Burada, uyanık farelerde mikroglial dinamiklerin ve nöronal aktivitenin eşzamanlı görüntülenmesi için adeno ilişkili virüs enjeksiyonunu kraniyal pencere implantasyonu ile birleştiren bir protokolü tanımladık.
Beyin fonksiyonları periferik dokulardan türetilen sinyallerin sürekli etkisi altında olduğundan, beyindeki glial hücrelerin periferdeki çeşitli biyolojik koşulları nasıl algıladığını ve sinyalleri nöronlara nasıl ilettiğini aydınlatmak çok önemlidir. Mikroglia, beyindeki bağışıklık hücreleri, sinaptik gelişim ve plastisitede rol oynar. Bu nedenle, mikroglia’nın vücudun iç durumuna yanıt olarak nöral devre yapısına katkısı, mikroglial dinamikler ve nöronal aktivite arasındaki ilişkinin intravital görüntülemesi ile kritik olarak test edilmelidir.
Burada, uyanık farelerde mikroglial dinamiklerin ve nöronal aktivitenin eşzamanlı görüntülenmesi için bir teknik açıklanmaktadır. Kırmızı floresan proteininin gen kodlu bir kalsiyum göstergesi olan adeno ilişkili virüs kodlayan R-CaMP, mikrogliada EGFP’yi eksprese eden CX3CR1-EGFP transgenik farelerde birincil görsel korteksin 2/3 katmanına enjekte edildi. Viral enjeksiyondan sonra, enjekte edilen bölgenin beyin yüzeyine bir kranial pencere yerleştirildi. Ameliyattan 4 hafta sonra uyanık farelerde in vivo iki foton görüntüleme, nöral aktivitenin ve mikroglial dinamiklerin saniyenin altındaki zamansal çözünürlükte aynı anda kaydedilebileceğini göstermiştir. Bu teknik, mikroglial dinamikler ve nöronal aktivite arasındaki koordinasyonu ortaya çıkarabilir, birincisi periferik immünolojik durumlara cevap verirken, ikincisi iç beyin durumlarını kodlar.
Vücudun iç durumunun hayvanlarda beyin fonksiyonlarını sürekli olarak etkilediğine dair kanıtlar artmaktadır 1,2,3,4,5. Buna göre, beyin fonksiyonlarını daha iyi anlamak için, beyindeki glial hücrelerin çevredeki biyolojik koşulları nasıl izlediğini ve bilgiyi nöronlara nasıl aktardığını aydınlatmak çok önemlidir.
Mikroglia, beyindeki bağışıklık hücreleri, beyindeki sinir devrelerinin özelliklerini şekillendiren sinaptik gelişim ve plastisitede rol oynar 6,7,8,9. Örneğin, Wake ve ark. tarafından yapılan öncü çalışmalar, mikroglial süreçlerin fare neokorteksindeki nöronal aktiviteye bağımlı bir şekilde sinapslarla temas ettiğini ve yapay iskeminin mikroglia10 ile uzun süreli temastan sonra sinaps kaybına neden olduğunu göstermiştir. Tremblay ve ark., görsel deneyimin değişmesinin sinapslarla mikroglial etkileşim modalitesini değiştirdiğini bulmuşlardır. Primer görsel korteksteki (V1) dendritik omurga döngüsünün binoküler yoksunluk ile arttığı kritik dönemde, karanlık adaptasyon mikroglial süreçlerin hareketliliğini azaltır ve hem sinaptik yarıklarla temas sıklığını hem de mikroglia11’deki hücresel inklüzyonların sayısını arttırır. Bu sonuçlar, mikroglial süreçlerin nöral devreleri yeniden şekillendirmek için nöral aktiviteyi ve çevrelerini algıladığını göstermektedir. Ayrıca, yakın tarihli bir çalışma, mikroglial sürveyansın uyanık ve anestezi altındaki koşullar arasında farklılık gösterdiğini bildirmiştir, bu da fizyolojik koşullar altında nöron-mikroglia iletişimini araştırmak için uyanık farelerin kullanıldığı deneylerin önemini düşündürmektedir12.
