Summary

Neural stamcelle reaktivering i dyrket Drosophila Brain Explants

Published: May 18, 2022
doi:

Summary

Det er etablert en metode for å reaktivere passiviserende nevrale stamceller i dyrkede Drosophila hjerneutløp. Ved hjelp av denne metoden kan rollen til systemiske signaler løsnes fra vevsintrinsiske signaler i reguleringen av nevral stamcelle passivis, inngang og utgang.

Abstract

Nevrale stamceller (NSC) har evnen til å spre seg, differensiere, gjennomgå apoptose, og til og med gå inn og ut av passiviteten. Mange av disse prosessene styres av det komplekse samspillet mellom NSC iboende genetiske programmer med NSC-ekstrinsiske faktorer, lokale og systemiske. I den genetiske modellorganismen bytter Drosophila melanogaster, NSC, kjent som nevroblaster (NBs), fra passiviteten til spredning under embryonal til larvalovergang. I løpet av denne tiden kommer larver ut av eggeskallene sine og begynner å krype, oppsøke diettnæringsstoffer. Som svar på dyrefôring produserer fettlegemet, et endokrine organ med lipidlagringskapasitet, et signal som frigjøres systemisk inn i den sirkulerende hemolymfen. Som svar på det fett kroppsavledede signalet (FBDS) produseres og frigjøres Drosophila insulinlignende peptider (Dilps) fra hjernens nevrosekretoriske nevroner og glia, noe som fører til nedstrøms aktivering av PI3-kinase vekstsignalering i NBs og deres glial og trakeal nisje. Selv om dette er den nåværende modellen for hvordan NBs bytter fra passiviteten til spredning, forblir arten av FBDS ekstrinsiske signal unnvikende. For bedre å forstå hvordan NB ekstrinsiske systemiske signaler regulerer utgang fra passiviteten, ble det utviklet en metode for å dyrke tidlige larvalhjerner in vitro før dyrefôring. Med denne metoden kan eksogene faktorer leveres til kulturmediene og NB-utgangen fra passivitet analysert. Vi fant at eksogent insulin er tilstrekkelig til å reaktivere NBs fra passiviteten i hele hjernens eksplanter. Fordi denne metoden er velegnet for skjermer i stor skala, tar vi sikte på å identifisere flere ekstrinsiske signaler som regulerer NB-passiviteten kontra spredningsbeslutninger. Fordi genene og veiene som regulerer NSC-spredningsbeslutninger er evolusjonært bevart, kan resultater fra denne analysen gi innsikt i å forbedre regenerative terapier i klinikken.

Introduction

Stamceller er av stor interesse på grunn av deres potensial for bruk i regenerativ medisin 1,2. Mange dyr, spesielt de som er lang levetid, opprettholder stamceller i deres voksne vev. Disse residente stamcellene fungerer for å opprettholde vev homeostase og brukes til reparasjon etter fysisk skade eller sykdom 3,4. De fleste stamceller hos voksne dyr er passiviserende, en relativt sovende tilstand preget av cellesyklusstans og inaktivering av vekstsignalering5. Som svar på ekstrinsiske signaler går stamceller ut av passiviteten, går inn i cellesyklusen og begynner å generere datteravkom som er spesifikk for deres vevstype. For eksempel, for å montere en effektiv immunrespons, induserer antigen-presenterende celler passiv naive T-celler for å komme inn i cellesyklusen og clonally utvide6. Som svar på skjelettmuskulaturskader, kommer muskelsatellitt stamceller inn i cellesyklusen og genererer datter myoblaster for å erstatte skadede myofibrils 5,7. Selv om det er klart at passive stamceller reagerer på ekstrinsiske signaler, forblir arten av den ekstrinsiske signalet i tillegg til mekanismen for cue-indusert stamcelleaktivering. Å få en bedre forståelse av hvordan passive stamceller reagerer på ekstrinsiske signaler og gå inn i cellesyklusen, vil bidra til utvikling av bedre stamcellebehandlinger i klinikken og øke vitenskapelig kunnskap.

