Этот протокол фокусируется на неоваскуляризации роговицы, вызванной ожогом щелочи у мышей. Метод создает воспроизводимую и контролируемую модель заболевания роговицы для изучения патологического ангиогенеза и связанных с ним молекулярных механизмов, а также для тестирования новых фармакологических агентов для предотвращения неоваскуляризации роговицы.
Неоваскуляризация роговицы (CoNV), патологическая форма ангиогенеза, включает в себя прорастание кровеносных и лимфатических сосудов в аваскулярную роговицу из лимба и отрицательно влияет на прозрачность и зрение. Ожог щелочью является одной из наиболее распространенных форм травмы глаза, которая приводит к CoNV. В этом протоколе CoNV экспериментально индуцируется с помощью раствора гидроксида натрия контролируемым образом для обеспечения воспроизводимости. Модель ожога щелочью полезна для понимания патологии CoNV и может быть расширена для изучения ангиогенеза в целом из-за аваскулярности, прозрачности и доступности роговицы. В данной работе CoNV анализировали путем прямого исследования под препарирующим микроскопом и иммуноокрашивания плоских роговиц с использованием анти-CD31 мАТ. Лимфангиогенез выявляли на плоских роговицах методом иммуноокрашивания с использованием анти-LYVE-1 мАТ. Отек роговицы визуализировали и количественно оценивали с помощью оптической когерентной томографии (ОКТ). Таким образом, эта модель поможет усовершенствовать существующие методы неоваскуляризации и открыть новые стратегии лечения патологического глазного и экстраокулярного ангиогенеза.
Роговица представляет собой аваскулярную ткань, которая сохраняет свою прозрачность, устанавливая ангиогенную привилегию 1,2. Повреждение роговицы может привести к воспалению и развитию кровеносных и лимфатических сосудов, а также к фиброзу3. Неоваскуляризация роговицы (CoNV) приводит к ухудшению зрения и является второй по значимости причиной слепоты во всем мире4. CoNV поражает около 1,4 миллиона человек в Соединенных Штатах вгод5. CoNV может быть индуцирован различными факторами, включая химические ожоги, инфекции, воспаление и гипоксию 3,6. Химические ожоги являются одной из наиболее распространенных неотложных офтальмологических состояний, на их долю приходится около 13,2% глазных травм, и они требуют немедленной оценки и лечения7. Химические ожоги могут быть ожогами щелочью или кислотой, но ожоги щелочью вызывают более серьезные повреждения, поскольку щелочь проникает глубже в ткани8.
Мышиные модели ожога щелочью широко используются для изучения CoNV и заживления ран. По сравнению с моделью ангиогенеза роговичного кармана 9,10, модели ожога щелочью относительно просты в создании и также могут быть использованы для изучения воспаления роговицы, фиброза и пролиферации эпителия. Эти модели также более тесно связаны с клиническими химическими ожогами, чем модели ангиогенеза по шву роговицы11. При ожоге щелочью в аваскулярной роговице развиваются кровеносные сосуды из-за воспаления и дисбаланса антиангиогенных и проангиогенных факторов 1,2. Недостатками моделей ожога роговицы щелочью являются трудности в контроле площади и тяжести ожога щелочью, вариативность неоваскуляризации роговицы и непреднамеренное ожог прилегающих тканей из-за избытка раствора щелочи. Целью данного исследования является описание модели контролируемого ожога роговицы щелочью у мышей с использованием фильтровальной бумаги, предварительно замоченной в растворе гидроксида натрия. Эта модель может быть использована для изучения ангиогенных факторов, антиангиогенных терапевтических реагентов и других факторов и реагентов, которые могут модулировать воспаление и фиброз.
Роговица является отличной тканью для изучения ангиогенеза и воспаления, потому что она доступна и аваскулярна, а это означает, что неоваскуляризация может быть легко обнаружена и задокументирована. Ожог роговицы у кроликов, крыс и мышей был использован для изучения ангиогенеза роговицы, воспаления и помутнения, изъязвления, перфорации роговицы и фиброза15,16,17. Кроме того, мышиная модель ожога роговицы ценна для тестирования различных терапевтических стратегий ангиогенеза и воспаления, потому что иммунная система мышей тесно связанас иммунной системой человека. Доступность методов генетического манипулирования геномом мыши также делает этот вид отличным выбором для такогорода исследований. Задача в этом исследовании состояла в том, чтобы разработать метод ожога роговицы, который обеспечивал бы последовательную, воспроизводимую патофизиологию.
