Summary

Mänskliga mikroglialiknande celler: Differentiering från inducerade pluripotenta stamceller och de vitro-feocytanalys av levande celler med hjälp av humana synaptosomer

Published: August 18, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver differentieringsprocessen av humaninducerade pluripotenta stamceller (iPSC) till mikroglialiknande celler för in vitro-experiment. Vi inkluderar också en detaljerad procedur för att generera humana synaptosomer från iPSC-härledda lägre motorneuroner som kan användas som ett substrat för in vitro-fagocytosanalyser med hjälp av levande cellavbildningssystem.

Abstract

Microglia är de bosatta immuncellerna av myeloiskt ursprung som upprätthåller homeostas i hjärnans mikromiljö och har blivit en nyckelspelare i flera neurologiska sjukdomar. Att studera mänsklig mikroglia i hälsa och sjukdom utgör en utmaning på grund av den extremt begränsade tillgången på mänskliga celler. Inducerade pluripotenta stamceller (iPSC) som härrör från mänskliga individer kan användas för att kringgå denna barriär. Här demonstreras hur man kan differentiera humana iPSC till mikroglialiknande celler (iMG) för in vitro-experiment . Dessa iMGs uppvisar de förväntade och fysiologiska egenskaperna hos microglia, inklusive mikroglialiknande morfologi, uttryck av korrekta markörer och aktiv fagocytos. Dessutom tillhandahålls dokumentation för isolering och märkning av synaptosomsubstrat härledda från humana iPSC-härledda lägre motorneuroner (i3LMN). En live-cell, longitudinell avbildningsanalys används för att övervaka uppslukandet av humana synaptosomer märkta med ett pH-känsligt färgämne, vilket möjliggör undersökningar av iMG: s fagocytiska kapacitet. Protokollen som beskrivs häri är i stort sett tillämpliga på olika områden som undersöker mänsklig mikrogliabiologi och mikroglias bidrag till sjukdom.

Introduction

Microglia är de inneboende immuncellerna i centrala nervsystemet (CNS) och spelar en avgörande roll för att utveckla CNS. Microglia är också viktiga i den vuxna hjärnan för att upprätthålla homeostas och aktivt svara på trauma och sjukdomsprocesser. Kumulativa bevis visar att mikroglia är viktiga bidragsgivare till patogenesen av flera neuroutvecklings- och neurodegenerativa sjukdomar 1,2. Även om nuvarande kunskap om mikroglialbiologi huvudsakligen har härletts från musmodeller, har nyligen genomförda studier belyst viktiga skillnader mellan murin och mänsklig mikroglia, vilket understryker behovet av att utveckla teknik för att studera genetik och biologiska funktioner hos mänsklig mikroglia 3,4. Isolering av mikroglia från dissekerad primärvävnad kan allvarligt modifiera mikrogliaegenskaper5, vilket potentiellt förvirrar resultat som erhållits med sådana celler. Det övergripande målet med denna metod är att differentiera humana iPSC till iMGs och därigenom tillhandahålla ett cellodlingssystem för att studera human mikroglia under basala förhållanden. Dessutom ingår en fagocytosanalys med ett helt mänskligt modellsystem häri som ett sätt att studera funktionaliteten hos iMGs, både som ett kvalitetskontrollmått och för att bedöma iMG-dysfunktion i samband med sjukdom.

Flera protokoll för mikrogliadifferentiering från iPSC har nyligen dykt upp i litteraturen 6,7,8,9,10. Potentiella nackdelar med vissa protokoll inkluderar förlängda eller långa perioder av differentiering, tillägg av flera tillväxtfaktorer och / eller komplexa experimentella förfaranden 6,9,10. Här demonstreras en “användarvänlig” differentieringsmetod som rekapitulerar aspekter av mikroglia-ontogeni genom differentiering av iPSC till prekursorceller som kallas primitiva makrofagprekursorer (PMP)7,11. PMP: er genereras som beskrivits tidigare, med vissa optimeringar som presenteras häri12. PMP: erna efterliknar MYB-oberoende äggula-sac-härledda makrofager, som ger upphov till mikroglia under embryonal utveckling genom att invadera hjärnan innan blod-hjärnbarriären stängs13. För att terminalt differentiera PMP till iMGs använde vi en snabb och förenklad monokulturmetod baserad på protokoll från Haenseler et al. och Brownjohn et al., med vissa modifieringar för att generera en effektiv mikrogliadifferentieringsmetod där iMGs robust uttrycker mikrogliaberikade markörer 7,8. Denna differentieringsmetod kan reproduceras i laboratorier med expertis inom iPSC: s kultur och med forskningsmål som syftar till att studera mikrogliabiologi med hjälp av ett mänskligt modellsystem.

