Il presente protocollo descrive le fasi di purificazione e i successivi studi di quattro diversi β-glucani fungini come potenziali molecole immunomodulatrici che potenziano le proprietà antitumorali della microglia contro le cellule di glioblastoma.
Una delle maggiori sfide nello sviluppo di terapie efficaci contro il glioblastoma è superare la forte soppressione immunitaria all’interno del microambiente tumorale. L’immunoterapia è emersa come una strategia efficace per trasformare la risposta del sistema immunitario contro le cellule tumorali. I macrofagi e le microglia associati al glioma (GAM) sono i principali motori di tali scenari anti-infiammatori. Pertanto, il miglioramento della risposta antitumorale nelle GAM può rappresentare una potenziale terapia coadiuvante per il trattamento dei pazienti con glioblastoma. In questo senso, le molecole fungine di β-glucano sono state a lungo conosciute come potenti modulatori immunitari. È stata descritta la loro capacità di stimolare l’attività immunitaria innata e migliorare la risposta al trattamento. Queste caratteristiche modulanti sono in parte attribuite alla loro capacità di legarsi ai recettori di riconoscimento dei pattern, che, curiosamente, sono molto espressi nei GAM. Pertanto, questo lavoro è focalizzato sull’isolamento, la purificazione e il successivo uso di β-glucani fungini per migliorare la risposta tumoricida della microglia contro le cellule di glioblastoma. Le linee cellulari di glioblastoma di topo (GL261) e microglia (BV-2) sono utilizzate per testare le proprietà immunomodulatorie di quattro diversi β-glucani fungini estratti da funghi pesantemente utilizzati nell’attuale industria biofarmaceutica: Pleurotus ostreatus, Pleurotus djamor, Hericium erinaceus e Ganoderma lucidum. Per testare questi composti, sono stati eseguiti saggi di co-stimolazione per misurare l’effetto di un mezzo pre-attivato condizionato dalla microglia sulla proliferazione e l’attivazione dell’apoptosi nelle cellule di glioblastoma.
Nonostante l’avvento di nuove conquiste nel campo della neuro-oncologia, l’aspettativa di vita dei pazienti con glioblastoma rimane scarsa. Le terapie gold standard contro i tumori cerebrali si basano sulla fusione di chirurgia, radioterapia e chemioterapia. Tuttavia, nell’ultimo decennio, l’immunoterapia è emersa come una potente strategia per trattare diversi tipi di cancro1. Pertanto, la possibilità di sfruttare la risposta immunitaria del corpo contro le cellule tumorali è recentemente diventata il quarto pilastro dell’oncologia.
È noto da tempo che una delle maggiori sfide nel campo è quella di superare la forte immunosoppressione trovata all’interno del microambiente tumorale2. In particolare, nel caso del glioblastoma, una delle forme più comuni e aggressive di cancro al cervello, svelare percorsi chiave che orchestrano tali scenari pro-tumorali e trovare nuovi composti che potrebbero contrastare la risposta deprimente del sistema immunitario potrebbe aprire la strada a future terapie contro questa malattia incurabile.
Il cervello possiede le proprie cellule del sistema immunitario e il tipo di cellula più rilevante sono le microglia. Queste cellule hanno dimostrato di avere un comportamento piuttosto complesso in diverse malattie centrali3. Nel caso di tumori cerebrali primari (ad esempio, glioblastoma), queste cellule sono spostate verso un fenotipo anti-infiammatorio che supporta le cellule tumorali per colonizzare il parenchima cerebrale3. Numerose pubblicazioni hanno migliorato il ruolo principale di queste cellule durante la progressione del tumore. Una delle ragioni principali di ciò è che la microglia associata al glioma e i macrofagi infiltrati (GAM) rappresentano un terzo della massa tumorale totale, suggerendo così l’influenza inequivocabile dei loro stati di attivazione durante la progressione del tumore cerebrale 4,5.
In questo senso, i β-glucani fungini sono stati descritti come potenti molecole che innescano risposte immunitarie efficaci, tra cui la fagocitosi e la produzione di fattori pro-infiammatori, portando all’eliminazione di agenti perniciosi 6,7,8,9,10. I β-glucani fungini sono stati generalmente studiati utilizzando estratti di diverse parti di funghi. Tuttavia, l’attribuzione di effetti specifici richiede la sua purificazione per evitare ambiguità e per essere in grado di comprendere il meccanismo d’azione di tali molecole come agenti immunomodulatori8.
In questo lavoro, i β-glucani solubili sono purificati dal corpo fruttifero di quattro diversi funghi, regolarmente impiegati come funghi commestibili (Pleurotus ostreatus e Pleurotus djamor) e medicinali (Ganoderma lucidum e Hericium erinaceus). In particolare, questi quattro funghi hanno un grande uso nell’industria alimentare e farmaceutica e sono stati prodotti nell’ambito di un’economia circolare rispettosa dell’ambiente in un’impresa commerciale (vedi Tabella dei materiali).
