Summary

Provtagning av cerebrospinalvätska och blod från lateral svansven hos råttor under EEG-inspelningar

Published: September 01, 2023
doi:

Summary

Protokollet visar upprepade cerebrospinalvätske- och blodinsamlingar från epileptiska råttor utförda parallellt med kontinuerlig övervakning med videoelektroencefalogram (EEG). Dessa är avgörande för att utforska möjliga kopplingar mellan förändringar i olika kroppsvätskemolekyler och anfallsaktivitet.

Abstract

Eftersom sammansättningen av kroppsvätskor återspeglar många fysiologiska och patologiska dynamiker, erhålls vanligtvis biologiska vätskeprover i många experimentella sammanhang för att mäta molekyler av intresse, såsom hormoner, tillväxtfaktorer, proteiner eller små icke-kodande RNA. Ett konkret exempel är provtagning av biologiska vätskor i forskningen om biomarkörer för epilepsi. I dessa studier är det önskvärt att jämföra molekylnivåerna i cerebrospinalvätska (CSF) och i plasma, genom att dra tillbaka CSF och plasma parallellt och beakta tidsavståndet för provtagningen från och till kramper. Den kombinerade CSF- och plasmaprovtagningen, i kombination med video-EEG-övervakning på epileptiska djur, är ett lovande tillvägagångssätt för validering av förmodade diagnostiska och prognostiska biomarkörer. Här beskrivs en procedur med kombinerad CSF-utsättning från cisterna magna och blodprovstagning från den laterala svansvenen hos epileptiska råttor som kontinuerligt video-EEG-övervakas. Denna procedur ger betydande fördelar jämfört med andra vanliga tekniker. Det möjliggör snabb provtagning med minimal smärta eller invasivitet och minskad anestesitid. Dessutom kan den användas för att erhålla CSF- och plasmaprover hos både tjudrade och telemetri-EEG-registrerade råttor, och den kan användas upprepade gånger under flera dagars experiment. Genom att minimera stressen på grund av provtagning genom att förkorta isoflurananestesi, förväntas mätningarna mer exakt återspegla de verkliga nivåerna av undersökta molekyler i biovätskor. Beroende på tillgången till en lämplig analytisk analys kan denna teknik användas för att mäta nivåerna av flera olika molekyler samtidigt som EEG-registrering utförs.

Introduction

Cerebrospinalvätska (CSF) och blodprovstagning är viktiga för att identifiera och validera biomarkörer för epilepsi, i både preklinisk och klinisk forskning 1,2. Numera fokuserar diagnosen epilepsi och det mesta av forskningen om epilepsibiomarkörer på EEG och neuroimaging 3,4,5. Dessa metoder har dock flera begränsningar. Förutom rutinmässiga skalpmätningar kräver EEG i många fall invasiva tekniker som djupelektroder6. Hjärnavbildningsmetoder har dålig tids- och rumsupplösning och är relativt dyra och tidskrävande 7,8. Av denna anledning skulle identifiering av icke-invasiva, billiga och biofluidbaserade biomarkörer vara ett mycket attraktivt alternativ. Dessutom kan dessa biomarkörer kombineras med tillgängliga diagnostiska metoder för att skärpa deras prediktivitet.

Patienter som diagnostiserats med epilepsi genomgår rutinmässigt EEG 9,10 och blodprovstagning 11,12,13,14, och många även CSF-abstinens för att utesluta livshotande orsaker (t.ex. akuta infektioner, autoimmun encefalit)15. Dessa blod- och CSF-prover kan användas i klinisk forskning som syftar till att identifiera biomarkörer för epilepsi. Till exempel har Hogg och medarbetare funnit att en ökning av tre plasma-tRNA-fragment föregår anfallsförekomst vid human epilepsi14. På liknande sätt kan interleukin-1beta (IL-1β) nivåer i human cerebrospinalvätska och serum, uttryckt som förhållandet mellan IL-1β-nivåerna i cerebrospinalvätska och serum, förutsäga posttraumatisk epilepsiutveckling efter traumatisk hjärnskada16. Dessa studier belyser vikten av provtagning av biovätskor för forskning om biomarkörer för epilepsi, men de står inför flera begränsningar som är inneboende i kliniska prövningar, t.ex. den medgrundande faktorn för antiepileptiska läkemedel (AED) i blod, den frekventa bristen på etiologiinformation, otillräckliga kontroller, ett blygsamt antal patienter och andra17,18.