iPSC-härledd mikroglia representerar en biologiskt relevant källa till human mikroglia för in vitro-experiment och är ett viktigt verktyg för att undersöka mikrogliala kanoniska funktioner, inklusive fagocytos. Microglia är de professionella fagocyterna i hjärnan och CNS, där de rensar cellskräp, aggregerade proteiner och nedbrutet myelin14. Microglia fungerar också vid synaptisk ombyggnad genom att uppsluka synapser och i försvaret mot yttre infektioner genom fagocytos av patogener15,16. I detta protokoll bedöms fagocytos av iMGs med användning av humana synaptosomer som material för iMG-uppslukande. För detta ändamål beskrivs en beskrivning för isolerande synaptosomer härledda från humana i3LMN. De i3LMN-härledda humana synaptosomerna är märkta med ett pH-känsligt färgämne som möjliggör kvantifiering av synaptosomer lokaliserade i sura fack under fagosombearbetning och nedbrytning in vitro. En fagocytosanalys med hjälp av levande cellmikroskopi visas för att övervaka den dynamiska processen för mikroglia-uppslukande i realtid. Denna funktionella analys skapar en grund för att undersöka eventuella defekter i mikroglial fagocytos i hälsa och sjukdom med hjälp av ett komplett mänskligt system.

Protocol

OBS: Alla reagenser som används i detta protokoll måste vara sterila och alla steg måste utföras i ett biosäkerhetsskåp under sterila förhållanden. Alla iPSC-linjer, liksom underhålls- och differentieringsmedier, beskrivs i materialförteckningen. Mikrogliadifferentieringsmetoden som illustreras nedan är baserad på tidigare publicerade protokoll 7,8,12 med nya modifieringar som beskrivs häri. <p …

Representative Results

För att generera iMG med detta protokoll är det viktigt att börja med odifferentierade iPSC som visar kompakt kolonimorfologi med väldefinierade kanter (figur 2A). Dissocierade iPSC som upprätthålls enligt beskrivningen i EB-bildningsavsnittet kommer att bilda sfäriska aggregat, kallade EBs, som kommer att växa i storlek fram till dag 4 av differentiering (figur 2B). När EB: erna har samlats in och pläterats under lämpliga förhållanden för PMP-gene…

Discussion

Differentieringsprotokollet som beskrivs här ger en effektiv metod för att erhålla iPSC-härledda mikroglialiknande celler på ~ 6-8 veckor med hög renhet och i ett tillräckligt utbyte för att utföra immunofluorescensexperiment och andra analyser som kräver ett högre antal celler. Detta protokoll har gett upp till 1 × 106 iMG på 1 vecka, vilket möjliggör protein- och RNA-extraktion och motsvarande nedströmsanalyser (t.ex. RNASeq, qRT-PCR, western blot, masspektrometri). Som sagt, en begränsning …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Michael Ward för att ha tillhandahållit WTC11 hNIL iPSC-linjen för motorneurondifferentiering och Jackson Laboratories för att leverera KOLF2.1J WT-klon B03 iPSC-linjen som används för mikrogliadifferentiering. Vi tackar också Dorothy Schafer för hennes stöd under implementeringen av protokollen, Anthony Giampetruzzi och John Landers för deras hjälp med live-cell imaging system samt Hayden Gadd för hans tekniska bidrag under revisioner och Jonathan Jung för hans samarbete i denna studie. Detta arbete stöddes av Dan och Diane Riccio Fund for Neuroscience från UMASS Chan Medical School och Angel Fund, Inc.

