Her præsenterer vi en detaljeret visuel protokol til udførelse af venstre atriel ligation (LAL) model i fugleembryoet. LAL-modellen ændrer den intrakardiale strømning, som ændrer vægforskydningsspændingsbelastning, efterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom. En tilgang til at overvinde udfordringerne ved denne vanskelige mikrokirurgiske model præsenteres.
På grund af sin firekammerede modne ventrikulære konfiguration, lette kultur, billeddannelsesadgang og effektivitet er fugleembryoet en foretrukken hvirveldyrmodel til undersøgelse af kardiovaskulær udvikling. Undersøgelser, der sigter mod at forstå den normale udvikling og medfødt hjertefejlprognose, vedtager i vid udstrækning denne model. Mikroskopiske kirurgiske teknikker introduceres for at ændre de normale mekaniske belastningsmønstre på et specifikt embryonalt tidspunkt og spore den nedstrøms molekylære og genetiske kaskade. De mest almindelige mekaniske indgreb er venstre vitelline veneligering, conotruncal banding og venstre atriel ligering (LAL), modulering af det intramurale vaskulære tryk og vægforskydningsspænding på grund af blodgennemstrømning. LAL, især hvis det udføres i ovo, er den mest udfordrende intervention med meget små prøveudbytter på grund af de ekstremt fine sekventielle mikrokirurgiske operationer. På trods af sin høje risiko er in ovo LAL meget værdifuld videnskabeligt, da det efterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom (HLHS) patogenese. HLHS er en klinisk relevant, kompleks medfødt hjertesygdom observeret hos nyfødte. En detaljeret protokol for in ovo LAL er dokumenteret i dette papir. Kort fortalt blev befrugtede fugleembryoner inkuberet ved 37,5 °C og 60% konstant fugtighed, typisk indtil de nåede Hamburger-Hamilton (HH) trin 20 til 21. Æggeskallerne blev revnet op, og de ydre og indre membraner blev fjernet. Embryoet blev forsigtigt drejet for at udsætte den venstre atriale pære i det fælles atrium. Formonterede mikroknuder fra 10-0 nylonsuturer blev forsigtigt placeret og bundet rundt om venstre atriefnop. Endelig blev embryoet returneret til sin oprindelige position, og LAL blev afsluttet. Normale og LAL-instrumenterede ventrikler viste statistisk signifikante forskelle i vævskomprimering. En effektiv LAL-modelgenereringspipeline vil bidrage til undersøgelser, der fokuserer på synkroniseret mekanisk og genetisk manipulation under embryonal udvikling af kardiovaskulære komponenter. Ligeledes vil denne model give en forstyrret cellekilde til vævskulturforskning og vaskulær biologi.
Medfødte hjertefejl (CHD’er) er strukturelle lidelser, der opstår på grund af unormal embryonal udvikling1. Ud over genetiske tilstande påvirkes patogenesen af ændret mekanisk belastning 2,3. Hypoplastisk venstre hjertesyndrom (HLHS), en medfødt hjertesygdom, resulterer i en underudviklet ventrikel / aorta ved fødslen4 med en høj dødelighed 5,6. På trods af de seneste fremskridt i den kliniske styring er den vaskulære vækst og udviklingsdynamik i HLHS stadig uklar7. I normal embryonal udvikling stammer endokardiet i venstre ventrikel (LV) og myokardiet fra hjerteforfædre, efterhånden som dannelsen af det tidlige embryonale hjerte skrider frem. Den gradvise tilstedeværelse af myokardietrabekulation, fortykkelseslag og kardiomyocytproliferation rapporteres2. For HLHS observeres ændret trabekulær remodellering og fladning af venstre ventrikel, hvilket yderligere bidrager til myokardiehypoplasi på grund af unormal kardiomyocytmigration 2,8,9,10