I flere tiår har modellorganismer blitt brukt til å avdekke genene og cellesignalveiene som regulerer stamcelleproliferasjon under utvikling og i voksen alder. I Drosophila deler nevrale stamceller (NSC), kjent som nevroblaster (NBs), gjennom hele utviklingen for å generere alle nevroner og glia som til slutt integreres, og danner nevralkretsen som kreves for hjernefunksjon 8,9. I likhet med andre stamceller deler NBs asymmetrisk for å fornye seg selv og i noen tilfeller symmetrisk for å utvide stamcellebassenget. NBs er spesifisert under embryogenese og de fleste går inn passivitet mot slutten, sammenfallende med fallende mors næringsbutikker (figur 1). Etter at embryogenesen er fullført, klekker larver og begynner å mate. Som svar på dyrefôring reaktiverer NBs fra passiviteten og gjenopptar celledelinger 10,11,12,13,14,15,16. Fordi Drosophila CNS er relativt enkel og fordi NBs inn- og utgangs passiviteten på definerte tidspunkter, ved hjelp av Drosophila for å undersøke reguleringen av passiviteten, inngangen og utgangen, viser seg å være ideell.

Figure 1
Figur 1: Relativ spredning av CB NBs (sentrale hjerne neuroblaster, rød) og MB NBs (sopp kroppen nevroblaster, blå) over utviklingstid. På slutten av embryogenesen opphører de fleste NBs (rød linje) spredning og går inn i passivitet. Passivence fortsetter til nyutviklede larver bruker sitt første komplette måltid. Fokuspunktene for denne metoden er betegnet i røde sirkler (1, passiviscens og 2, reaktivering). MB NBs (blå) er en undergruppe av sentrale hjerne-NBer som deler seg kontinuerlig gjennom hele utviklingen (4 per hjernehalvdel). Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Som svar på dyrefôring blir PI3-kinase og TOR vekstsignalveier aktive i NBs og i deres glial og trakeal nisje 10,11,15,16. Når næringsstoffene trekkes tilbake eller når nivåene av PI3-kinase reduseres, unnlater NBs å reaktivere og veksten av glia og luftrør reduseres også 10,11,15,16. Den nåværende modellen hevder at NB-reaktivering er koblet til larvvekst av fettlegemet, som frigjør et systemisk signal som svar på dyrefôring 12,17,18. Dette signalet, som forblir unnvikende, fremmer sannsynligvis uttrykket og frigjøringen av Drosophila insulinlignende peptid (Dilps) i hjernen, noe som fører til nedstrøms aktivering av PI3-kinase i NBs og deres glial og trakeal nisje. For bedre å forstå arten av de systemiske signalene, utviklet vi en metode for å reaktivere passiviserende NBs i kultiverte hjerneutløp. Med denne metoden kan reaktivering av NBs analyse i fravær av hele animalske systemiske signaler. Eksogene faktorer kan leveres på nytt til kulturmediene og NB-reaktivering analysert basert på innlemmelsen av tymidanalogen, EdU. Ved hjelp av denne metoden bestemte vi oss for at eksogent insulin er tilstrekkelig til å reaktivere passivisere NBs i hjerneeksektiver. Fremtidig arbeid vil være rettet mot å identifisere ytterligere faktorer som, når det legges tilbake, enten positivt eller negativt regulerer NB-passivence i hjerneutløp.

Protocol

1. Drosophila larver samling MERK: Forbered gjærplaten, druepastaen og Fly-leiligheten før du starter: Gjærpasta: Bland i en liten beholder 5 g aktiv tørr gjær med 10 ml vann for å danne en pasta som har konsistensen av peanøttsmør. Dekk gjærpastaen med plastfolie og bruk et gummibånd for å feste det fast til beholderen.MERK: Fersk gjærpasta vil ekspandere i beholderen og vil sprette av lokket med mindre den er godt festet. Gjærpasta vil var…

Representative Results

Nyutviklede OregonR villtype hjerner ble dissekert og dyrket i 24 timer i supplerte Schneiders medier (SSM) med insulin. Vev ble fikset og farget i henhold til protokollen. Primære antistoffer generert mot Deadpan (Dpn) for å oppdage NBs og Scribble for å merke cellemembraner ble brukt. Thymidine analog 5-Ethynyl-2′-deoxyuridine (Edu) ble lagt til for å oppdage S-fase oppføring og NB reaktivering. Vi fant stor størrelse Edu positiv og Dpn positive NBs etter 24 h i kultur (Figur 6A-C<…

