Protokollen tillader generering af en ren adipocytpopulation fra inducerede pluripotente stamceller (iPSC’er). Retinsyre bruges til at differentiere iPSC’er til mesenkymale stamceller (MSC’er), der anvendes til fremstilling af adipocytter. Derefter anvendes en sorteringsmetode baseret på Nilrød farvning til at opnå rene adipocytter.
Nylige fremskridt inden for induceret pluripotent stamcelleteknologi (iPSC) har gjort det muligt at generere forskellige celletyper, herunder adipocytter. De nuværende differentieringsmetoder har imidlertid lav effektivitet og producerer ikke en homogen population af adipocytter. Her omgår vi dette problem ved at bruge en all-trans retinologisk-baseret metode til at producere mesenkymale stamceller (MSC’er) med højt udbytte. Ved at regulere veje, der styrer celleproliferation, overlevelse og vedhæftning, muliggør vores differentieringsstrategi effektiv generering af embryonale kroppe (EB’er), der differentierer sig til en ren population af multipotente MSC’er. Det store antal MSC’er, der genereres ved denne metode, giver en ideel kilde til generering af adipocytter. Imidlertid er prøveheterogenitet som følge af adipocytdifferentiering fortsat en udfordring. Derfor brugte vi en Nile red-baseret metode til rensning af lipidbærende modne adipocytter ved hjælp af FACS. Denne sorteringsstrategi gjorde det muligt for os at etablere en pålidelig måde at modellere adipocytassocierede metaboliske lidelser ved hjælp af en pulje af adipocytter med reduceret prøveheterogenitet og forbedret cellefunktionalitet.
Mesenkymale stamceller (MSC’er) fungerer som en effektiv forbigående ressource til fremstilling af celler af mesodermal oprindelse som adipocytter, osteocytter og chondrocytter, som yderligere kan bruges til modellering af deres respektive genetiske lidelser. Tidligere tilgange var imidlertid afhængige af at opnå disse MSC’er fra voksent væv 1, hvilket pålagde udfordringen med at få dem i stort antal fra donorerne og begrænsningen ved at holde dem funktionelt levedygtige under suboptimale in vitro-dyrkningsbetingelser 1,2. Disse hindringer har skabt et stort behov for at have en protokol til generering af MSC’er in vitro. Human inducerede pluripotente stamceller (iPSC’er) kan anvendes som en værdifuld kilde til MSC’er og udviser MSC-karakteristika 3,4,5. iPSC’er-afledte MSC’er kan bruges som en terapeutisk mulighed i flere sygdomme. Også iPSC’er-afledte MSC’ers evne til at generere adipocytter gør dem til en værdifuld in vitro human model til at studere human adipogenese, fedme og adipocytassocierede lidelser.
Nuværende differentieringsprotokoller for adipocytter kan klassificeres i to grupper, hvor den ene involverer differentiering af adipocytter ved hjælp af kemiske eller proteinbaserede cocktails, hvilket giver et resulterende udbytte på 30%-60%6,7,8,9, mens den anden involverer genetisk manipulation til robust induktion af nøgletranskriptionsfaktorer, der styrer adipocytudviklingen, for at give et udbytte på 80%-90%10, 11. Imidlertid rekapitulerer genetisk manipulation ikke den naturlige proces med adipocytdifferentiering og maskerer ofte de subtile paradigmer, der ankommer under adipogenese, hvilket gør det ineffektivt til sygdomsmodelleringsformål12,13. Derfor præsenterer vi en måde at sortere kemisk afledte modne adipocytter fra umodne ved fluorescerende mærkning af lipidbærende adipocytter ved hjælp af Nilrød.