Al fine di gettare le basi per l’uso futuro di β-glucani fungini nelle terapie del cancro al cervello, strategie di purificazione ben definite e studi preclinici che approfondiscono la loro presunta interazione con le cellule del sistema immunitario sono essenziali per valutare il loro potenziale ruolo come mediatori antitumorali. Questo lavoro descrive i numerosi passaggi di isolamento e purificazione necessari per recuperare i β-glucani solubili contenuti all’interno dei corpi fruttiferi del fungo selezionato. Una volta purificate con successo, le cellule della microglia vengono attivate per migliorare il loro fenotipo infiammatorio. Le cellule di glioblastoma di topo (GL261) sono rivestite con un diverso mezzo condizionato dalla microglia, precedentemente trattato con questi estratti, e quindi viene valutato il suo effetto sul comportamento delle cellule tumorali. È interessante notare che studi pilota del nostro laboratorio (dati non mostrati) hanno scoperto come la microglia pro-infiammatoria possa rallentare la migrazione delle cellule tumorali e le proprietà di invasione non solo nelle cellule di glioblastoma ma anche in altre linee cellulari tumorali. Questo lavoro multidisciplinare può fornire uno strumento utile per i ricercatori oncologici per testare composti promettenti in grado di aumentare la risposta immunitaria in molti diversi tipi di tumori.
Questo lavoro descrive l’uso di tecniche consolidate per isolare, purificare e caratterizzare con successo il contenuto di SβG da quattro diversi funghi. I risultati hanno mostrato come dopo l’estrazione con acqua calda di SMP, ottenuti da P. ostreatus, P. djamor, G. lucidum e H. erinaceus, seguita da un trattamento idrolitico con α-amilasi, glucosidasi e proteasi, il contenuto di α-glucano e proteine è stato ridotto, arricchendo così significativamente la quantità di SβG puri.<…
The authors have nothing to disclose.
Vorremmo ringraziare la dott.ssa Vasiliki Economopoulos per il suo script interno per misurare il segnale di fuluorescenza in ImageJ. Vorremmo anche ringraziare la CITIUS (Università di Siviglia) e tutto il loro personale per il loro sostegno durante la manifestazione. Questo lavoro è stato sostenuto dallo spagnolo FEDER I + D + i-USE, US-1264152 dell’Università di Siviglia, e dal Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades PID2021-126090OA-I00
8-well chamber slides | Thermo Fisher, USA | 171080 | |
Air-drying oven | J.P. Selecta S.A., Spain | 2000210 | |
Albumin | Sigma-Aldrich, St. Louis | A7030 | |
Alcalase | Novozymes, Denmark | protease | |
Alexa Fluor 488 | Thermofisher, USA | A32731 | |
Alexa Fluor 647 | Thermofisher, USA | A32728 | |
Blade mill | Retsch, Germany | SM100 | |
Bovine Serum Albumin | MERK, Germany | A9418 | |
Cellulose tubing membrane | Sigma-Aldrich, St. Louis | D9402 | |
Centrifuge | MERK, Germany | Eppendorf, 5810R | |
Colocalisation pluggins | ImageJ | (https://imagej.net/imaging/colocalization-analysis ) | |
DAPI | MERK, Germany | 28718-90-3 | |
Dextrans | Pharmacosmos, Holbalk, Denmark | Dextran 410, 80, 50 | |
Dulbecco´s modified Eagle´s medium, Gluta MAXTM | Gibco, Life Technologies, Carlsbad, CA, USA | 10564011 | |
Extenda (α- Amylase/Glucoamylase) | Novozymes, Denmark | ||
Fetal bovine serum | Gibco, Life Technologies, Carlsbad, CA, USA | A4736301 | |
FT-IR spectromete | Bruker-Vertex, Switzerland | VERTEX 70v | |
Graphing and analysis software | GraphPad Prism (GraphPad Software, Inc.) | ||
H2SO4 | |||
HPLC system | Waters Corp, Milford, MA, USA | Waters 2695 HPLC | |
Incubator | Eppedorf | Galaxy 170S | |
Mass Spectometer | Q Exactive GC, Thermo Scientific | 725500 | |
Paraformaldehyde | MERK, Germany | P6148 | |
Penicillin/streptomycin | Sigma-Aldrich, St. Louis | P4458 | |
pH meter | Crison, Barcelona, Spain | Basic 20 | |
Phosphate-buffered saline | Gibco, Life Technologies, Carlsbad, CA, USA | 1010-015 | |
Rabbit Cleaved Caspase-3 (Asp175) Antibody | Abcam, UK | ab243998 | |
Rat Ki-67 Monoclonal | Thermofisher, USA | MA5-14520 | |
Rotary evaporator | Büchi Ibérica S.L.U., Spain | El Rotavapor R-100 | |
Ultra-hydrogel linear gel-filtration column (300 mm x 7.8 mm) | Waters Corp, Milford, MA, USA | WAT011545 | |
UV-Visible spectrophotometer | Amersham Bioscience, UK | Ultrospec 2100 pro | |
VectaMount | Vector Laboratories, C.A, USA | H-5000-60 | |
Water bath | J.P. Selecta S.A., Spain | ||
Zeiss LSM 7 DUO Confocal Microscope System. | Zeiss, Germany | ||
β-glucan Assay Kit | Megazyme, Bray, Co. Wicklow, Ireland | K-BGLU | |
β-glucans | Setas y Hongos del Sur, S.L. | Supplied the four variants of mushrooms |