Summary

Prøveudtagning af cerebrospinalvæske og blod fra lateral halevene hos rotter under EEG-optagelser

Published: September 01, 2023
doi:

Summary

Protokollen viser gentagne cerebrospinalvæske og blodsamlinger fra epileptiske rotter udført parallelt med kontinuerlig video-elektroencefalogram (EEG) overvågning. Disse er medvirkende til at udforske mulige forbindelser mellem ændringer i forskellige kropsvæskemolekyler og anfaldsaktivitet.

Abstract

Fordi sammensætningen af kropsvæsker afspejler mange fysiologiske og patologiske dynamikker, opnås biologiske væskeprøver almindeligvis i mange eksperimentelle sammenhænge for at måle molekyler af interesse, såsom hormoner, vækstfaktorer, proteiner eller små ikke-kodende RNA’er. Et specifikt eksempel er prøveudtagning af biologiske væsker i forskningen af biomarkører for epilepsi. I disse undersøgelser er det ønskeligt at sammenligne niveauerne af molekyler i cerebrospinalvæske (CSF) og plasma ved at trække CSF og plasma parallelt og overveje prøvetagningens tidsafstand fra og til anfald. Den kombinerede CSF og plasmaprøvetagning kombineret med video-EEG-overvågning i epileptiske dyr er en lovende tilgang til validering af formodede diagnostiske og prognostiske biomarkører. Her beskrives en procedure med kombineret CSF-tilbagetrækning fra cisterna magna og blodprøvetagning fra den laterale halevene hos epileptiske rotter, der kontinuerligt overvåges video-EEG. Denne procedure giver betydelige fordele i forhold til andre almindeligt anvendte teknikker. Det tillader hurtig prøveudtagning med minimal smerte eller invasivitet og reduceret anæstesitid. Derudover kan det bruges til at opnå CSF- og plasmaprøver i både tøjrede og telemetri EEG-registrerede rotter, og det kan bruges gentagne gange på tværs af flere dages eksperiment. Ved at minimere stress på grund af prøvetagning ved at forkorte isofluranæstesi forventes foranstaltningerne mere nøjagtigt at afspejle de sande niveauer af undersøgte molekyler i biofluider. Afhængigt af tilgængeligheden af et passende analytisk assay kan denne teknik anvendes til at måle niveauerne af flere forskellige molekyler, mens EEG-registrering udføres på samme tid.

Introduction

Cerebrospinalvæske (CSF) og blodprøvetagning er vigtige for at identificere og validere biomarkører for epilepsi i både præklinisk og klinisk forskning 1,2. I dag fokuserer diagnosen epilepsi og det meste af forskningen på epilepsibiomarkører på EEG og neuroimaging 3,4,5. Disse tilgange har imidlertid flere begrænsninger. Bortset fra rutinemæssige hovedbundsmålinger kræver EEG i mange tilfælde invasive teknikker som dybdeelektroder6. Hjernebilleddannelsesmetoder har dårlig tidsmæssig og rumlig opløsning og er relativt dyre og tidskrævende 7,8. Af denne grund ville identifikation af ikke-invasive, billige og biofluidbaserede biomarkører være et meget attraktivt alternativ. Derudover kan disse biofluid biomarkører kombineres med tilgængelige diagnostiske tilgange for at skærpe deres forudsigelighed.

Patienter diagnosticeret med epilepsi indsendes rutinemæssigt til EEG 9,10 og blodprøvetagning 11,12,13,14, og mange også til CSF-tilbagetrækning for at udelukke livstruende årsager (dvs. akutte infektioner, autoimmun encephalitis)15. Disse blod- og CSF-prøver kan bruges i klinisk forskning, der sigter mod at identificere biomarkører for epilepsi. For eksempel har Hogg og kolleger fundet ud af, at en stigning i tre plasma tRNA-fragmenter går forud for anfaldsforekomst i human epilepsi14. Tilsvarende kan interleukin-1beta (IL-1β) niveauer i human CSF og serum, udtrykt som forholdet mellem IL-1β niveauer i CSF over serum, forudsige posttraumatisk epilepsiudvikling efter traumatisk hjerneskade16. Disse undersøgelser fremhæver vigtigheden af prøveudtagning af biofluider til forskning i epilepsibiomarkører, men de står over for flere begrænsninger, der er iboende for kliniske forsøg, f.eks. den medstiftende faktor for antiepileptiske lægemidler (AED’er) i blod, den hyppige mangel på ætiologiinformation, utilstrækkelig kontrol, beskedent antal patienter og andre 17,18.