Preklinisk forskning erbjuder andra möjligheter att undersöka molekyler i biovätskor som potentiella biomarkörer för epilepsi. Faktum är att det är möjligt att ta plasma och/eller cerebrospinalvätska från djur samtidigt som EEG-registreringar utförs. Dessutom kan provtagning utföras upprepade gånger under flera dagar av experimentet, och ett antal ålders-, köns- och epileptiska förolämpningsmatchade kontroller kan användas för att förbättra studiens robusthet. Här beskrivs en flexibel teknik för att få fram cerebrospinalvätska från cisterna magna med parallell tillbakadragning av plasma från svansvenen hos EEG-övervakade råttor. Den presenterade tekniken har flera fördelar jämfört med alternativa metoder. Genom att använda fjärilsnål är det möjligt att samla in ryggmärgsvätska flera gånger utan att äventyra funktionen hos EEG-elektroder eller liknande huvudimplantat. Detta innebär en förfining av intratekala kateterutdragningsprocedurer, som är förknippade med en relativt hög infektionsrisk. Dessutom är den rapporterade metoden med fritt fall som används för blodinsamling överlägsen andra metoder för bloduttag i svansvenen på grund av den kraftigt minskade risken för hemolys, på grund av det faktum att blod inte passerar genom slangar och inget vakuumtryck appliceras. Om det utförs under strikt bakteriefria förhållanden är risken för infektion särskilt låg för djur. Genom att börja ta blodprov alldeles i slutet av djurens svans kan provtagningen dessutom upprepas flera gånger. Sådana tekniker är lätta att behärska och kan tillämpas i många prekliniska studier av sjukdomar i centrala nervsystemet.

Protocol

Alla försöksmetoder har godkänts av University of Ferrara Institutional Animal Care and Use Committee och av det italienska hälsoministeriet (tillstånd: D.M. 603/2022-PR) i enlighet med riktlinjerna i Europeiska gemenskapernas råds direktiv av den 24 november 1986 (86/609/EEG) om skydd av djur som används för försök och andra vetenskapliga ändamål. Detta protokoll är specifikt anpassat för ytterligare kvantitativa analyser av polymeraskedjereaktioner (qPCR) av små icke-kodande ribonukleinsyra (sncRNA) i ce…

Representative Results

Resultatet av olika CSF- och bloduttagsprocedurer utförda på 9 kontroll- och 18 kroniska epileptiska råttor, alla implanterade med elektroder 1 månad efter SE, rapporteras i termer av framgångsfrekvens. Efter implantationen video-EEG övervakades alla råttor under 1 månad, under vilken CSF plus blod drogs ut 5 gånger var tredje dag under de två sista veckorna av experimentet (dvs. vid dag 52, 55, 58, 61 och 64 efter SE; dpSE). Data från multipla utsättningar hos olika djur användes för att jämföra framgån…

Discussion

Det aktuella arbetet illustrerar en teknik som är lätt att behärska för ryggmärgsvätska och blodinsamling hos råttor, vilket kan vara användbart inte bara för studier i modeller av epilepsi utan också av andra neurologiska tillstånd eller sjukdomar som Alzheimer, Parkinson eller multipel skleros. Inom epilepsiforskning är båda provtagningsprocedurerna i kombination med video-EEG idealiska när man försöker hitta en korrelation mellan nivåerna av olika lösliga molekyler och anfallsaktivitet. Av denna spec…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av ett bidrag från Europeiska unionens arbetsprogram för Horisont 2020 (ansökningsomgång H2020-FETOPEN-2018-2020) inom ramen för bidragsavtal 964712 (PRIME; till M. Simonato).