Her præsenterer vi en protokol, der involverer forbigående inkubation af iPSC’er afledte embryoidlegemer (EB’er) med all-trans retinsyre for at producere et stort antal hurtigt prolifererende MSC’er, som yderligere kan bruges til at generere adipocytter14. Vi præsenterer også en måde at sortere kemisk afledte modne adipocytter fra den heterogene differentieringspulje ved fluorescerende mærkning af deres lipiddråber ved hjælp af et lipofilt farvestof; Nilen rød. Dette ville muliggøre generering af en ren population af modne adipocytter med forbedret funktionalitet til nøjagtigt at modellere adipocytassocierede metaboliske lidelser.
Denne protokol har afgørende betydning på grund af dens evne til at levere MSC’er med højt udbytte og effektivitet. Denne masseproduktion af MSC’er blev muliggjort ved forbigående inkubation af iPSC’er-afledte EB’er med 10 μM RA14,15. Transient behandling med 10 μM RA forbedrede MSC-udbyttet med 11,2 til 1542 gange14,15, idet denne protokol kan anvendes på både iPSC’er og hPSC’er. Ved denne dosis …
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev finansieret af et tilskud fra Qatar National Research Fund (QNRF) (bevilling nr. NPRP10-1221-160041). Maryam Aghadi blev støttet af GSRA-stipendium fra Qatar National Research Fund (QNRF).
Adiponectin | Abcam | ab22554 | Adipocyte maturation marker |
anti-CD105 | BD Pharmingen | 560839 | MSC differentiation marker |
anti-CD14 | BD Pharmingen | 561712 | MSC differentiation marker |
anti-CD19 | BD Pharmingen | 555415 | MSC differentiation marker |
anti-CD34 | BD Pharmingen | 555824 | MSC differentiation marker |
anti-CD44 | abcam | ab93758 | MSC differentiation marker |
anti-CD45 | BD Pharmingen | 560975 |
MSC differentiation marker |
anti-CD73 | BD Pharmingen | 550256 | MSC differentiation marker |
anti-CD90 | BD Pharmingen | 555596 | MSC differentiation marker |
bFGF | R&D | 233-FP | MSC culture media supplement |
C/EBPA | Abcam | ab40761 | Adipocyte maturation marker |
Dexamethasone | Torics | 1126 | Adipocyte differentiation media supplement |
FABP4 | Abcam | ab93945 | Adipocyte maturation marker |
Fetal bovine serum | ThermoFisher | 10082147 | MSC culture media supplement |
Glutamax | ThermoFisher | 35050-061 | MSC culture media supplement |
IBMX | Sigma Aldrich | I5879 | Adipocyte differentiation media supplement |
Indomethacin | Sigma Aldrich | I7378 | Adipocyte differentiation media supplement |
Insulin | Sigma Aldrich | 91077C | Adipocyte differentiation media supplement |
Knockout DMEM | ThermoFisher | 12660012 | Basal media for preparing matrigel |
Low glucose DMEM | ThermoFisher | 11885084 | MSC culturing media |
Matrigel | Corning | 354230 | Coating matrix |
MEM-alpha | ThermoFisher | 12561056 | Adipocyte differentiation media |
Nilered | Sigma Aldrich | 19123 | Sorting marker for adipocyte |
Penicillin | ThermoFisher | 15140122 | MSC/Adipocyte media supplement |
Phosphate-buffered saline | ThermoFisher | 14190144 | wash buffer |
Pierce™ 20X TBS Buffer | Thermo Fisher | 28358 | wash buffer |
PPARG | Cell Signaling Technology | 2443 | Adipocyte maturation marker |
ReLeSR | Stem Cell Technologies | 5872 | Dissociation reagent |
Retinoic acid | Sigma Aldrich | R2625 | MSC differentiation media supplement |
Rock inhibitor | Tocris | 1254/10 | hPSC culture media supplement |
Roziglitazone | Sigma Aldrich | R2408 | Adipocyte differentiation media supplement |
StemFlex | ThermoFisher | A334901 | hPSC culture media |
Triton | Thermo Fisher | 28314 | Permebealization reagent |
Trypsin | ThermoFisher | 25200072 | Dissociation reagent |
Tween 20 | Sigma Aldrich | P7942 | Wash buffer |