Summary

Tvåfotonkalciumavbildning av framhjärnans aktivitet hos vuxna zebrafiskar som beter sig

Published: July 28, 2023
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att utföra tvåfotonkalciumavbildning i den dorsala framhjärnan hos vuxna zebrafiskar.

Abstract

Vuxna zebrafiskar (Danio rerio) uppvisar en rik repertoar av beteenden för att studera kognitiva funktioner. De har också en miniatyrhjärna som kan användas för att mäta aktiviteter i olika hjärnregioner genom optiska avbildningsmetoder. Rapporter om registrering av hjärnaktivitet hos vuxna zebrafiskar har dock varit knapphändiga. Den aktuella studien beskriver procedurer för att utföra tvåfotonkalciumavbildning i den dorsala framhjärnan hos vuxna zebrafiskar. Vi fokuserar på åtgärder för att hindra vuxna zebrafiskar från att röra på huvudet, vilket ger stabilitet som möjliggör laserskanning av hjärnaktiviteten. De fastspända djuren kan röra sina kroppsdelar fritt och andas utan hjälpmedel. Proceduren syftar till att förkorta tiden för huvudstödsoperation, minimera hjärnans rörelser och maximera antalet neuroner som registreras. Här beskrivs också ett upplägg för att presentera en uppslukande visuell miljö under kalciumavbildning, som kan användas för att studera neurala korrelat som ligger till grund för visuellt utlösta beteenden.

Introduction

Kalciumfluorescensavbildning med genetiskt kodade indikatorer eller syntetiska färgämnen har varit en kraftfull metod för att mäta neuronal aktivitet hos djur som beter sig, inklusive icke-mänskliga primater, gnagare, fåglar och insekter1. Aktiviteten hos hundratals celler, upp till cirka 800 μm under hjärnans yta, kan mätas samtidigt med hjälp av multifotonavbildning 2,3. Aktiviteten hos specifika celltyper kan också mätas genom att uttrycka kalciumindikatorer i genetiskt definierade neuronala populationer. Tillämpning av avbildningsmetoden för modeller av små ryggradsdjur öppnar nya möjligheter inom neuronala beräkningar över hjärnregioner.

Zebrafiskar är ett mycket använt modellsystem inom neurovetenskaplig forskning. Zebrafisklarver cirka 6 dagar efter befruktning har använts för kalciumavbildning på grund av deras miniatyrhjärna och genomskinliga kropp4. Juvenila zebrafiskar (3-4 veckor gamla) används också för att studera de neurala mekanismer som ligger till grund för sensomotoriska banor 5,6. Den maximala prestationsnivån för komplexa beteenden, inklusive associativ inlärning och sociala beteenden, uppnås dock vid en högre ålder 7,8 år. Därför krävs ett tillförlitligt protokoll för att studera flera kognitiva funktioner i hjärnan hos vuxna zebrafiskar med hjälp av avbildningsmetoder. Medan zebrafisklarver och unga zebrafiskar kan bäddas in i agaros för in vivo-avbildning, lider vuxna zebrafiskar vid 2 månader eller äldre av hypoxi under sådana förhållanden och är fysiskt för starka för att hållas tillbaka av agaros. Därför krävs ett kirurgiskt ingrepp för att stabilisera hjärnan och göra det möjligt för djuret att andas fritt genom gälarna.

Här beskriver vi ett nackstödsprotokoll som innebär en ny design av en enda huvudbåge. Den förkortade operationstiden på 25 minuter är dubbelt så snabb som den tidigare metoden9. Vi beskriver också utformningen av inspelningskammaren (semi-sexkantig tank), huvudsteget och en snabblåsmekanism för att kombinera de två delarna9. Slutligen beskrivs också upplägget för att presentera en uppslukande visuell stimulans för att studera visuellt utlöst hjärnaktivitet och beteenden. Sammantaget kan de procedurer som beskrivs här användas för att utföra tvåfotonkalciumavbildning i genetiskt definierade cellpopulationer i en vuxen zebrafisk med fastspända huvud, vilket möjliggör undersökning av hjärnaktiviteter under olika beteendeparadigm.

Protocol

Alla djurförsök godkändes och utfördes i enlighet med riktlinjerna från Institutional Animal Care and Use Committee of Academia Sinica. Detaljer om forskningsverktygen finns i materialförteckningen. 1. Förberedelse av inspelningskammaren Förbered en halvsexkantig tank, en bottenplatta och ett huvudsteg (Figur 1A; Kompletterande filer 1-3). Huvudsteget består av två metallstolpar som är fästa …

Representative Results

Protokollet består av två delar: huvudstödskirurgi och tvåfotonkalciumavbildning av neuronala aktiviteter i framhjärnan. Operationens framgång definieras av djurets överlevnad och nackstödets stabilitet. Överlevnadsgraden kan förbättras avsevärt genom frekvent perfusion av 0,01 % TMS-lösning genom munnen under operationen. Fiskar bör återhämta sig från bedövning och andas aktivt inom 1-2 minuter efter att ha sänkts ner i akvarievatten. Kalciumavbildning med två foton möjliggör aktivitetsregistrering…

Discussion

Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för att hålla fast huvudet på vuxna zebrafiskar för kalciumavbildning med två fotoner. Det finns två viktiga steg för att uppnå ett nackstöd som är tillräckligt stabilt för laserskanning. Först måste huvudstången limmas fast på skallarnas specifika fästställen. Andra delar av skallen är ofta för tunna för att ge mekanisk stabilitet och kan till och med få frakturer vid starka kroppsrörelser. För det andra måste huden ovanför fästställena tas bort nogg…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Institute of Molecular Biology, Academia Sinica och National Science and Technology Council, Taiwan. Maskinverkstaden vid Institute of Physics, Academia Sinica hjälpte till att tillverka specialdesignade delar. Vi vill också tacka P. Argast (Friedrich Miescher Institute for Biomedical Research, Basel, Schweiz) för utformningen av huvudstegets snabblåsmekanism.

