Summary

Neural stamcellsreaktivering i odlade Drosophila Brain Explants

Published: May 18, 2022
doi:

Summary

En metod för att återaktivera vilande neurala stamceller i odlade Drosophila hjärnplanter har etablerats. Med hjälp av denna metod kan systemiska signalers roll kopplas bort från vävnadsinboende signaler vid reglering av neural stamcells lugn, inträde och utgång.

Abstract

Neurala stamceller (NSC) har förmågan att föröka sig, differentiera, genomgå apoptos och till och med gå in och ut ur lugn. Många av dessa processer styrs av det komplexa samspelet mellan NSC:s inneboende genetiska program och NSC:s yttre faktorer, lokala och systemiska. I den genetiska modellorganismen, Drosophila melanogaster, NSC, känd som neuroblaster (NG), växlar från lugn till spridning under embryonal till larvövergång. Under denna tid kommer larver ut ur sina äggskal och börjar krypa och söka efter näringsämnen i kosten. Som svar på djurfoder producerar fettkroppen, ett endokrint organ med lipidlagringskapacitet, en signal som frigörs systemiskt i den cirkulerande hemolymfen. Som svar på den feta kroppshärledda signalen (FBDS) produceras drosophila insulinliknande peptider (Dilps) och frigörs från hjärnans neurosekretoriska neuroner och glia, vilket leder till nedströms aktivering av PI3-kinas tillväxtsignalering i NBs och deras glial- och trakealnisch. Även om detta är den nuvarande modellen för hur NBs byter från lugn till spridning, är FBDS- yttre cue fortfarande svårfångad. För att bättre förstå hur NB yttre systemiska signaler reglerar utträde från lugn, utvecklades en metod för att odla tidiga larvhjärn in vitro före djurfoder. Med denna metod kan exogena faktorer tillföras kulturmedierna och NB-utgång från lugn analyseras. Vi fann att exogent insulin är tillräckligt för att återaktivera NBs från lugn i hela hjärnans explanter. Eftersom den här metoden är väl lämpad för storskaliga skärmar strävar vi efter att identifiera ytterligare yttre signaler som reglerar NB-lugn kontra spridningsbeslut. Eftersom generna och vägarna som reglerar NSC-spridningsbeslut är evolutionärt bevarade, kan resultaten från denna analys ge insikt i att förbättra regenerativa terapier i kliniken.

Introduction

Stamceller är av stort intresse på grund av deras potential för användning inom regenerativ medicin 1,2. Många djur, särskilt de som är långlivade, upprätthåller stamceller i sina vuxna vävnader. Dessa bosatta stamceller fungerar för att upprätthålla vävnadshomeostas och används för reparation efter fysisk skada eller sjukdom 3,4. De flesta stamceller hos vuxna djur är vilande, ett relativt vilande tillstånd som kännetecknas av cellcykelstopp och inaktivering av tillväxtsignalering5. Som svar på yttre signaler lämnar stamceller från lugn, går in i cellcykeln och börjar generera dotteravkomma som är specifik för deras vävnadstyp. Till exempel, för att montera ett effektivt immunsvar, inducerar antigenpresenterande celler vilande naiva T-celler att komma in i cellcykeln och klonalt expandera6. Som svar på skelettmuskelskador kommer muskelsatellitstamceller in i cellcykeln och genererar dottermycoblaster för att ersätta skadade myofibriller 5,7. Även om det är uppenbart att vilande stamceller svarar på yttre signaler, är arten av den yttre signalen i många fall fortfarande oklar liksom mekanismen för cue-inducerad stamcellsaktivering. Att få en bättre förståelse för hur vilande stamceller svarar på yttre signaler och går in i cellcykeln kommer att bidra till utvecklingen av bättre stamcellsterapier i kliniken och öka den vetenskapliga kunskapen.

I årtionden har modellorganismer använts för att avslöja de gener och cellsignalvägar som reglerar stamcellsproliferation under utveckling och i vuxen ålder. I Drosophila delar neurala stamceller (NSC), kända som neuroblaster (NBs), under hela utvecklingen för att generera alla neuroner och glia som i slutändan integreras och bildar den neurala kretsen som krävs för hjärnfunktion 8,9. Liksom andra stamceller delar sig NBs asymmetriskt för att självförnya och i vissa fall symmetriskt expandera stamcellspoolen. CB specificeras under embryogenesen och de flesta går in i lugn mot slutet, samtidigt som de minskar moderns näringslager (figur 1). När embryogenesen är klar kläcker larverna och börjar mata. Som svar på utfodring av djur återaktiveras NBs från lugn och återupptar celldelningar 10,11,12,13,14,15,16. Eftersom Drosophila CNS är relativt enkelt och eftersom NBs går in och ut ur lugn vid definierade tidpunkter, använder Drosophila för att undersöka regleringen av lugn, inresa och utgång, visar sig vara idealisk.