Præklinisk forskning giver andre muligheder for at undersøge molekyler i biofluider som potentielle biomarkører for epilepsi. Faktisk er det muligt at trække plasma og / eller CSF fra dyr, mens du udfører EEG-optagelser. Desuden kan prøveudtagning udføres gentagne gange over flere dage af eksperimentet, og en række alders-, køns- og epileptiske fornærmelsesmatchede kontroller kan bruges til at forbedre undersøgelsens robusthed. Her beskrives en fleksibel teknik til opnåelse af CSF fra cisterna magna med parallel tilbagetrækning af plasma fra halevenen hos EEG-overvågede rotter detaljeret. Den præsenterede teknik har flere fordele i forhold til alternative metoder. Ved at bruge en sommerfuglenålstilgang er det muligt at indsamle CSF flere gange uden at gå på kompromis med funktionen af EEG-elektroder eller lignende hovedimplantater. Dette repræsenterer en forfining af intratekale kateterudtagningsprocedurer, som er forbundet med en relativt høj infektionsrisiko. Derudover er den rapporterede fritfaldsmetode, der anvendes til blodindsamling, bedre end andre tilgange til tilbagetrækning af haleveneblod på grund af den stærkt reducerede risiko for hæmolyse på grund af det faktum, at blod ikke passerer gennem slanger, og der ikke påføres vakuumtryk. Hvis det udføres under strenge bakteriefrie forhold, er der en særlig lav risiko for infektion for dyr. Derudover kan prøveudtagningen gentages flere gange ved at starte blodudtagningerne i slutningen af dyrenes haler. Sådanne teknikker er lette at mestre og kan anvendes i mange prækliniske undersøgelser af lidelser i centralnervesystemet.

Protocol

Alle forsøgsprocedurer er godkendt af University of Ferrara Institutional Animal Care and Use Committee og af det italienske sundhedsministerium (autorisation: D.M. 603/2022-PR) i overensstemmelse med retningslinjerne i De Europæiske Fællesskabers rådsdirektiv af 24. november 1986 (86/609/EØF) om beskyttelse af dyr, der anvendes til forsøg og andre videnskabelige formål. Denne protokol er specifikt justeret for yderligere kvantitative polymerasekædereaktionsanalyser (qPCR) af små ikke-kodende ribonukleinsyre (sn…

Representative Results

Resultatet af forskellige CSF- og blodudtagningsprocedurer udført hos 9 kontrolrotter og 18 kroniske epileptiske rotter, alle implanteret med elektroder 1 måned efter SE, rapporteres med hensyn til succesrate. Efter implantation blev alle rotter video-EEG overvåget i 1 måned, hvor CSF plus blod blev trukket tilbage 5x hver 3. dag i løbet af de to sidste uger af eksperimentet (dvs. på dag 52, 55, 58, 61 og 64 efter SE; dpSE). Data fra flere tilbagetrækninger i forskellige dyr blev brugt til at sammenligne succesrat…

Discussion

Dette arbejde illustrerer en let at mestre teknik til CSF og blodindsamling hos rotter, som kan være nyttig ikke kun til undersøgelser i modeller af epilepsi, men også af andre neurologiske tilstande eller sygdomme som Alzheimer, Parkinson eller multipel sklerose. I epilepsiforskning er begge prøveudtagningsprocedurer kombineret med video-EEG ideelle, når en sammenhæng mellem niveauerne af forskellige opløselige molekyler og anfaldsaktivitet forfølges. Af denne specifikke grund blev der anvendt en kontinuerlig vi…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af et tilskud fra Den Europæiske Unions Horizon 2020-arbejdsprogram (indkaldelse af forslag H2020-FETOPEN-2018-2020) i henhold til tilskudsaftale 964712 (PRIME; til M. Simonato).