Materials

Acquisition card MBF Bioscience Vidrio vDAQ Microscope
Back-projection film Kimoto Diland screen – GSK present visual stimulus
Band-pass filter (510/80 nm) Chroma ET510/80m Microscope
Base plate for the semi-hexagonal tank custom made see supplemental files recording chamber
Camera filter (<875 nm) Edmund optics #86-106 Behavior recording
Camera filter (>700 nm) Edmund optics #43-949 Behavior recording
Camera lens Thorlabs MVL50M23 Behavior recording
Chameleon Vision-S Coherent Vision-S Laser
Circular plate for the head stage custom made see supplemental files recording chamber
Controller for piezo actuator Physik Instrumente  E-665. CR Microscope
Current amplifier Thorlabs TIA60 Microscope
Elitedent Q-6 Rolence Enterprise Q-6 Surgery: UV lamp
Emission Filter 510/80 nm Chroma ET510/80m Microscope
Head bar custom made see supplemental files recording chamber
Infrared light Thorlabs M810L3 Behavior recording
LED projector AAXA P2B LED Pico Projector present visual stimulus
Moist paper tissue (Kimwipe) Kimtech Science 34155 Surgery: moist paper tissue
Motorized XY sample stage Zaber X-LRM050 Microscope
Neutral Density Filters (50% Transmission) Thorlabs NE203B present visual stimulus
Ø1/2" Post Holder ThorLabs PH1.5V Surgery: hollow tube for cannon
Ø1/2" Stainless Steel Optical Post ThorLabs TR150/M Surgery: fish loading module
Objective lens 16x, 0.8NA Nikon CF175 Microscope
Oil-based modeling clay Ly Hsin Clay C4086 Surgery: head bar holder
Optical adhesive Norland Products NOA68 Surgery: UV curable glue
Photomultiplier tube Hamamatsu H11706P-40 Microscope
Piezo actuator Physik Instrumente  P-725.4CA PIFOC Microscope
Pockels Cell Conoptics M350-80-LA-BK-02 Microscope
Red Wratten filter (> 600 nm) Edmund optics #53-699 present visual stimulus
Resonant-Galvo Scan System INSS RGE-02 Microscope
Right-Angle Clamp for Ø1/2" Post ThorLabs RA90/M Surgery: fish loading module
Rotating Clamp for Ø1/2" Post ThorLabs SWC/M Surgery: fish loading module
ScanImage MBF Bioscience Basic version Microscope
Semi-hexagonal tank custom made see supplemental files recording chamber
Super-Bond C&B Kit Sun Medical Co. Super-Bond C&B Surgery: dental cement
Tricaine methanesulfonate Sigma Aldrich E10521 Surgery: anesthetic
USB Camera FLIR BFS-U3-13Y3M-C Behavior recording
Vetbond 3M 1469SB Surgery: tissue glue

Referências

  1. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  2. Chow, D. M., et al. Deep three-photon imaging of the brain in intact adult zebrafish. Nature Methods. 17 (6), 605-608 (2020).
  3. Mittmann, W., et al. Two-photon calcium imaging of evoked activity from L5 somatosensory neurons in vivo. Nature Neuroscience. 14 (8), 1089-1093 (2011).
  4. Friedrich, R. W., Jacobson, G. A., Zhu, P. Circuit neuroscience in zebrafish. Current Biology. 20 (8), R371-R381 (2010).
  5. Kappel, J. M., et al. Visual recognition of social signals by a tectothalamic neural circuit. Nature. 608 (7921), 146-152 (2022).
  6. Bartoszek, E. M., et al. Ongoing habenular activity is driven by forebrain networks and modulated by olfactory stimuli. Current Biology. 31 (17), 3861-3874 (2021).
  7. Valente, A., Huang, K. H., Portugues, R., Engert, F. Ontogeny of classical and operant learning behaviors in zebrafish. Learning & Memory. 19 (4), 170-177 (2012).
  8. Buske, C., Gerlai, R. Maturation of shoaling behavior is accompanied by changes in the dopaminergic and serotoninergic systems in zebrafish. Developmental Psychobiology. 54 (1), 28-35 (2012).
  9. Huang, K. H., et al. A virtual reality system to analyze neural activity and behavior in adult zebrafish. Nature Methods. 17 (3), 343-351 (2020).
  10. Rupprecht, P., Prendergast, A., Wyart, C., Friedrich, R. W. Remote z-scanning with a macroscopic voice coil motor for fast 3D multiphoton laser scanning microscopy. Biomedical Optics Express. 7 (5), 1656-1671 (2016).
  11. Papadopoulos, I. N., Jouhanneau, J. -. S., Poulet, J. F. A., Judkewitz, B. Scattering compensation by focus scanning holographic aberration probing (F-SHARP). Nature Photonics. 11 (2), 116-123 (2017).
  12. Torigoe, M., et al. Zebrafish capable of generating future state prediction error show improved active avoidance behavior in virtual reality. Nature Communications. 12 (1), 5712 (2021).

Play Video

Citar este artigo
Bandonil, J. S., Liao, Y., Fathi, A., Huang, K. Two-Photon Calcium Imaging of Forebrain Activity in Behaving Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (197), e65526, doi:10.3791/65526 (2023).

View Video