Materials

Antibodies for immunofluorescence analysis
anti-IBA1 rabbit antibody Wako Chemical USA NC9288364 1:350 dilution
anti-P2RY12 rabbit antibody Sigma-Aldrich HPA014518 1:50 dilution
anti-TMEM119 rabbit antibody Sigma-Aldrich HPA051870 1:100 dilution
Antibodies for Western blot analysis
anti-β-Tubulin rabbit antibody Abcam ab6046 1:500 dilution
anti-Synaptophysin (SYP) rabbit antibody Abclonal A6344 1:1,000 dilution
anti-PSD95 mouse antibody Millipore MAB1596 1:500 dilution
Borate buffer components
Boric acid (100 mM) Sigma B6768
Sodium bicarbonate (NaHCO3) BioXtra Sigma-Aldrich S6297-250G
Sodium chloride (75 mM) Sigma  S7653
Sodium tetraborate (25 mM) Sigma 221732
Cell culture materials
6-well plates Greiner Bio-One 657160
40 μm Cell Strainers  Falcon 352340
100 mm x 20 mm Tissue Culture Treated CELLTREAT 229620
Cell Lifter, Double End, Flat Blade & Narrow Blade, Sterile CELLTREAT 229305
low adherence round-bottom 96-well plate Corning 7007
Primaria 24-well Flat Bottom Surface Modified Multiwell Cell Culture Plate Corning 353847,
Primaria 6-well Cell Clear Flat Bottom Surface-Modified Multiwell Culture Plate Corning 353846
Primaria 96-well Clear Flat Bottom Microplate Corning 353872
Cell dissociation reagents
Accutase  Corning 25058CI dissociation reagents used for lower motor neuron differentiation
TrypLE reagent Life Technologies 12-605-010 dissociation reagents used for microglia differentiation
UltraPure 0.5 M EDTA, pH 8.0 Invitrogen 15575020
Coating reagents for cell culture
Matrigel GFR Membrane Matrix Corning™ 354230 Referred as to extracellular matrix coating reagent
CellAdhere Laminin-521 STEMCELL Technology 77004 Referred as to laminin 521
Poly-D-Lysine Sigma P7405 Reconstitute to 0.1 mg/mL in borate buffer
Poly-L-Ornithine Sigma  P3655 Reconstitute to 1 mg/mL in borate buffer
Components of iPSC media
 mTeSR Plus Kit STEMCELL Technology 100-0276 To prepare iPSC media mixed the components to 1x
Components of EB media
BMP-4 Fisher Scientific PHC9534 final concentration 50 ng/mL
iPSC media final concentration 1x
ROCK inhibitor Y27632 Fisher Scientific BD 562822 final concentration 10 µM
SCF PeproTech 300-07 final concentration 20 ng/mL
VEGF PeproTech 100-20A final concentration 50 ng/mL
Components of PMP base media
GlutaMAX Gibco 35050061 final concentration 1x
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140122 final concentration 100 U/mL
X-VIVO 15 Lonza 12001-988 final concentration 1x
Components of PMP complete media
55 mM 2-mercaptoethanol Gibco 21985023 final concentration 55 µM
IL-3 PeproTech 200-03 final concentration 25 ng/mL
M-CSF PeproTech 300-25 final concentration 100 ng/mL
PMP base media final concentration 1x
Components of iMG base media
Advanced DMEM/F12 Gibco 12634010 final concentration 1x
GlutaMAX Gibco 35050061 final concentration 1x
N2 supplement, 100x Gibco 17502-048 final concentration 1x
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140122 final concentration 100 U/mL
Components of iMG complete media
55 mM 2-mercaptoethanol Gibco 21985023 final concentration 55 µM
IL-34 PeproTech or Biologend 200-34 or 577904 final concentration 100 ng/mL
iMG base media final concentration 1x
M-CSF PeproTech 300-25 final concentration 5 ng/mL
TGF-β PeproTech 100-21 final concentration 50 ng/mL
Components of Induction base media
DMEM/F12 with HEPES Gibco 11330032 final concentration 1x
GlutaMAX Gibco 35050061 final concentration 1x
N2 supplement, 100x Gibco 17502-048 final concentration 1x
Non-essential amino acids (NEAA), 100x Gibco 11140050 final concentration 1x
Components of Complete induction media
Compound E Calbiochem 565790 final concentration 0.2 μM and reconstitute stock reagent to 2 mM in 1:1 ethanol and DMSO
Doxycycline Sigma D9891 final concentration 2 μg/mL and reconstitute stock reagent to 2 mg/mL in DPBS
Induction base media final concentration 1x
ROCK inhibitor Y27632 Fisher Scientific BD 562822 final concentration 10 μM
Components of Neuron media
B-27 Plus Neuronal Culture System Gibco A3653401 final concentration 1x for media and suplemment
GlutaMAX Gibco 35050061 final concentration 1x
N2 supplement, 100x Gibco 17502-048 final concentration 1x
Non-essential amino acids (NEAA), 100x Gibco 11140050 final concentration 1x
iPSC lines used in this study
KOLF2.1J: WT clone B03 The Jackson Laboratories
WTC11 hNIL National Institute of Health
Synaptosome isolation reagents
BCA Protein Assay Kit Thermo Scientific Pierce 23227
dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma D2650
Syn-PER Synaptic Protein Extraction Reagent Thermo Scientific 87793 Referred as to cell lysis reagent for isolation of synaptosomes
Phagocytosis assay dyes
NucBlue Live Ready reagent Invitrogen  R37605
pHrodo Red, succinimidyl ester ThermoFisher Scientific  P36600 Referred as to pH-sensitive dye
Other cell-culture reagents
Trypan Blue, 0.4% Solution AMRESCO INC K940-100ML
Bovine serum albumin (BSA) Sigma 22144-77-0
BrdU Sigma B9285 Reconstitute to 40 mM in sterile water
Cytochalasin D Sigma final concentration 10 µM
DPBS with Calcium and magnesium Corning 21-030-CV
DPBS without calcium and magnesium Corning 21-031-CV Referred as to DPBS
KnockOut  DMEM/F-12 Gibco 12660012 Referred as to DMEM-F12 optimized for growth of human embryonic and induced pluripotent stem cells
Laminin Mouse Protein, Natural Gibco 23017015 Referred as to laminin
Software and Equipment
Centrifuge Eppendorf Model 5810R
Cytation 5 live cell imaging reader Biotek
Gen5 Microplate Reader and Imager Software Biotek version 3.03
Multi-Therm Heat-Shake Benchmark refer as tube shaker
Water sonicator Elma Mode Transsonic 310

