Gibco | 10378-016 | |
PerCP/Cy5.5 anti-mouse CD8a | BioLegend | 100734 | Clone:53-6.7 |
RPMI-1640 | Sigma | R8758-500ML | |
sodium azide | Sigma | S2002 | |
surgical forceps | RWD Life Science | F12005-10 | |
surgical scissors | RWD Life Science | S12003-09 | |
suture thread | RWD Life Science | F34004-30 | |
trypsin-EDTA | Sigma | T4049-100ml |