Materials

Blood collection set BD Vacutainer Safety-Lok BD Italy SpA, Milan, Italy 367246 Material
Blood Collection tubes (Microtainer K2E) BD Italy SpA, Milan, Italy 365975 Material
Butterfly Winged Infusion Set 23G x 3/4'' 0.6 x 19 mm Nipro, Osaka, Japan  PSY-23-ET-ICU Material
Centrifuge refrigerated ALC PK 130R DJB Labcare Ltd, Buckinghamshire, England 112000033 Material
Cotton suture 3-0 Ethicon, Johnson & Johnson surgical technologies, Raritan, New Jersey, USA 7343H Material
Diazepam 5 mg/2ml, Solupam Dechra Veterinary Products, Torino, Italy 105183014 (AIC) Solution
Digital video 8-channel media recorder system of telemetry EEG set up Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA PNM-VIDEO-008 Equipment
Digital video surveillance system of tethered EEG set up EZVIZ Network, Hangzhou, Cina EZVIZ (V5.3.2) Equipment
Disinfectant based on stabilized peroxides and quaternary ammonium activity Laboratoire Garcin-Bactinyl, France LB 920111 Solution
Dummy guide cannula 8 mm Agn Tho's, Lindigö, Sweden CXD-8 Material
Electrode 3-channel two-twisted Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA MS333/3-B/SPC Material
Electrode holder for stereotxic surgery Agn Tho's, Lindigö, Sweden 1776-P1 Equipment
Eppendorf BioSpectrometer basic Eppendorf AG, Hamburg, Germany 6137 Equipment

Eppendorf PCR Tubes 0.2 mL
Eppendorf Srl, Milan, Italy 30124332 Material
Eppendorf μCuvette G1.0 Eppendorf AG, Hamburg, Germany 6138 Equipment
Feeding needle flexible 17G for rat Agn Tho's, Lindigö Sweden 7206 Material
Grass Technology apparatus Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA M665G08 Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40)
Isoflurane 100%, IsoFlo Zoetis, Rome, Italy 103287025 (AIC) Solution
Ketamine (Imalgene) Merial, Toulouse, France 221300288 (AIC) Solution
Lithium chloride  Sigma-Aldrich, Milan, Italy L9650 Material
Microinjection cannula 31G 9 mm Agn Tho's, Lindigö Sweden CXMI-9 Material
MP150 modular data acquisition and analysis system  Biopac, Goleta, California, USA MP150WSW Equipment
Ophthalmic vet ointment, Hylo night Ursapharm, Milan, Italy 941791927 (AIC) Material
Pilocarpine hydrochloride Sigma-Aldrich, Milan, Italy P6503 Material
PTFE Tube with joint Agn Tho's, Lindigö, Sweden JT-10 Material
Saline 0.9% NaCl, pH adjusted to 7.0 Solution
Scopolamine hydrobromide trihydrate Sigma-Aldrich, Milan, Italy S2250 Material
Scopolamine methyl nitrate Sigma-Aldrich, Milan, Italy S1876 Material
Silver sulfadiazine 1% cream  Sofar, Trezzano Rosa, Milan, Italy 025561010 (AIC) Material
Simplex rapid dental methacrylic cement   Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom ACR811 Material
Stereotaxic apparatus David Kopf Instruments, Los Angeles, CA, USA Model 963 Equipment
Sucrose solution 10% sucrose in distilled water Home-made Solution
Syringe 1 mL  Biosigma, Cona, Venezia, Italy 20,71,26,03,00,350 Material
Telemeters Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA CTA-F40 Material
Telemetry EEG traces analyzer Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA NeuroScore v3-0 Equipment
Telemetry system Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA Hardware plus software Ponemah core 6.51 Equipment
Xylazine hydrochloride Sigma-Aldrich, Milan, Italy X1251 Material