Materials

Blood collection set BD Vacutainer Safety-Lok BD Italy SpA, Milan, Italy 367246 Material
Blood Collection tubes (Microtainer K2E) BD Italy SpA, Milan, Italy 365975 Material
Butterfly Winged Infusion Set 23G x 3/4'' 0.6 x 19 mm Nipro, Osaka, Japan  PSY-23-ET-ICU Material
Centrifuge refrigerated ALC PK 130R DJB Labcare Ltd, Buckinghamshire, England 112000033 Material
Cotton suture 3-0 Ethicon, Johnson & Johnson surgical technologies, Raritan, New Jersey, USA 7343H Material
Diazepam 5 mg/2ml, Solupam Dechra Veterinary Products, Torino, Italy 105183014 (AIC) Solution
Digital video 8-channel media recorder system of telemetry EEG set up Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA PNM-VIDEO-008 Equipment
Digital video surveillance system of tethered EEG set up EZVIZ Network, Hangzhou, Cina EZVIZ (V5.3.2) Equipment
Disinfectant based on stabilized peroxides and quaternary ammonium activity Laboratoire Garcin-Bactinyl, France LB 920111 Solution
Dummy guide cannula 8 mm Agn Tho's, Lindigö, Sweden CXD-8 Material
Electrode 3-channel two-twisted Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA MS333/3-B/SPC Material
Electrode holder for stereotxic surgery Agn Tho's, Lindigö, Sweden 1776-P1 Equipment
Eppendorf BioSpectrometer basic Eppendorf AG, Hamburg, Germany 6137 Equipment

Eppendorf PCR Tubes 0.2 mL
Eppendorf Srl, Milan, Italy 30124332 Material
Eppendorf μCuvette G1.0 Eppendorf AG, Hamburg, Germany 6138 Equipment
Feeding needle flexible 17G for rat Agn Tho's, Lindigö Sweden 7206 Material
Grass Technology apparatus Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA M665G08 Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40)
Isoflurane 100%, IsoFlo Zoetis, Rome, Italy 103287025 (AIC) Solution
Ketamine (Imalgene) Merial, Toulouse, France 221300288 (AIC) Solution
Lithium chloride  Sigma-Aldrich, Milan, Italy L9650 Material
Microinjection cannula 31G 9 mm Agn Tho's, Lindigö Sweden CXMI-9 Material
MP150 modular data acquisition and analysis system  Biopac, Goleta, California, USA MP150WSW Equipment
Ophthalmic vet ointment, Hylo night Ursapharm, Milan, Italy 941791927 (AIC) Material
Pilocarpine hydrochloride Sigma-Aldrich, Milan, Italy P6503 Material
PTFE Tube with joint Agn Tho's, Lindigö, Sweden JT-10 Material
Saline 0.9% NaCl, pH adjusted to 7.0 Solution
Scopolamine hydrobromide trihydrate Sigma-Aldrich, Milan, Italy S2250 Material
Scopolamine methyl nitrate Sigma-Aldrich, Milan, Italy S1876 Material
Silver sulfadiazine 1% cream  Sofar, Trezzano Rosa, Milan, Italy 025561010 (AIC) Material
Simplex rapid dental methacrylic cement   Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom ACR811 Material
Stereotaxic apparatus David Kopf Instruments, Los Angeles, CA, USA Model 963 Equipment
Sucrose solution 10% sucrose in distilled water Home-made Solution
Syringe 1 mL  Biosigma, Cona, Venezia, Italy 20,71,26,03,00,350 Material
Telemeters Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA CTA-F40 Material
Telemetry EEG traces analyzer Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA NeuroScore v3-0 Equipment
Telemetry system Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA Hardware plus software Ponemah core 6.51 Equipment
Xylazine hydrochloride Sigma-Aldrich, Milan, Italy X1251 Material