Figure 1
Figur 1: Relativ proliferation av CB NBs (centrala hjärnneuroblaster, röda) och MB NBs (svampkroppsneuroblaster, blå) över utvecklingstiden. I slutet av embryogenesen upphör de flesta NBs (röda linjen) proliferation och går in i lugn. Quiescence fortsätter tills nykläckta larver konsumerar sin första kompletta måltid. Fokuspunkterna för denna metod betecknas i röda cirklar (1, lugn och 2, reaktivering). MB NBs (blå) är en delmängd av centrala hjärnans NABs som delar sig kontinuerligt under hela utvecklingen (4 per hjärnhalvklot). Klicka här för att se en större version av denna figur.

Som svar på djurfoder blir PI3-kinas och TOR tillväxtsignalvägar aktiva i NBs och i deras glial- och trakealnisch 10,11,15,16. När näringsämnen i kosten dras tillbaka eller när nivåerna av PI3-kinas reduceras, misslyckas NBs med att återaktivera och tillväxten av glia och luftstrupen minskar också 10,11,15,16. Den nuvarande modellen hävdar att NB-reaktivering är kopplad till larvtillväxt av fettkroppen, vilket frigör en systemisk signal som svar på djurfoder 12,17,18. Denna signal, som förblir svårfångad, främjar sannolikt uttrycket och frisättningen av Drosophila insulinliknande peptid (Dilps) i hjärnan, vilket leder till nedströms aktivering av PI3-kinas i NBs och deras glial och trakeal nisch. För att bättre förstå arten av de systemiska signalerna utvecklade vi en metod för att återaktivera vilande NA i odlade hjärnutplantningar. Med denna metod kan reaktivering av NBs analyseras i frånvaro av systemiska signaler för hela djur. Exogena faktorer kan återföras till odlingsmediet och NB-reaktivering analyseras baserat på införlivandet av tymidinanalogen, EdU. Med hjälp av denna metod bestämde vi att exogent insulin är tillräckligt för att återaktivera vilande NK i hjärnutplanteringar. Framtida arbete kommer att syfta till att identifiera ytterligare faktorer som, när de läggs tillbaka, antingen positivt eller negativt reglerar NB-lugn i hjärnutplantningar.

Protocol

1. Drosophila larver samling OBS: Förbered jästplattan, druvpasta och Fly-lägenheten innan du börjar: Jästpasta: Blanda 5 g aktiv torrjäst i en liten behållare med 10 ml vatten för att bilda en pasta som har konsistensen av jordnötssmör. Täck jästpastan med plastfolie och använd ett gummiband för att fästa den ordentligt i behållaren.OBS: Färsk jästpasta kommer att expandera i behållaren och kommer att dyka upp från locket om den inte…

Representative Results

Nykläckta OregonR-hjärnor dissekerades och odlades i 24 timmar i kompletterade Schneiders media (SSM) med insulin. Vävnader fixerades och färgades enligt protokollet. Primära antikroppar genererade mot Deadpan (Dpn) för att detektera NBs och Scribble för att märka cellmembran användes. Tymidinanalogen 5-etynyl-2′-deoxiuridin (Edu) tillsattes för att detektera S-fasingång och NB-reaktivering. Vi fann stora Edu positiva och Dpn positiva NBs efter 24 timmar i kultur (Figur 6A-C<str…

Discussion

Metoden som beskrivs här för att odla hjärnplanter kan utföras i de flesta laboratoriemiljöer. De verktyg som krävs, liksom förfarandet och datainsamlingen, är enkla och okomplicerade. Med denna metod kan man testa en mängd olika hypoteser, inklusive de som är relaterade till cellsignalkaskaderna och yttre faktorer som reglerar NB-reaktivering och proliferation. Här, med hjälp av oregonrdjur av vild typ, fann vi att exogent insulin var tillräckligt för att återaktivera NBs från lugn oberoende av andra dju…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkänner LSAMP Bridges to Doctorate-programmet för finansiering (CNK) samt NIH / NIGMS (R01-GM120421 och R35-GM141886). Vi är tacksamma för Dr. Conor Sipe för figur 1. Vi tackar också alla Siegrist lab-medlemmar för deras fortsatta stöd och mentorskap. Vi tackar särskilt Chhavi Sood och Gary Teeters för deras noggranna läsning av manuskriptet och för att ha gett kommentarer.

