Summary

顕微透析システムを用いた意識ラットからの海馬細胞外液のリアルタイム動的採取

Published: October 21, 2022
doi:

Summary

ここでのプロトコルは、マイクロ透析システムを使用して、覚醒しているラットの海馬からの細胞外液の詳細なリアルタイム動的サンプリングを提供します。

Abstract

さまざまな中枢神経系(CNS)疾患が海馬細胞外液(HECF)の組成の変化に関連しています。しかし、意識のあるラットからリアルタイムでHECFを取得することが困難であるため、CNS疾患の進行の評価と民族医学療法の有効性は長い間制限されてきました。心強いことに、脳のマイクロダイアリシス技術は、動的観察、定量分析、および小さなサンプリングサイズの利点を備えた連続サンプリングに使用できます。これにより、生きている動物の脳内の伝統的なハーブとその代謝物からの化合物の細胞外液含有量の変化をモニタリングすることができます。したがって、この研究の目的は、脳脊髄液マイクロ透析プローブを3次元脳定位固定装置を使用してSprague Dawley(SD)ラットの海馬領域に正確に移植し、20 kDaを超える分子量を遮断することでした。次に、高品質のHECFを意識のあるラットから、2.87 nL /分〜2.98 mL /分の範囲で調整可能なサンプリングレートのマイクロ透析サンプリング制御システムを使用して取得しました。結論として、私たちのプロトコルは、マイクロダイアリシス技術の助けを借りて、覚醒ラットでHECFを取得するための効率的、迅速、かつ動的な方法を提供し、CNS関連疾患の病因をさらに調査し、薬効を評価する無限の可能性を提供します。

Introduction

神経変性疾患、外傷性脳損傷、高地低酸素誘発性脳損傷、虚血性脳卒中などの罹患率の高い中枢神経系(CNS)疾患は、世界中で死亡率が上昇する重要な原因です1,2,3。特定の脳領域におけるサイトカインおよびタンパク質変化のリアルタイムモニタリングは、CNS疾患の診断精度および投薬後の脳薬物動態学的研究に寄与する。従来の科学的研究では、特定の物質の検出および薬物動態研究のために、脳組織ホモジネートまたは動物間質性脳液の手動収集を使用します。ただし、これには、サンプルサイズが限られている、インジケーターの変化を動的に観察できない、サンプリング品質が不均一であるなど、いくつかの欠点があります4,5,6間質液である脳脊髄液は、脳と脊髄を機械的損傷から保護します。血液脳関門(BBB)7が存在するため、その組成は血清の組成とは異なります。脳脊髄液サンプルの直接分析は、CNS病変のメカニズムと創薬の開示をより助長します。必然的に、注射器を介して大槽および脳室から直接手動で取得される脳脊髄液サンプルには、血液汚染、サンプル収集のランダムな可能性、量の不確実性、および複数の検索の可能性がほとんどないという欠点があります8,9。さらに注目すべきことに、従来の間質性脳液サンプリング法は、損傷した脳領域からサンプルを得ることができず、特定の脳領域におけるCNS疾患の病因の探索および標的民族医学療法の有効性評価を妨げる9,10

脳微小透析は、覚醒動物11において間質性脳液をサンプリングする技術である。微小透析システムは、脳に埋め込まれたプローブの助けを借りて血管透過性を模倣します。微小透析プローブは半透膜で武装しており、特定の脳領域に移植されます。等張性人工脳脊髄液(ACSF)による灌流後、透析された間質性脳液は、小さなサンプルサイズ、連続サンプリング、および動的観察の利点により良好に収集できます12,13。位置に関しては、脳微小透析プローブは、関心のある脳構造または頭蓋貯水槽に選択的に埋め込むことができる14。海馬細胞外液(HECF)中の内因性物質の異常なレベルの観察は、CNS疾患の発生または疾患の病因を示唆しています。いくつかの研究は、統合失調症のD-アミノ酸、アルツハイマー病のβ-アミロイドおよびタウタンパク質、外傷性脳損傷のニューロフィラメント軽鎖、低酸素虚血性脳症のユビキチンカルボキシ末端加水分解酵素L1などのCNS疾患のバイオマーカーを脳脊髄液で分析できることを示しました15,16,17。.脳微小透析サンプリング技術に基づく化学分析法は、特定の脳領域に拡散および分布する民族医学の有効成分などの外因性化合物の動的変化を監視するために使用することができる14