Referências

  1. Hanin, A., et al. Cerebrospinal fluid and blood biomarkers of status epilepticus. Epilepsia. 61 (1), 6-18 (2020).
  2. Pitkänen, A., et al. Advances in the development of biomarkers for epilepsy. The Lancet Neurology. 15 (8), 843-856 (2016).
  3. Dlugos, D., et al. Childhood Absence Epilepsy Study Team (2013). Pretreatment EEG in childhood absence epilepsy: associations with attention and treatment outcome. Neurology. 81 (2), 150-156 (2013).
  4. Lorenzo, N. Y., et al. Intractable frontal lobe epilepsy: pathological and MRI features. Epilepsy research. 20 (2), 171-178 (1995).
  5. van Dellen, E., et al. Epilepsy surgery outcome and functional network alterations in longitudinal MEG: a minimum spanning tree analysis. NeuroImage. 86, 354-363 (2014).
  6. Shah, A. K., Mittal, S. Invasive electroencephalography monitoring: Indications and presurgical planning. Annals of Indian Academy of Neurology. 17 (Suppl 1), S89-S94 (2014).
  7. Whiting, P., et al. A systematic review of the effectiveness and cost-effectiveness of neuroimaging assessments used to visualise the seizure focus in people with refractory epilepsy being considered for surgery. Health technology assessment. 10 (4), 1-iv (2006).
  8. Lenkov, D. N., Volnova, A. B., Pope, A. R., Tsytsarev, V. Advantages and limitations of brain imaging methods in the research of absence epilepsy in humans and animal models. Journal of neuroscience methods. 212 (2), 195-202 (2013).
  9. Leach, J. P., Stephen, L. J., Salveta, C., Brodie, M. J. Which electroencephalography (EEG) for epilepsy? The relative usefulness of different EEG protocols in patients with possible epilepsy. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry. 77 (9), 1040-1042 (2006).
  10. Huppertz, H. J., et al. Localization of interictal delta and epileptiform EEG activity associated with focal epileptogenic brain lesions. NeuroImage. 13 (1), 15-28 (2001).
  11. Linder, C., et al. Comparison between dried blood spot and plasma sampling for therapeutic drug monitoring of antiepileptic drugs in children with epilepsy: A step towards home sampling. Clinical biochemistry. 50 (7-8), 418-424 (2017).
  12. Wegner, I., Wilhelm, A. J., Lambrechts, D. A., Sander, J. W., Lindhout, D. Effect of oral contraceptives on lamotrigine levels depends on comedication. Acta neurologica Scandinavica. 129 (6), 393-398 (2014).
  13. Palmio, J., et al. CSF and plasma adipokines after tonic-clonic seizures. Seizure. 39, 10-12 (2016).
  14. Hogg, M. C., et al. Elevation in plasma tRNA fragments precede seizures in human epilepsy. Journal of Clinical Investigation. 129 (7), 2946-2951 (2019).
  15. Ellul, M., Solomon, T. Acute encephalitis – diagnosis and management. Clinical medicine. 18 (2), 155-159 (2018).
  16. Diamond, M. L., et al. IL-1β associations with posttraumatic epilepsy development: a genetics and biomarker cohort study. Epilepsia. 55 (7), 1109-1119 (2014).
  17. Auvin, S., et al. Prospective clinical trials to investigate clinical and molecular biomarkers. Epilepsia. 58 (Suppl 3), 20-26 (2017).
  18. Weber, Y. G., Nies, A. T., Schwab, M., Lerche, H. Genetic biomarkers in epilepsy. Neurotherapeutics. 11 (2), 324-333 (2014).
  19. Fornari, R. V., et al. Rodent stereotaxic surgery and animal welfare outcome improvements for behavioral neuroscience. Journal of Visualized Experiments. (59), e3528 (2012).
  20. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable stereotaxic surgery in rodents. Journal of Visualized Experiments. (20), e880 (2008).
  21. Gardiner, T. W., Toth, L. A. Stereotactic Surgery and Long-Term Maintenance of Cranial Implants in Research Animals. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 38 (1), 56-63 (1999).