Модель ожога щелочью особенно полезна для фармакологического скрининга препаратов, которые модулируют ангиогенез, воспаление и фиброз. Минимальные требования к реагентам и ресурсам, простота выполнения щелочного ожога, а также преимущества короткой продолжительности протокола и непосредственного наблюдения за результатами делают ожог щелочью на роговице мыши основным выбором для фармакологического скрининга лекарственных средств. Тем не менее, при выполнении этой процедуры следует учитывать некоторые меры предосторожности, чтобы обеспечить согласованность и воспроизводимость. Во-первых, фильтровальная бумага должна быть помещена в центр роговицы, чтобы избежать ожога других областей глаза, особенно лимба, век и конъюнктивы; во-вторых, объем и концентрация NaOH должны быть подходящими для получения стабильных результатов от щелочного ожога роговицы. Фильтр не должен быть мокрым, но должен быть замочен в растворе NaOH. Размер и тип фильтра, а также нормаль и объем раствора, используемые в этом методе, оптимизированы таким образом, чтобы избежать переполнения NaOH. Использование фильтровальной бумаги другого размера или большего или меньшего объема NaOH может привести к несоответствиям в неоваскуляризации. В-третьих, важно предотвратить поглощение раствором NaOHСО2 из воздуха в помещении, немедленно затянув крышку пробирки раствора после использования и уменьшив соотношение воздух/раствор. Необходимо соблюдать осторожность при использовании свежих растворов щелочи, чтобы предотвратить несоответствия в неоваскуляризации и избежать изъязвления роговицы. Наконец, необходимо обширное промывание всего раствора NaOH из глаза и конъюнктивы физиологическим раствором, чтобы предотвратить дальнейшее повреждение роговицы и окружающих тканей глаза. Тщательное промывание роговицы и прилегающих тканей также предотвратит симблефарон.
Описанный здесь протокол является эффективным и надежным методом изучения патофизиологии ангиогенеза роговицы. Этот протокол может быть в дальнейшем использован для изучения воспаления роговицы, фиброза и заживления ран.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Благотворительной корпорацией SRB, Национальными институтами здравоохранения (NIH) P30EY002520 и неограниченным институциональным грантом от Исследовательской организации по предотвращению слепоты (RPB) для отделения офтальмологии Медицинского колледжа Бэйлора. W.L. поддерживается Фондом глаз рыцарей-тамплиеров в области офтальмологии.
0.9% Sodium Chloride Injection | Hospira | KL-7302 | |
30 G Needle | McKesson | 16-N3005 | |
A1R Confocal | Nikon Instruments | ||
Anti-CD31 | Novus Biologicals | NB100-1642R | |
Anti-LYVE-1 | Life technologies | 53-0443-82 | |
ASM Module | Heidelberg Engineering | Anterior segment objective | |
Biopsy Punch | McKesson | 16-1309 | |
BSA | Thermoscientific | 9048-46-8 | |
Coverslip | VWR International | 22X22-1-601640G | |
Dissection Microscope | AmScope | SM-4TZ-30WY-10M3 | |
Fluoromount-G | Electron Microscopy Sciences | 17984-25 | |
Forceps | Fine Science Tools | 15000-02 | |
Forceps | Fine Science Tools | 11049-10 | |
Forceps | Fisherbrand | 12-000-157 | |
Forceps | Roboz | RS-4905 | |
Gonak Hypromellose | Akorn | 17478006412 | |
GraphPad Prism 9 | GraphPad Sotware, Inc | ||
Heating pad | K&H Pet Products | 100213018 | |
Hoescht | Life Technologies | 62249 | |
HRA + OCT Spectralis | Heidelberg Engineering | ||
Insulin Syringe | Mckesson | 102-SN310C31516P | |
Kimwipe | Kimberly Clark Professional | 34155 | |
Micro Cover Glass | VWR | 48366-067 | |
Microscissors | Roboz | RS-5110 | |
Microscopic Slide | Fisherbrand | 12-550-15 | |
NaOH | Sigma Aldrich | 55881-500G | |
Neomycin and Polymyxin B Sulfates and Dexamethasone | Bausch & Lomb | 24208-0795-35 | |
Normal Serum | Jackson Immuno | 008-000-121 | |
Paraformaldehyde | Sigma Aldrich | 158127-500G | |
PBS | Gibco | 20012-027 | |
Proparacaine HCl | Bausch & Lomb | 24208073006 | |
Saline | Henry Schein | 1531042 | |
SMZ125 | Nikon Instruments | ||
Syringe 10 mL | McKesson | 16-S10C | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | TX1568-1 | |
Whatmann Filter Paper | Cytiva | WHA1003323 |