Referências

  1. Heider, J., Vogel, S., Volkmer, H., Breitmeyer, R. Human iPSC-derived glia as a tool for neuropsychiatric research and drug development. International Journal of Molecular Sciences. 22 (19), 10254 (2021).
  2. Muzio, L., Viotti, A., Martino, G. Microglia in neuroinflammation and neurodegeneration: from understanding to therapy. Frontiers in Neuroscience. 15, 742065 (2021).
  3. Galatro, T. F., et al. Transcriptomic analysis of purified human cortical microglia reveals age-associated changes. Nature Neuroscience. 20 (8), 1162-1171 (2017).
  4. Gosselin, D., et al. An environment-dependent transcriptional network specifies human microglia identity. Science. 356 (6344), (2017).
  5. Haimon, Z., et al. Re-evaluating microglia expression profiles using RiboTag and cell isolation strategies. Nature Immunology. 19 (6), 636-644 (2018).
  6. Abud, E. M., et al. iPSC-derived human microglia-like cells to study neurological diseases. Neuron. 94 (2), 278-293 (2017).
  7. Brownjohn, P. W., et al. Functional studies of missense TREM2 mutations in human stem cell-derived microglia. Stem Cell Reports. 10 (4), 1294-1307 (2018).
  8. Haenseler, W., et al. A highly efficient human pluripotent stem cell microglia model displays a neuronal-co-culture-specific expression profile and inflammatory response. Stem Cell Reports. 8 (6), 1727-1742 (2017).
  9. McQuade, A., et al. Development and validation of a simplified method to generate human microglia from pluripotent stem cells. Molecular Neurodegeneration. 13 (1), 1-13 (2018).
  10. Muffat, J., et al. Efficient derivation of microglia-like cells from human pluripotent stem cells. Nature Medicine. 22 (11), 1358-1367 (2016).
  11. Haenseler, W., Rajendran, L. Concise review: modeling neurodegenerative diseases with human pluripotent stem cell-derived microglia. Stem Cells. 37 (6), 724-730 (2019).
  12. Wilgenburg, B. v., Browne, C., Vowles, J., Cowley, S. A. Efficient, long term production of monocyte-derived macrophages from human pluripotent stem cells under partly-defined and fully-defined conditions. PloS One. 8 (8), 71098 (2013).
  13. Hoeffel, G., Ginhoux, F. Ontogeny of tissue-resident macrophages. Frontiers in Immunology. 6, 486 (2015).
  14. Janda, E., Boi, L., Carta, A. R. Microglial phagocytosis and its regulation: a therapeutic target in Parkinson’s disease. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 144 (2018).
  15. Schafer, D. P., Stevens, B. Microglia function in central nervous system development and plasticity. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7 (10), 020545 (2015).
  16. Nau, R., Ribes, S., Djukic, M., Eiffert, H. Strategies to increase the activity of microglia as efficient protectors of the brain against infections. Frontiers in Cellular Neuroscience. 8, 138 (2014).
  17. Fernandopulle, M. S., et al. Transcription factor-mediated differentiation of human iPSCs into neurons. Current Protocols in Cell Biology. 79 (1), 51 (2018).
  18. Gutbier, S., et al. Large-scale production of human IPSC-derived macrophages for drug screening. International Journal of Molecular Sciences. 21 (13), 4808 (2020).
  19. Sellgren, C., et al. Patient-specific models of microglia-mediated engulfment of synapses and neural progenitors. Molecular Psychiatry. 22 (2), 170-177 (2017).
  20. Schmidt, E. J., et al. ALS-linked PFN1 variants exhibit loss and gain of functions in the context of formin-induced actin polymerization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (23), (2021).
  21. Miksa, M., Komura, H., Wu, R., Shah, K. G., Wang, P. A novel method to determine the engulfment of apoptotic cells by macrophages using pHrodo succinimidyl ester. Journal of Immunological Methods. 342 (1-2), 71-77 (2009).
check_url/pt/64323?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Funes, S., Bosco, D. A. Human Microglia-like Cells: Differentiation from Induced Pluripotent Stem Cells and In Vitro Live-cell Phagocytosis Assay using Human Synaptosomes. J. Vis. Exp. (186), e64323, doi:10.3791/64323 (2022).

View Video