Materials

10 µL Pipette tips Denville Sci P2102
1000 µL Pipette tips Denville Sci P2103-N
1000 µL Pipettor Gilson P1000
16% paraformaldehyde (10 x 10 mL) Electron Microscopy Sciences 2912.60.0000 Used for Fixation of Larval Brains
20 µL Pipette Gilson P20
200 µL Pipette tips Gilson P200
200 µL Pipette tips Denville Sci 1158U56
24-well multiwell culture plates Fisher Scientific 50-197-4477
35 mm Petri dishes Fisher Scientific 08-757-100A Grape Plate Ingredients
4 °C refrigerator Fisher Scientific Provides an ideal temperature for >24 h incubations in antibody solution
63x Objective Lecia
Active dry yeast Most supermarkets
Agarose Fisher Scientific 214010 Grape Plate Ingredients
Click-iT EdU Cell Proliferation Kit for Imaging, Alexa Fluor 647 dye Thermo Fisher Scientific C10340 to label proliferating cells
Confocal Microscope Leica SP8
Coverslips 22 mm x 22 mm x 1 mm , 10 pack of 4 oz Fisher Scientific 12-544-10 Two Coverslips are super glued to the ends of the microscope slide. This creates a space that allows for the brains to float in antifade while being imaged.
Coverslips, 22 mm x 50 mm x 1 mm Fisher Scientific 12-545E The coverslip is placed on two square coverslips on the microscope slide ensuring that the brain in the antifade does not move while imaging.
Dissecting microscope Zeiss Stemi 2000
Ethanol 200 proof (100%), Decon Labs, 1 gallon bottle Fisher Scientific 2701 Used to wash off the larvae before the 24 hr hold in culture medium
Fetal Bovine Serum (10%) Sigma F4135-100ML Supplement for cell culture media.
Fine forceps for dissection Fine Science Tools 11295-20 Forcepts used in disections. They work best when sharpened.
Fly Bottles for Crossing Genessee Scientific 32-130 This bottle is used as a container that lets the flies lay eggs on the grape plate.
Glass Dissection Dish (3 well) These are no longer available
Glutathione Sigma G6013 Provides oxidative protection during cell culture.
Goat Serum Sigma G9023- 10ML Blocking Agent
Grape Plates Made in house Made in house Grape juice/agarose plates for collecting freshly hatched eggs
Image J Imagej.net/fiji/downloads Free Download:  https://fiji.sc Imaging platform that is used to count cells and Edu reactivation
Incubator Thermo Fisher Scientific Ensures that the temperature, humidity, and light exposure is exactly the same throughout experiment.
Insulin Sigma I0516 Independant variable of the experiment
Laminar flow hood For aliquoting culture media
L-Glutamine Sigma G7513 Provides support during cell culture
Nunc 72-well Microwell Mini Trays Fisher Scientific 12-565-154 Immunostaining steps are performed in this tray
Parafilm Fisher Scientific S37440 Film used to seal plates in order to prevent evaporation
Pen-Strep Sigma P4458-100ml Antibiodics used to prevent bacterial contamination of cells during culture.
Phosphate Buffer, pH7.4 Made in house Made in house Solvent used to wash the brains after fixing and staining steps
Pick Fine Science Tools 10140-01 Used to pick larvae off of the grape plate
Propionic acid Fisher Scientific A-258 Grape Plate Ingredients
Rabbit 405 Abcam ab175653 Antibodies used for immunostaining
Rat 555 Abcam ab150166 Antibodies used for immunostaining
Rb Scribble A Gift from Chris Doe Antibodies used for immunostaining
Rt Deadpan Abcam ab195173 Antibodies used for immunostaining
Schneiders Culture Medium Life Tech 21720024 Contains nutrients that help the cells grow and proliferate
SlowFade Diamond Antifade (5 x 2 mL) Life Tech S36963 Reagent that provides protection against fading fluorophores
Sterile Water Autoclave Milli-Q water made in house Needed for Solutions
Sucrose Fisher S2-12 Grape Plate Ingredients
Superfrost Microscope Slides Fisher Scientific 12-544-7
Superglue Most supermarkets
Tegosept Genesee Scientific 20-259 Grape Plate Ingredients
Triton-X 100 Sigma T9284-100ML PBT
Welch's 100% grape grape juice Most supermarkets Grape Plate Ingredients