この記事では、覚醒ラットにおける動的HECF取得の特定のプロセスを紹介し、その浸透圧を測定してサンプルの品質を確保します。

Protocol

実験プロトコルは、成都中医薬大学の実験動物の使用および施設動物管理および使用委員会の要件に従って実施されました(記録番号:2021-11)。雄のSprague Dawley(SD)ラット(280 ± 20 g、6〜8週齢)を本研究に使用した。 1. 脳微小透析プローブ埋入手術 ラット麻酔の導入と維持には、それぞれ3%と1.5%のイソフルランを使用し、0.6 L / minの空気酸素混合物中の動物?…

Representative Results

上記の実験プロトコルおよび表1に設定されたサンプリングパラメータに従って、設定されたサンプリングレートで水様、無色、および透明なラットHECFが得られた(図1K)。得られたラットHECFの浸透圧は290-310mOsm/Lであり、これは間接的にサンプルの品質を保証することができる18,19。 <p class="jove_content biglegend" fo:ke…

Discussion

中枢神経系疾患の病因はまだ完全には理解されておらず、新しい治療法や薬の開発を妨げています。研究によると、ほとんどのCNS疾患は海馬病変と密接に関連しています20、2122提案された脳微小透析技術は、脳の特定の領域、特に海馬を標的とすることができるため、HECFを収集する従来のアプローチとは一線を画し?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、中国国家自然科学基金会(82104533)、四川省科学技術局(2021YJ0175)、および中国ポスドク科学基金会(2020M683273)の支援を受けました。著者らは、Tri-Angels D&H Trading Pteのシニア機器エンジニアであるYuncheng Hong氏に感謝の意を表します。Ltd.(シンガポール)は、マイクロダイアリシス技術の技術サービスを提供しています。

Materials

 Air-drying oven Suzhou Great Electronic Equipment Co., Ltd GHG-9240A
Animal anesthesia system Rayward Life Technology Co., Ltd R500IE
Animal temperature maintainer Rayward Life Technology Co., Ltd 69020
Artificial cerebrospinal fluid Beijing leagene biotech. Co., Ltd CZ0522
Brain microdialysis probe  CMA Microdialysis AB T56518
Catheter  CMA Microdialysis AB T56518
Covance infusion harness Instech Laboratories, Inc. CIH95
Denture base resins Shanghai Eryi Zhang Jiang Biomaterials Co., Ltd 190732
Electric cranial drill Rayward Life Technology Co., Ltd 78001
Electric shaver Rayward Life Technology Co., Ltd CP-5200
Free movement tank for animals  CMA Microdialysis AB CMA120
Heparin sodium injection Chengdu Haitong Pharmaceutical Co., Ltd H51021208
Iodophor Sichuan Lekang Pharmaceutical Accessories Co., Ltd 202201
Isofluran Rayward Life Technology Co., Ltd R510-22
Microdialysis catheter stylet  CMA Microdialysis AB 8011205
Microdialysis collection tube  CMA Microdialysis AB 7431100
Microdialysis collector  CMA Microdialysis AB CMA4004
Microdialysis fep tubing  CMA Microdialysis AB 3409501
Microdialysis in vitro stand  CMA Microdialysis AB CMA130
Microdialysis microinjection pump  CMA Microdialysis AB 788130
Microdialysis syringe (1.0 mL)  CMA Microdialysis AB 8309020
Microdialysis tubing adapter  CMA Microdialysis AB 3409500
Non-absorbable surgical sutures Shanghai Tianqing Biological Materials Co., Ltd S19004
Ophthalmic forceps Rayward Life Technology Co., Ltd F12016-15
Osmometer Löser OM 807
Sodium hyaluronate eye drops URSAPHARM Arzneimittel GmbH H20150150
Stereotaxie apparatus Rayward Life Technology Co., Ltd 68025
Surgical scissors Rayward Life Technology Co., Ltd S14014-15
Surgical scissors Shanghai Bingyu Fluid technology Co., Ltd BY-103
Syringe needle  CMA Microdialysis AB T56518
Trypsin solution Boster
Biological Technology, Ltd.
PYG0107
Ultrasonic cleaner Guangdong Goote Ultrasonic Co., Ltd KMH1-240W8101