Discussion

Metoden beskrevet her for å dyrke hjerneutløp kan utføres i de fleste laboratoriemiljøer. Verktøyene som kreves, samt prosedyren og datainnsamlingen, er enkle og enkle. Med denne metoden kan man teste en rekke hypoteser, inkludert de som er relatert til cellesignalerende kaskader og ekstrinsiske faktorer som regulerer NB-reaktivering og spredning. Her, ved hjelp av wild-type OregonR dyr, fant vi ut at eksogent insulin var tilstrekkelig til å reaktivere NBs fra passiviteten uavhengig av andre dyrespesifikke systemis…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner LSAMP Bridges to Doctorate program for finansiering (CNK) samt NIH/NIGMS (R01-GM120421 og R35-GM141886). Vi er takknemlige til Dr. Conor Sipe for figur 1. Vi takker også alle Siegrist labmedlemmer for deres fortsatte støtte og mentorskap. Vi takker spesielt Chhavi Sood og Gary Teeters for deres nøye lesning av manuskriptet og for å gi kommentarer.

Materials

10 µL Pipette tips Denville Sci P2102
1000 µL Pipette tips Denville Sci P2103-N
1000 µL Pipettor Gilson P1000
16% paraformaldehyde (10 x 10 mL) Electron Microscopy Sciences 2912.60.0000 Used for Fixation of Larval Brains
20 µL Pipette Gilson P20
200 µL Pipette tips Gilson P200
200 µL Pipette tips Denville Sci 1158U56
24-well multiwell culture plates Fisher Scientific 50-197-4477
35 mm Petri dishes Fisher Scientific 08-757-100A Grape Plate Ingredients
4 °C refrigerator Fisher Scientific Provides an ideal temperature for >24 h incubations in antibody solution
63x Objective Lecia
Active dry yeast Most supermarkets
Agarose Fisher Scientific 214010 Grape Plate Ingredients
Click-iT EdU Cell Proliferation Kit for Imaging, Alexa Fluor 647 dye Thermo Fisher Scientific C10340 to label proliferating cells
Confocal Microscope Leica SP8
Coverslips 22 mm x 22 mm x 1 mm , 10 pack of 4 oz Fisher Scientific 12-544-10 Two Coverslips are super glued to the ends of the microscope slide. This creates a space that allows for the brains to float in antifade while being imaged.
Coverslips, 22 mm x 50 mm x 1 mm Fisher Scientific 12-545E The coverslip is placed on two square coverslips on the microscope slide ensuring that the brain in the antifade does not move while imaging.
Dissecting microscope Zeiss Stemi 2000
Ethanol 200 proof (100%), Decon Labs, 1 gallon bottle Fisher Scientific 2701 Used to wash off the larvae before the 24 hr hold in culture medium
Fetal Bovine Serum (10%) Sigma F4135-100ML Supplement for cell culture media.
Fine forceps for dissection Fine Science Tools 11295-20 Forcepts used in disections. They work best when sharpened.
Fly Bottles for Crossing Genessee Scientific 32-130 This bottle is used as a container that lets the flies lay eggs on the grape plate.
Glass Dissection Dish (3 well) These are no longer available
Glutathione Sigma G6013 Provides oxidative protection during cell culture.
Goat Serum Sigma G9023- 10ML Blocking Agent
Grape Plates Made in house Made in house Grape juice/agarose plates for collecting freshly hatched eggs
Image J Imagej.net/fiji/downloads Free Download:  https://fiji.sc Imaging platform that is used to count cells and Edu reactivation
Incubator Thermo Fisher Scientific Ensures that the temperature, humidity, and light exposure is exactly the same throughout experiment.
Insulin Sigma I0516 Independant variable of the experiment
Laminar flow hood For aliquoting culture media
L-Glutamine Sigma G7513 Provides support during cell culture
Nunc 72-well Microwell Mini Trays Fisher Scientific 12-565-154 Immunostaining steps are performed in this tray
Parafilm Fisher Scientific S37440 Film used to seal plates in order to prevent evaporation
Pen-Strep Sigma P4458-100ml Antibiodics used to prevent bacterial contamination of cells during culture.
Phosphate Buffer, pH7.4 Made in house Made in house Solvent used to wash the brains after fixing and staining steps
Pick Fine Science Tools 10140-01 Used to pick larvae off of the grape plate
Propionic acid Fisher Scientific A-258 Grape Plate Ingredients
Rabbit 405 Abcam ab175653 Antibodies used for immunostaining
Rat 555 Abcam ab150166 Antibodies used for immunostaining
Rb Scribble A Gift from Chris Doe Antibodies used for immunostaining
Rt Deadpan Abcam ab195173 Antibodies used for immunostaining
Schneiders Culture Medium Life Tech 21720024 Contains nutrients that help the cells grow and proliferate
SlowFade Diamond Antifade (5 x 2 mL) Life Tech S36963 Reagent that provides protection against fading fluorophores
Sterile Water Autoclave Milli-Q water made in house Needed for Solutions
Sucrose Fisher S2-12 Grape Plate Ingredients
Superfrost Microscope Slides Fisher Scientific 12-544-7
Superglue Most supermarkets
Tegosept Genesee Scientific 20-259 Grape Plate Ingredients
Triton-X 100 Sigma T9284-100ML PBT
Welch's 100% grape grape juice Most supermarkets Grape Plate Ingredients