Referências

  1. Suman, S., Domingues, A., Ratajczak, J., Ratajczak, M. Z. Potential clinical applications of stem cells in regenerative medicine. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1201, 1-22 (2019).
  2. Tabar, V., Studer, L. Pluripotent stem cells in regenerative medicine: challenges and recent progress. Nature Reviews Genetics. 15, 82-92 (2014).
  3. Daley, G. Q. Stem cells and the evolving notion of cellular identity. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 370, 20140376 (2015).
  4. Rodrigues, M., Kosaric, N., Bonham, C. A., Gurtner, G. C. Wound healing: A cellular perspective. Physiological Reviews. 99, 665-706 (2019).
  5. van Velthoven, C. T. J., Rando, T. A. Stem cell quiescence: Dynamism, restraint, and cellular idling. Cell Stem Cell. 24, 213-225 (2019).
  6. Chapman, N. M., Boothby, M. R., Chi, H. Metabolic coordination of T cell quiescence and activation. Nature Reviews Immunology. 20, 55-70 (2020).
  7. Wosczyna, M. N., Rando, T. A. A muscle stem cell support group: Coordinated cellular responses in muscle regeneration. Developmental Cell. 46, 135-143 (2018).
  8. Homem, C. C., Knoblich, J. A. Drosophila neuroblasts: a model for stem cell biology. Development. 139, 4297-4310 (2012).
  9. Kang, K. H., Reichert, H. Control of neural stem cell self-renewal and differentiation in Drosophila. Cell and Tissue Research. 359, 33-45 (2015).
  10. Chell, J. M., Brand, A. H. Nutrition-responsive glia control exit of neural stem cells from quiescence. Cell. 143, 1161-1173 (2010).
  11. Sousa-Nunes, R., Yee, L. L., Gould, A. P. Fat cells reactivate quiescent neuroblasts via TOR and glial insulin relays in Drosophila. Nature. 471, 508-512 (2011).
  12. Britton, J. S., Edgar, B. A. Environmental control of the cell cycle in Drosophila: nutrition activates mitotic and endoreplicative cells by distinct mechanisms. Development. 125, 2149-2158 (1998).
  13. Lin, S., et al. Extremes of lineage plasticity in the Drosophila brain. Current biology : CB. 23, 1908-1913 (2013).
  14. Sipe, C. W., Siegrist, S. E. Eyeless uncouples mushroom body neuroblast proliferation from dietary amino acids in Drosophila. Elife. 6, 26343 (2017).
  15. Speder, P., Brand, A. H. Systemic and local cues drive neural stem cell niche remodelling during neurogenesis in Drosophila. Elife. 7, 30413 (2018).
  16. Yuan, X., Sipe, C. W., Suzawa, M., Bland, M. L., Siegrist, S. E. Dilp-2-mediated PI3-kinase activation coordinates reactivation of quiescent neuroblasts with growth of their glial stem cell niche. PLoS Biology. 18, 3000721 (2020).
  17. Colombani, J., et al. A nutrient sensor mechanism controls Drosophila growth. Cell. 114, 739-749 (2003).
  18. Geminard, C., Rulifson, E. J., Leopold, P. Remote control of insulin secretion by fat cells in Drosophila. Cell Metabolism. 10, 199-207 (2009).
  19. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Molecular Biology of the Cell. 16, 5127-5140 (2005).
  20. Prithviraj, R., Trunova, S., Giniger, E. Ex vivo culturing of whole, developing Drosophila brains. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e4270 (2012).
  21. Bostock, M. P., et al. An immobilization technique for long-term time-lapse imaging of explanted drosophila tissues. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 590094 (2020).
  22. Datta, S. Activation of neuroblast proliferation in explant culture of the Drosophila larval CNS. Brain Research. 818, 77-83 (1999).
check_url/pt/63189?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Naomi Keliinui, C., Doyle, S. E., Siegrist, S. E. Neural Stem Cell Reactivation in Cultured Drosophila Brain Explants. J. Vis. Exp. (183), e63189, doi:10.3791/63189 (2022).

View Video