Referências

  1. Erkkinen, M. G., Kim, M. O., Geschwind, M. D. Clinical neurology and epidemiology of the major neurodegenerative diseases. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 10 (4), 033118 (2018).
  2. Salehi, A., Zhang, J. H., Obenaus, A. Response of the cerebral vasculature following traumatic brain injury. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 37 (7), 2320-2339 (2017).
  3. Kurtzman, R. A. e. m. 3., Caruso, J. L. High-altitude illness death investigation. Academic Forensic Pathology. 8 (1), 83-97 (2018).
  4. Matsumoto, T., et al. Pharmacokinetic study of Ninjin’yoeito: Absorption and brain distribution of Ninjin’yoeito ingredients in mice. Journal of Ethnopharmacology. 279, 114332 (2021).
  5. Mahat, M. Y., et al. An improved method of transcutaneous cisterna magna puncture for cerebrospinal fluid sampling in rats. Journal of Neuroscience Methods. 211 (2), 272-279 (2012).
  6. Ceaglio, N., et al. High performance collection of cerebrospinal fluid in rats: evaluation of erythropoietin penetration after osmotic opening of the blood-brain barrier. Journal of Neuroscience Methods. 219 (1), 70-75 (2013).
  7. Bothwell, S. W., Janigro, D., Patabendige, A. Cerebrospinal fluid dynamics and intracranial pressure elevation in neurological diseases. Fluids and Barriers of the CNS. 16 (1), 9 (2019).
  8. Barthel, L., et al. A step-by-step guide for microsurgical collection of uncontaminated cerebrospinal fluid from rat cisterna magna. Journal of Neuroscience Methods. 352, 109085 (2021).
  9. Zhao, Y., Yang, Y., Wang, D. X., Wang, J., Gao, W. Y. Cerebrospinal fluid amino acid metabolite signatures of diabetic cognitive dysfunction based on targeted mass spectrometry. Journal of Alzheimer’s Disease. 86 (4), 1655-1665 (2022).
  10. Lim, N. K., et al. An improved method for collection of cerebrospinal fluid from anesthetized mice. Journal of Visualized Experiments. (133), e56774 (2018).
  11. Hendrickx, S., et al. A sensitive capillary LC-UV method for the simultaneous analysis of olanzapine, chlorpromazine and their FMO-mediated N-oxidation products in brain microdialysates. Talanta. 162, 268-277 (2017).
  12. Chefer, V. I., Thompson, A. C., Zapata, A., Shippenberg, T. S. Overview of brain microdialysis. Current Protocols in Neuroscience. , (2009).
  13. Hammarlund-Udenaes, M. Microdialysis as an important technique in systems pharmacology-a historical and methodological review. The AAPS Journal. 19 (5), 1294-1303 (2017).
  14. Anderzhanova, E., Wotjak, C. T. Brain microdialysis and its applications in experimental neurochemistry. Cell and Tissue Research. 354 (1), 27-39 (2013).
  15. Mohammadi, A., Rashidi, E., Amooeian, V. G. Brain, blood, cerebrospinal fluid, and serum biomarkers in schizophrenia. Psychiatry Research. 265, 25-38 (2018).
  16. Lashley, T., et al. Molecular biomarkers of Alzheimer’s disease: progress and prospects. Disease Models & Mechanisms. 11 (5), 031781 (2018).
  17. Kawata, K., Tierney, R., Langford, D. Blood and cerebrospinal fluid biomarkers. Handbook of Clinical Neurology. 158, 217-233 (2018).
  18. Zhao, Q. P., et al. Protective effects of dehydrocostuslactone on rat hippocampal slice injury induced by oxygen-glucose deprivation/reoxygenation. International Journal of Molecular Medicine. 42 (2), 1190-1198 (2018).
  19. Wang, X. B. . Protective effects of dehydrocostuslactone on oxygen-glucose deprivation injury in rat hippocampal slices. , (2017).
