Her presenterer vi en detaljert visuell protokoll for å utføre modellen for venstre atrieligering (LAL) i fugleembryoet. LAL-modellen endrer den intrakardiale strømmen, noe som endrer belastningen på veggskjærspenningen, og etterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom. En tilnærming for å overvinne utfordringene i denne vanskelige mikrokirurgimodellen presenteres.
På grunn av sin firekammerede modne ventrikkelkonfigurasjon, enkle kultur, bildetilgang og effektivitet, er fugleembryoet en foretrukket virveldyrmodell for å studere kardiovaskulær utvikling. Studier som tar sikte på å forstå normal utvikling og medfødt hjertefeilprognose vedtar i stor grad denne modellen. Mikroskopiske kirurgiske teknikker blir introdusert for å endre de normale mekaniske lastemønstrene på et bestemt embryonalt tidspunkt og spore nedstrøms molekylær og genetisk kaskade. De vanligste mekaniske inngrepene er venstre vitelline veneligering, conotruncal banding og venstre atrieligering (LAL), modulerende intramuralt vaskulært trykk og veggskjærspenning på grunn av blodstrøm. LAL, spesielt hvis det utføres i ovo, er det mest utfordrende inngrepet, med svært små prøveutbytter på grunn av de ekstremt fine sekvensielle mikrokirurgiske operasjonene. Til tross for sin høye risiko, i ovo LAL er svært verdifull vitenskapelig som det etterligner hypoplastisk venstre hjerte syndrom (HLHS) patogenese. HLHS er en klinisk relevant, kompleks medfødt hjertesykdom observert hos nyfødte mennesker. En detaljert protokoll for in ovo LAL er dokumentert i denne artikkelen. Kort fortalt ble befruktede fugleembryoer inkubert ved 37,5 °C og 60 % konstant fuktighet vanligvis til de nådde Hamburger-Hamilton (HH) stadium 20 til 21. Eggeskallene ble sprukket åpne, og ytre og indre membraner ble fjernet. Embryoet ble forsiktig rotert for å eksponere venstre atriepære i det felles atriumet. Ferdigmonterte mikroknuter fra 10-0 nylonsuturer ble forsiktig plassert og bundet rundt venstre atrieknopp. Til slutt ble embryoet returnert til sin opprinnelige posisjon, og LAL ble fullført. Normale og LAL-instrumenterte ventrikler viste statistisk signifikante forskjeller i vevskomprimering. En effektiv rørledning for generering av LAL-modeller vil bidra til studier som fokuserer på synkronisert mekanisk og genetisk manipulasjon under den embryonale utviklingen av kardiovaskulære komponenter. På samme måte vil denne modellen gi en forstyrret cellekilde for vevskulturforskning og vaskulær biologi.
Medfødte hjertefeil (CHD) er strukturelle lidelser som oppstår på grunn av unormal embryonal utvikling1. I tillegg til genetiske forhold påvirkes patogenesen av endret mekanisk belastning 2,3. Hypoplastisk venstre hjerte syndrom (HLHS), en medfødt hjertesykdom, resulterer i en underutviklet ventrikkel / aorta ved fødselen4 med høy dødelighet 5,6. Til tross for de siste fremskrittene i den kliniske ledelsen, er den vaskulære veksten og utviklingsdynamikken til HLHS fortsatt uklar7. Ved normal embryonal utvikling stammer venstre ventrikkel (LV) endokard og myokard fra hjerteprogenitorer etter hvert som den tidlige embryonale hjerterørsdannelsen utvikler seg. Gradvis tilstedeværelse av myokardtrabekulasjon, fortykkelseslag og kardiomyocyttproliferasjon er rapportert2. For hemofagocytisk lymfohistiocytose observeres endret trabekulær remodellering og venstre ventrikkelavflatning, noe som ytterligere bidrar til myokardhypoplasi på grunn av unormal kardiomyocyttmigrasjon 2,8,9,10