Blandt de meget anvendte modelorganismer til at studere hjerteudvikling og forstå hæmodynamiske forhold 11 foretrækkes fugleembryoet på grund af dets modne hjerte med fire kamre og dets lette dyrkning11,12,13,14. På den anden side giver avanceret billeddannelse af zebrafiskembryoner og transgene / knockout-mus klare fordele11,12. Forskellige mekaniske indgreb er blevet testet for fugleembryoet, der ændrer det intramurale tryk og vægforskydningsspænding ved udvikling af kardiovaskulære komponenter. Disse modeller omfatter venstre vitelline ligation, conotruncal banding15 og venstre atriel ligation (LAL) 11,12,16. Den resulterende fænotype på grund af den ændrede mekaniske belastning kan observeres ca. 24-48 timer efter det kirurgiske indgreb i studier med fokus på tidlig prognose11,13. LAL-interventionen er en populær teknik til at indsnævre det funktionelle volumen af venstre atrium (LA) ved at placere en sutursløjfe omkring den atrioventrikulære åbning. Ligeledes er der også udført mikrokirurgiske indgreb, der er målrettet mod højre atriel ligering (RAL)17,18. På samme måde målretter nogle forskere det venstre atriale vedhæng (LAA) ved hjælp af mikroklip for at reducere volumenet af LA19,20. I nogle undersøgelser påføres en kirurgisk nylontråd på den atrioventrikulære knude19,21. Et af de anvendte indgreb er LAL, som kan efterligne HLHS, men som også er den sværeste model at udføre, med meget små prøveudbytter på grund af de ekstremt fine mikrokirurgiske operationer, der kræves. I vores laboratorium udføres LAL i ovo mellem Hamburger-Hamilton (HH) trin 20 og 21, før det fælles atrium er fuldt septat 6,14,22,23. En kirurgisk sutur er placeret omkring LA, som ændrer de intrakardiale blodgennemstrømningsstrømme. I LAL-modeller af HLHS observeres øget ventrikelvægsstivhed, ændrede myofibervinkler og nedsat LV-hulrumsstørrelse14,24.
I denne videoartikel gives en detaljeret protokol og tilgang til in ovo LAL. Kort fortalt blev de befrugtede fugleembryoner inkuberet til mikrokirurgi, æggeskallen blev revnet åben, og de ydre og indre membraner blev ryddet. Embryoet blev derefter langsomt roteret, så LA var tilgængeligt. En 10-0 nylonkirurgisk sutur blev bundet til atrieknoppen, og embryoet blev returneret til sin oprindelige orientering og afsluttede LAL-proceduren25. LAL og normale ventrikler sammenlignes for vævskomprimering og ventrikelvolumen via optisk kohærenstomografi og grundlæggende histologi.
En succesfuldt udført LAL-modelpipeline, som beskrevet her, vil bidrage til grundlæggende studier med fokus på embryonal udvikling af kardiovaskulære komponenter. Denne model kan også bruges sammen med genetiske manipulationer og avancerede billeddannelsesmetoder. Ligeledes er den akutte LAL-model en stabil kilde til syge vaskulære celler til vævskulturforsøg.
I HLHS ændres blodgennemstrømningen på grund af strukturelle defekter, hvilket fører til unormal morfologi på venstre side 4,6. Den nuværende model giver et praktisk eksperimentelt system til bedre at forstå udviklingen af HLHS og kan endda efterligne dets patogenese8. Det er imidlertid en udfordrende opgave at etablere en fuldt klinisk ækvivalent HLHS-dyremodel. Ud over den fugle-LAL-model, der præsenteres her, har nylige unders?…
The authors have nothing to disclose.
Vi anerkender Tubitak 2247A lead researcher award 120C139, der yder finansiering. Forfatterne vil også gerne takke PakTavuk Gıda. A. S., Istanbul, Tyrkiet, for at levere frugtbare æg og støtte den kardiovaskulære forskning.
10-0 nylon surgical suture | Ethicon | ||
Elastica van Gieson staining kit | Sigma-Aldrich | 115974 | For staining connective tissues in histological sections |
Ethanol absolute | Interlab | 64-17-5 | For the sterilization step, 70% ethanol was obtained by diluting absolute ethanol with distilled water. |
Incubator | KUHL, Flemington, New Jersey-U.S.A | AZYSS600-110 | |
Kimwipes | Interlab | 080.65.002 | |
Microscissors | World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL | 555640S | Vannas STR 82 mm |
Parafilm M | Sigma-Aldrich | P7793-1EA | Sealing stage for egg reincubation |
Paraplast Bulk | Leica Biosystems | 39602012 | Tissue embedding medium |
Stereo Microscope | Zeiss Stemi 508 | Stemi 508 | Used at station 1 |
Stereo Microscope | Zeiss Stemi 2000-C | Stemi 2000-C | Used at station 2 |
Tweezer (Dumont 4 INOX #F4) | Adumont & Fils, Switzerland | Used to return the embryo | |
Tweezer (Super Fine Dumont #5SF) | World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL | 501985 | Used to remove the membranes on the embryo |