Referências

  1. Hanin, A., et al. Cerebrospinal fluid and blood biomarkers of status epilepticus. Epilepsia. 61 (1), 6-18 (2020).
  2. Pitkänen, A., et al. Advances in the development of biomarkers for epilepsy. The Lancet Neurology. 15 (8), 843-856 (2016).
  3. Dlugos, D., et al. Childhood Absence Epilepsy Study Team (2013). Pretreatment EEG in childhood absence epilepsy: associations with attention and treatment outcome. Neurology. 81 (2), 150-156 (2013).
  4. Lorenzo, N. Y., et al. Intractable frontal lobe epilepsy: pathological and MRI features. Epilepsy research. 20 (2), 171-178 (1995).
  5. van Dellen, E., et al. Epilepsy surgery outcome and functional network alterations in longitudinal MEG: a minimum spanning tree analysis. NeuroImage. 86, 354-363 (2014).
  6. Shah, A. K., Mittal, S. Invasive electroencephalography monitoring: Indications and presurgical planning. Annals of Indian Academy of Neurology. 17 (Suppl 1), S89-S94 (2014).
  7. Whiting, P., et al. A systematic review of the effectiveness and cost-effectiveness of neuroimaging assessments used to visualise the seizure focus in people with refractory epilepsy being considered for surgery. Health technology assessment. 10 (4), 1-iv (2006).
  8. Lenkov, D. N., Volnova, A. B., Pope, A. R., Tsytsarev, V. Advantages and limitations of brain imaging methods in the research of absence epilepsy in humans and animal models. Journal of neuroscience methods. 212 (2), 195-202 (2013).
  9. Leach, J. P., Stephen, L. J., Salveta, C., Brodie, M. J. Which electroencephalography (EEG) for epilepsy? The relative usefulness of different EEG protocols in patients with possible epilepsy. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry. 77 (9), 1040-1042 (2006).
  10. Huppertz, H. J., et al. Localization of interictal delta and epileptiform EEG activity associated with focal epileptogenic brain lesions. NeuroImage. 13 (1), 15-28 (2001).
  11. Linder, C., et al. Comparison between dried blood spot and plasma sampling for therapeutic drug monitoring of antiepileptic drugs in children with epilepsy: A step towards home sampling. Clinical biochemistry. 50 (7-8), 418-424 (2017).
  12. Wegner, I., Wilhelm, A. J., Lambrechts, D. A., Sander, J. W., Lindhout, D. Effect of oral contraceptives on lamotrigine levels depends on comedication. Acta neurologica Scandinavica. 129 (6), 393-398 (2014).
  13. Palmio, J., et al. CSF and plasma adipokines after tonic-clonic seizures. Seizure. 39, 10-12 (2016).
  14. Hogg, M. C., et al. Elevation in plasma tRNA fragments precede seizures in human epilepsy. Journal of Clinical Investigation. 129 (7), 2946-2951 (2019).
  15. Ellul, M., Solomon, T. Acute encephalitis – diagnosis and management. Clinical medicine. 18 (2), 155-159 (2018).
  16. Diamond, M. L., et al. IL-1β associations with posttraumatic epilepsy development: a genetics and biomarker cohort study. Epilepsia. 55 (7), 1109-1119 (2014).
  17. Auvin, S., et al. Prospective clinical trials to investigate clinical and molecular biomarkers. Epilepsia. 58 (Suppl 3), 20-26 (2017).
  18. Weber, Y. G., Nies, A. T., Schwab, M., Lerche, H. Genetic biomarkers in epilepsy. Neurotherapeutics. 11 (2), 324-333 (2014).
  19. Fornari, R. V., et al. Rodent stereotaxic surgery and animal welfare outcome improvements for behavioral neuroscience. Journal of Visualized Experiments. (59), e3528 (2012).
  20. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable stereotaxic surgery in rodents. Journal of Visualized Experiments. (20), e880 (2008).
  21. Gardiner, T. W., Toth, L. A. Stereotactic Surgery and Long-Term Maintenance of Cranial Implants in Research Animals. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 38 (1), 56-63 (1999).