İn vivo iki fotonlu kalsiyum görüntüleme, canlı bir hayvanda aynı anda yüzlerce nöronda devam eden nöronal ateşlemeyi yansıtan kalsiyum dinamiklerinin kaydedilmesi için güçlü bir araçtır13,14,15. Nöronlarda kalsiyum görüntüleme genellikle hızlı nöronal yanıtları izlemek için birkaç Hz’den fazla zamansal çözünürlük gerektirir16,17. Buna karşılık, mikroglial dinamikleri izleyen önceki çalışmalar, mikroglial yapıları 0.1 Hz 18,19,20’den daha düşük nispeten düşük bir zamansal çözünürlükte örneklemiştir. Son zamanlarda yapılan bir çalışmada, nöron-mikroglia iletişimini anlamak için eşzamanlı iki fotonlu görüntüleme uygulanmıştır21. Bununla birlikte, dinamik mikroglial süreçlerin uyanık farelerde birkaç Hz’den daha fazla zamansal çözünürlükte çevredeki nöral aktiviteye nasıl tepki verdiği hala belirsizdir. Bu sorunu ele almak için, uyanık farelerde 1 Hz’den daha yüksek bir zamansal çözünürlüğe sahip nöral aktivite ve mikroglial dinamiklerin eşzamanlı in vivo iki foton görüntüleme yöntemini tanımladık. Bu yöntem, uyanık farelerde daha yüksek kare hızında (maksimum, 512 x 512 piksel piksel kare boyutuyla 30 Hz) kararlı görüntüleme elde etmemizi sağlar ve mikroglia’nın gözetim davranışını veya uyanık farelerde nöronal aktivite ile etkileşimlerini araştırmak için daha uygun bir yol sağlar.
Uyanık farelerde mikroglial dinamiklerin ve nöronal aktivitenin eşzamanlı görüntülenmesi ve veri işleme için AAV enjeksiyonu ve kraniyotomi protokolünü tanımladık. Bu teknik, mikroglial dinamikler ve nöronal aktivite arasındaki koordinasyonu, saniyenin altından onlarca saniyeye kadar değişen zaman ölçeklerinde ortaya çıkarabilir.
Ameliyat protokolü teknik olarak zorlu birkaç adımı içerir. AAV enjeksiyonu kritik adımlardan biridir. Başarısız AAV enjeksiyonu, R-CaMP ekspresyonunda önemli bir azalmaya neden olabilir. Bunun iki ana nedeni vardır: tıkanmış cam pipetler ve doku hasarı. Cam pipetlerin tıkanması, AAV çözeltisinin dışarı atılmasını azaltır veya tamamen engeller. Bu durum, AAV çözeltisinin hızlı yeşil gibi bir boya ile renklendirilmesi ve enjeksiyonun başarısını görsel olarak teyit etmesi ile önlenebilir. AAV enjeksiyonunun neden olduğu doku hasarı, enjeksiyon bölgesinin merkezine yakın eksojen gen ekspresyonunu önler. AAV enjeksiyonunun neden olduğu hasarın, pipetin içindeki basıncın birikmesinden sonra cam pipetin ucundaki efflüksteki ani bir artıştan kaynaklanması muhtemeldir. Bu nedenle, AAV çözeltisinin cam pipetten çıkışı enjeksiyon sırasında sabit olmalıdır. Uçlarında biraz daha geniş çaplı cam pipetlerin seçilmesi bu sorunu çözecektir. Kraniyal pencere implantasyonunda, ameliyatın hızı kritiktir. Ameliyat çok uzun sürerse, beyin dokusu ciddi şekilde hasar görebilir. Buna göre, ameliyatın hızını ve pürüzsüzlüğünü sağlamak için tekrarlanan uygulama gereklidir. Ayrıca ameliyattan görüntülemeye kadar geçen 4 hafta boyunca konvansiyonel yöntemle kraniyal pencere ile beyin dokusu arasındaki doku rejenerasyonu ile görüntüleme kalitesi düşebilir17. Buradaki yöntem, doku yenilenmesini engellemek ve pencereyi temiz tutmak için kraniyal pencerelerin iç cam diskine kalın camlar uygulayarak bu sorunun üstesinden gelir. Burada açıklanan sistemde, bu etki 0.525 ± 0.075 μm kalınlığında bir iç cam disk kullanılarak belirgindi.
Yöntem, 4 haftadan daha eski farelere başarıyla uygulanabilir, ancak daha genç farelere uygulama sorunlu olabilir. Genç farelerde, kafatası hızlı ve belirgin bir büyüme gösterir, bu da kafatası kemiği ile cam pencere arasında uyumsuzluğa neden olur.
Bazı son teknoloji çalışmalarda, mikroglia-nöron etkileşimlerini incelemek için in vivo iki foton görüntüleme kullanılmıştır 12,21,23. Özellikle Merlini ve arkadaşlarının öncü çalışmalarında, hücre gövdeleri içindeki mikroglial dinamiklerin ve nöral aktivitenin eşzamanlı in vivo görüntülemesini gerçekleştirdiler21. Bu yöntemde, kraniyal pencereler için daha kalın iç camlar kullanarak, derinlik oryantasyonundaki hareket artefaktlarını bastırabilir ve dendritik dikenler gibi mikroyapılardaki nöronal aktivitenin kararlı ölçümünü sağlayabiliriz. Bu yöntem, uyanık farelerde sinaps-mikroglial süreç etkileşimlerinin araştırılmasına yardımcı olacaktır.