  22. Westergren, I., Johansson, B. B. Changes in physiological parameters of rat cerebrospinal fluid during chronic sampling: evaluation of two sampling methods. Brain Research Bulletin. 27 (2), 283-286 (1991).
  23. Soukupová, M., et al. Impairment of GABA release in the hippocampus at the time of the first spontaneous seizure in the pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Experimental Neurology. 257, 39-49 (2014).
  24. Soukupová, M., et al. Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats. Journal of Visualized Experiments. (141), e58455 (2018).
  25. Guarino, A., et al. Low-dose 7,8-Dihydroxyflavone Administration After Status Epilepticus Prevents Epilepsy Development. Neurotherapeutics. 19 (6), 1951-1965 (2022).
  26. Curia, G., Longo, D., Biagini, G., Jones, R. S. G., Avoli, M. The pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 143-157 (2008).
  27. Racine, R. J. Modification of seizure activity by electrical stimulation: II. Motor seizure. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 32 (3), 281-294 (1972).
  28. Zou, W., et al. Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System. Journal of Visualized Experiments. (130), e55852 (2017).
  29. . Blood sampling: Rat Available from: https://nc3rs.org.uk/3rs-resources/blood-sampling/blood-sampling-rat (2022)
  30. Powles-Glover, N., Kirk, S., Wilkinson, C., Robinson, S., Stewart, J. Assessment of toxicological effects of blood microsampling in the vehicle dosed adult rat. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 68 (3), 325-331 (2014).
  31. Zeller, W., Weber, H., Panoussis, B., Bürge, T., Bergmann, R. Refinement of blood sampling from the sublingual vein of rats. Laboratory Animal. 32 (4), 369-376 (1998).
  32. Wang, D., Zhao, Y., Yang, Y., Xie, H. Safety assessment of multiple repeated percutaneous punctures for the collection of cerebrospinal fluid in rats. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 54 (6), e10032 (2021).
  33. Möller, C., et al. Impact of repeated kindled seizures on heart rate rhythms, heart rate variability, and locomotor activity in rats. Epilepsy & Behavior. 92, 36-44 (2019).
  34. Espinosa-Garcia, C., Zeleke, H., Rojas, A. Impact of Stress on Epilepsy: Focus on Neuroinflammation-A Mini Review. International Journal of Molecular Sciences. 22 (8), 4061 (2021).
  35. Cassar, S. C., et al. Comparing levels of biochemical markers in CSF from cannulated and non-cannulated rats. Journal of Neuroscience Methods. 192 (2), 249-253 (2010).
  36. Huang, Y. L., Säljö, A., Suneson, A., Hansson, H. A. Comparison among different approaches for sampling cerebrospinal fluid in rats. Brain Research Bulletin. 41 (5), 273-279 (1996).
  37. Hattori, N., Takumi, A., Saito, K., Saito, Y. Effects of serial cervical or tail blood sampling on toxicity and toxicokinetic evaluation in rats. Journal of Toxicological Sciences. 45 (10), 599-609 (2020).
  38. Roncon, P., et al. MicroRNA profiles in hippocampal granule cells and plasma of rats with pilocarpine-induced epilepsy–comparison with human epileptic samples. Scientific Reports. 5, 14143 (2015).
  39. van Vliet, E. A., et al. Standardization procedure for plasma biomarker analysis in rat models of epileptogenesis: Focus on circulating microRNAs. Epilepsia. 58 (12), 2013-2024 (2017).
  40. Kirschner, M. B., et al. Haemolysis during sample preparation alters microRNA content of plasma. PLoS One. 6 (9), e24145 (2011).
  41. Grimm, H., et al. Advancing the 3Rs: innovation, implementation, ethics and society. Frontiers in Veterinary Science. 10, 1185706 (2023).
check_url/pt/65636?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Soukupová, M., Guarino, A., Asth, L., Marino, P., Barbieri, M., Simonato, M., Zucchini, S. Sampling Cerebrospinal Fluid and Blood from Lateral Tail Vein in Rats During EEG Recordings. J. Vis. Exp. (199), e65636, doi:10.3791/65636 (2023).

View Video