  22. Westergren, I., Johansson, B. B. Changes in physiological parameters of rat cerebrospinal fluid during chronic sampling: evaluation of two sampling methods. Brain Research Bulletin. 27 (2), 283-286 (1991).
  23. Soukupová, M., et al. Impairment of GABA release in the hippocampus at the time of the first spontaneous seizure in the pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Experimental Neurology. 257, 39-49 (2014).
  24. Soukupová, M., et al. Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats. Journal of Visualized Experiments. (141), e58455 (2018).
  25. Guarino, A., et al. Low-dose 7,8-Dihydroxyflavone Administration After Status Epilepticus Prevents Epilepsy Development. Neurotherapeutics. 19 (6), 1951-1965 (2022).
  26. Curia, G., Longo, D., Biagini, G., Jones, R. S. G., Avoli, M. The pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 143-157 (2008).
  27. Racine, R. J. Modification of seizure activity by electrical stimulation: II. Motor seizure. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 32 (3), 281-294 (1972).
  28. Zou, W., et al. Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System. Journal of Visualized Experiments. (130), e55852 (2017).
  29. . Blood sampling: Rat Available from: https://nc3rs.org.uk/3rs-resources/blood-sampling/blood-sampling-rat (2022)
  30. Powles-Glover, N., Kirk, S., Wilkinson, C., Robinson, S., Stewart, J. Assessment of toxicological effects of blood microsampling in the vehicle dosed adult rat. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 68 (3), 325-331 (2014).
  31. Zeller, W., Weber, H., Panoussis, B., Bürge, T., Bergmann, R. Refinement of blood sampling from the sublingual vein of rats. Laboratory Animal. 32 (4), 369-376 (1998).
  32. Wang, D., Zhao, Y., Yang, Y., Xie, H. Safety assessment of multiple repeated percutaneous punctures for the collection of cerebrospinal fluid in rats. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 54 (6), e10032 (2021).
  33. Möller, C., et al. Impact of repeated kindled seizures on heart rate rhythms, heart rate variability, and locomotor activity in rats. Epilepsy & Behavior. 92, 36-44 (2019).
  34. Espinosa-Garcia, C., Zeleke, H., Rojas, A. Impact of Stress on Epilepsy: Focus on Neuroinflammation-A Mini Review. International Journal of Molecular Sciences. 22 (8), 4061 (2021).
  35. Cassar, S. C., et al. Comparing levels of biochemical markers in CSF from cannulated and non-cannulated rats. Journal of Neuroscience Methods. 192 (2), 249-253 (2010).
  36. Huang, Y. L., Säljö, A., Suneson, A., Hansson, H. A. Comparison among different approaches for sampling cerebrospinal fluid in rats. Brain Research Bulletin. 41 (5), 273-279 (1996).
  37. Hattori, N., Takumi, A., Saito, K., Saito, Y. Effects of serial cervical or tail blood sampling on toxicity and toxicokinetic evaluation in rats. Journal of Toxicological Sciences. 45 (10), 599-609 (2020).
  38. Roncon, P., et al. MicroRNA profiles in hippocampal granule cells and plasma of rats with pilocarpine-induced epilepsy–comparison with human epileptic samples. Scientific Reports. 5, 14143 (2015).
  39. van Vliet, E. A., et al. Standardization procedure for plasma biomarker analysis in rat models of epileptogenesis: Focus on circulating microRNAs. Epilepsia. 58 (12), 2013-2024 (2017).
  40. Kirschner, M. B., et al. Haemolysis during sample preparation alters microRNA content of plasma. PLoS One. 6 (9), e24145 (2011).
  41. Grimm, H., et al. Advancing the 3Rs: innovation, implementation, ethics and society. Frontiers in Veterinary Science. 10, 1185706 (2023).
check_url/pt/65636?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Soukupová, M., Guarino, A., Asth, L., Marino, P., Barbieri, M., Simonato, M., Zucchini, S. Sampling Cerebrospinal Fluid and Blood from Lateral Tail Vein in Rats During EEG Recordings. J. Vis. Exp. (199), e65636, doi:10.3791/65636 (2023).

View Video