Son zamanlarda, in vitro çalışma, ince filopodia benzeri mikroglial süreçlerin kalın süreçlerden daha hızlı hareketliliğe sahip olduğunu göstermiştir, bu da sürveyansta daha hızlı hareketliliklerinin önemini düşündürmektedir19. Buradaki sistem, ince mikroglial süreçlerin hareketliliğini, bir saniyenin altından birkaç on saniyeye kadar zamansal bir çözünürlükle izleyebilir. Bu özellik, in vivo gözetim için hareketliliklerinin işlevsel önemini aydınlatmaya yardımcı olur.
Gelecekte, bu görüntüleme tekniğinin optogenetik24 veya kemogenetik25 gibi yerel sinir devrelerine veya bölgelerarası sinir bağlantılarına uygulanan müdahalelerle kombinasyonu, sinir devrelerinin özelliklerini şekillendiren sinaptik gelişim ve plastisitedeki yeni mikroglial fonksiyonlara ışık tutacaktır. Ayrıca, görüntüleme, müdahale ve davranışsal görevlerin daha fazla entegrasyonu, belirli davranışların altında yatan mikroglia ve nöronların koordinasyonunun ortaya çıkarılmasına katkıda bulunacaktır.
The authors have nothing to disclose.
Dr. Masashi Kondo ve Dr. Masanori Matsuzaki’ye virüs vektörleri sağladıkları için teşekkür ederiz. Bu çalışma Grants-in-Aid for Scientific Research (20H00481, 20A301, 20H05894, 20H05895 to S.O.), Japonya Tıbbi Araştırma ve Geliştirme Ajansı (JP19gm1310003 ve JP17gm5010003 to S.O. ve JP19dm0207082 to H.M.), UTokyo Center for Integrative Science of Human Behavior (CiSHuB), Japonya Bilim ve Teknoloji Ajansı Moonshot R&D (JPMJMS2024 to H.M.), Beyin Bilimi Vakfı (H. M.).
10-inch LCD monitor | EIZO | DuraVision FDX1003 | For presenting grating visual stimuli |
26G Hamilton syringe | Hamilton | 701N | |
27G needle | Terumo | NN-2719S | |
AAV-hSyn-R-CAMP1.07 | N/A | N/A | Kindly gifted from Prof. Matsuzaki's laboratory |
Activated charcoal powder | Nacalai tesque | 07909-65 | |
Black aluminum foil | THORLABS | BKF12 | |
CX3CR1-EGFP mouse | Jackson laboratory | IMSR_JAX: 005582 | CX3CR-1EGFP/+ knock-in/knock-out mice expressing EGFP in microglia in the brain under the control of the endogenous Cx3cr1 locus. |
DENT SILICONE-V | Shofu Inc | N/A | For the attachment of a shading device to a head-plate |
Dental cement (quick resin, liquid) | Shofu Inc | N/A | AB |
Dental cement(quick resin, powder) | Shofu Inc | N/A | B Color 3 |
Drill | Toyo Associates | HP-200 | |
Glass capillary pipette | Drummond Scientific Company | 2-000-075 | |
Glass disc (large) | Matsunami | N/A | 4mm in diameter, 0.15±0.02mm in thickness |
Glass disc (small) | Matsunami | N/A | 2mm in diameter, 0.525±0.075mm in thickness |
Head-plate | Customized | N/A | Material: SUS304, thickness: 0.5mm, see Figure2B for the shape |
Hemostatic fiber | Davol Inc | 1010090 | |
ImageJ Fiji software | Free software | For data registration | |
Instant glue (Aron alpha) | Daiichi Sankyo | N/A | |
Isoflurane | Pfizer | N/A | |
Lidocaine | Astrazeneca | N/A | |
MATLAB 2017b | MathWorks | N/A | For data registration and processing |
Meloxicam | Tokyo Chemical Industry | M1959 | |
Microinjector | KD scienfitic | KDS-100 | |
Micropipette puller | Sutter Instrument Company | P-97 | |
Multi-photon excitation microscope | NIKON | N/A | The commercial name is "A1MP+". |
Objective lens | NIKON | N/A | The commercial name is "CFI75 apochromat 25xC W". |
Paraffin Liquid | Nacalai tesque | 26132-35 | |
Psychtoolbox | Free software | For presenting grating visual stimuli | |
Shading device | Customized | N/A | |
Stereomicroscope | Leica | M165 FC | |
Stereotaxic instrument | Narishige Scientific Instrument | SR-611 | For the surgery |
Stereotaxic instrument | Customized | N/A | For fixing mice under the two-photon microscope |
Stopcock | ISIS | VXB1079 | |
Surgical silk | Ethicon | K881H | |
Treadmill | Customized | N/A | |
UV light curing agent | Norland Products Inc | NOA 65 | |
Vaporizer | Penlon | Sigma Delta | Anesthetic machine |