  20. Coimbra-Costa, D., Alva, N., Duran, M., Carbonell, T., Rama, R. Oxidative stress and apoptosis after acute respiratory hypoxia and reoxygenation in rat brain. Redox Biology. 12, 216-225 (2017).
  21. Liu, H. Y., Chou, K. H., Chen, W. T. Migraine and the Hippocampus. Current Pain and Headache Reports. 22 (2), 13 (2018).
  22. Toda, T., Parylak, S. L., Linker, S. B., Gage, F. H. The role of adult hippocampal neurogenesis in brain health and disease. Molecular Psychiatry. 24 (1), 67-87 (2019).
  23. Wang, P., Lo Cascio, F., Gao, J., Kayed, R., Huang, X. F., F, X. Binding and neurotoxicity mitigation of toxic tau oligomers by synthetic heparin like oligosaccharides. Chemical Communications. 54 (72), 10120-10123 (2018).
  24. Han, J. Y., Li, Q., Ma, Z. Z., Fan, J. Y. Effects and mechanisms of compound Chinese medicine and major ingredients on microcirculatory dysfunction and organ injury induced by ischemia/reperfusion. Pharmacology & Therapeutics. 177, 146-173 (2017).
  25. Peng, T. M., et al. Anti-inflammatory effects of traditional Chinese medicines on preclinical in vivo models of brain ischemia-reperfusion-injury: Prospects for neuroprotective drug discovery and therapy. Frontiers in Pharmacology. 10, 204 (2019).
  26. König, M., Thinnes, A., Klein, J. Microdialysis and its use in behavioural studies: Focus on acetylcholine. Journal of Neuroscience Methods. 300, 206-215 (2018).
  27. Liu, M. Z., Wang, P., Yu, X. M., Dong, G. C., Yue, J. Intracerebral microdialysis coupled to LC-MS/MS for the determination tramadol and its major pharmacologically active metabolite O-desmethyltramadol in rat brain microdialysates. Drug Testing and Analysis. 9 (8), 1243-1250 (2017).
  28. de Lima Oliveira, M., et al. Cerebral microdialysis in traumatic brain injury and subarachnoid hemorrhage: state of the art. Neurocritical Care. 21 (1), 152-162 (2014).
  29. Amiridze, N., Dang, Y., Brown, O. R. Hydroxyl radicals detected via brain microdialysis in rats breathing air and during hyperbaric oxygen convulsions. Redox Report. 4 (4), 165-170 (1999).
  30. Chang, H. Y., Morrow, K., Bonacquisti, E., Zhang, W., Shah, D. K. Antibody pharmacokinetics in rat brain determined using microdialysis. MABS. 10 (6), 843-853 (2018).
  31. Wan, H. Y., et al. Pharmacokinetics of seven major active components of Mahuang decoction in rat blood and brain by LC-MS/MS coupled to microdialysis sampling. Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 393 (8), 1559-1571 (2020).
  32. Zheng, H. Z., et al. Pharmacokinetic analysis of Huangqi Guizhi Wuwu decoction on blood and brain tissue in rats with normal and cerebral ischemia-reperfusion Injury by microdialysis with HPLC-MS/MS. Drug Design Development and Therapy. 14, 2877-2888 (2020).
  33. Bongaerts, J., et al. Sensitive targeted methods for brain metabolomic studies in microdialysis samples. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 161, 192-205 (2018).
  34. Zhang, Y. Q., Jiang, N., Yetisen, A. K. Brain neurochemical monitoring. Biosensors and Bioelectronics. 189, 113351 (2021).

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Citar este artigo
Wang, X., Xie, N., Zhang, Y., Meng, X., Hou, Y., Zhang, S. Real-Time Dynamic Collection of Hippocampal Extracellular Fluid from Conscious Rats Using a Microdialysis System. J. Vis. Exp. (188), e64530, doi:10.3791/64530 (2022).

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