Blant de mye brukte modellorganismer for å studere hjerteutvikling og forstå hemodynamiske forhold 11, er fugleembryoet foretrukket på grunn av dets firekammerede modne hjerte og dets enkle kultur11,12,13,14. På den annen side gir avansert bildetilgang av sebrafiskembryoer og transgene/knockout-mus klare fordeler11,12. Ulike mekaniske inngrep har blitt testet for fugleembryoet som endrer det intramurale trykket og veggskjærspenningen ved utvikling av kardiovaskulære komponenter. Disse modellene inkluderer venstre vitelline ligering, conotruncal banding15 og venstre atrieligering (LAL) 11,12,16. Den resulterende fenotypen på grunn av den endrede mekaniske belastningen kan observeres ca. 24-48 timer etter kirurgisk inngrep i studier med fokus på tidlig prognose11,13. LAL-intervensjonen er en populær teknikk for å begrense det funksjonelle volumet av venstre atrium (LA) ved å plassere en sutursløyfe rundt den atrioventrikulære åpningen. På samme måte er det også utført mikrokirurgiske inngrep som retter seg mot høyre atrieligering (RAL)17,18. På samme måte retter noen forskere seg mot venstre atrievedheng (LAA) ved hjelp av mikroklipp for å redusere volumet av LA19,20. I noen studier påføres en kirurgisk nylontråd på den atrioventrikulære noden19,21. Et av inngrepene som brukes er LAL, som kan etterligne HLHS, men som også er den vanskeligste modellen å utføre, med svært små prøveutbytter på grunn av de ekstremt fine mikrokirurgiske operasjonene som kreves. I vårt laboratorium utføres LAL i ovo mellom Hamburger-Hamilton (HH) trinn 20 og 21, før det felles atriumet er fullt septat 6,14,22,23. En kirurgisk sutur er plassert rundt LA, som endrer de intrakardiale blodstrømstrømmene. I LAL-modeller av HLHS observeres økt ventrikkelveggstivhet, endrede myofibervinkler og redusert LV-hulromsstørrelse14,24.
I denne videoartikkelen er det gitt en detaljert protokoll og tilnærming for in ovo LAL. Kort fortalt ble de befruktede fugleembryoene inkubert for mikrokirurgi, eggeskallet ble sprukket åpent, og ytre og indre membraner ble ryddet. Embryoet ble deretter sakte rotert slik at LA var tilgjengelig. En 10-0 nylon kirurgisk sutur ble bundet til atrieknoppen, og embryoet ble returnert til sin opprinnelige orientering, og fullførte LAL-prosedyren25. LAL og normale ventrikler sammenlignes for vevskomprimering og ventrikkelvolum via optisk koherenstomografi og basal histologi.
En vellykket utført LAL-modellrørledning, som beskrevet her, vil bidra til grunnleggende studier med fokus på embryonal utvikling av kardiovaskulære komponenter. Denne modellen kan også brukes sammen med genetiske manipulasjoner og avanserte avbildningsmodaliteter. På samme måte er den akutte LAL-modellen en stabil kilde til syke vaskulære celler for vevskultureksperimenter.
Ved hemofagocytisk lymfohistiocytose endres blodstrømmen på grunn av strukturelle defekter, noe som fører til unormal morfologi på venstre side 4,6. Den nåværende modellen gir et praktisk eksperimentelt system for bedre å forstå utviklingen av HLHS og kan til og med etterligne patogenesen8. Det er imidlertid utfordrende å etablere en fullt klinisk ekvivalent dyremodell for hemofagocytisk lymfohistiocytose. I tillegg til den aviær…
The authors have nothing to disclose.
Vi anerkjenner Tubitak 2247A lead researcher award 120C139 som gir finansiering. Forfatterne vil også takke PakTavuk Gıda. AS, Istanbul, Tyrkia, for å gi fruktbare egg og støtte kardiovaskulær forskning.
10-0 nylon surgical suture | Ethicon | ||
Elastica van Gieson staining kit | Sigma-Aldrich | 115974 | For staining connective tissues in histological sections |
Ethanol absolute | Interlab | 64-17-5 | For the sterilization step, 70% ethanol was obtained by diluting absolute ethanol with distilled water. |
Incubator | KUHL, Flemington, New Jersey-U.S.A | AZYSS600-110 | |
Kimwipes | Interlab | 080.65.002 | |
Microscissors | World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL | 555640S | Vannas STR 82 mm |
Parafilm M | Sigma-Aldrich | P7793-1EA | Sealing stage for egg reincubation |
Paraplast Bulk | Leica Biosystems | 39602012 | Tissue embedding medium |
Stereo Microscope | Zeiss Stemi 508 | Stemi 508 | Used at station 1 |
Stereo Microscope | Zeiss Stemi 2000-C | Stemi 2000-C | Used at station 2 |
Tweezer (Dumont 4 INOX #F4) | Adumont & Fils, Switzerland | Used to return the embryo | |
Tweezer (Super Fine Dumont #5SF) | World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL | 501985 | Used to remove the membranes on the embryo |