Referências

  1. Suman, S., Domingues, A., Ratajczak, J., Ratajczak, M. Z. Potential clinical applications of stem cells in regenerative medicine. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1201, 1-22 (2019).
  2. Tabar, V., Studer, L. Pluripotent stem cells in regenerative medicine: challenges and recent progress. Nature Reviews Genetics. 15, 82-92 (2014).
  3. Daley, G. Q. Stem cells and the evolving notion of cellular identity. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 370, 20140376 (2015).
  4. Rodrigues, M., Kosaric, N., Bonham, C. A., Gurtner, G. C. Wound healing: A cellular perspective. Physiological Reviews. 99, 665-706 (2019).
  5. van Velthoven, C. T. J., Rando, T. A. Stem cell quiescence: Dynamism, restraint, and cellular idling. Cell Stem Cell. 24, 213-225 (2019).
  6. Chapman, N. M., Boothby, M. R., Chi, H. Metabolic coordination of T cell quiescence and activation. Nature Reviews Immunology. 20, 55-70 (2020).
  7. Wosczyna, M. N., Rando, T. A. A muscle stem cell support group: Coordinated cellular responses in muscle regeneration. Developmental Cell. 46, 135-143 (2018).
  8. Homem, C. C., Knoblich, J. A. Drosophila neuroblasts: a model for stem cell biology. Development. 139, 4297-4310 (2012).
  9. Kang, K. H., Reichert, H. Control of neural stem cell self-renewal and differentiation in Drosophila. Cell and Tissue Research. 359, 33-45 (2015).
  10. Chell, J. M., Brand, A. H. Nutrition-responsive glia control exit of neural stem cells from quiescence. Cell. 143, 1161-1173 (2010).
  11. Sousa-Nunes, R., Yee, L. L., Gould, A. P. Fat cells reactivate quiescent neuroblasts via TOR and glial insulin relays in Drosophila. Nature. 471, 508-512 (2011).
  12. Britton, J. S., Edgar, B. A. Environmental control of the cell cycle in Drosophila: nutrition activates mitotic and endoreplicative cells by distinct mechanisms. Development. 125, 2149-2158 (1998).
  13. Lin, S., et al. Extremes of lineage plasticity in the Drosophila brain. Current biology : CB. 23, 1908-1913 (2013).
  14. Sipe, C. W., Siegrist, S. E. Eyeless uncouples mushroom body neuroblast proliferation from dietary amino acids in Drosophila. Elife. 6, 26343 (2017).
  15. Speder, P., Brand, A. H. Systemic and local cues drive neural stem cell niche remodelling during neurogenesis in Drosophila. Elife. 7, 30413 (2018).
  16. Yuan, X., Sipe, C. W., Suzawa, M., Bland, M. L., Siegrist, S. E. Dilp-2-mediated PI3-kinase activation coordinates reactivation of quiescent neuroblasts with growth of their glial stem cell niche. PLoS Biology. 18, 3000721 (2020).
  17. Colombani, J., et al. A nutrient sensor mechanism controls Drosophila growth. Cell. 114, 739-749 (2003).
  18. Geminard, C., Rulifson, E. J., Leopold, P. Remote control of insulin secretion by fat cells in Drosophila. Cell Metabolism. 10, 199-207 (2009).
  19. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Molecular Biology of the Cell. 16, 5127-5140 (2005).
  20. Prithviraj, R., Trunova, S., Giniger, E. Ex vivo culturing of whole, developing Drosophila brains. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e4270 (2012).
  21. Bostock, M. P., et al. An immobilization technique for long-term time-lapse imaging of explanted drosophila tissues. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 590094 (2020).
  22. Datta, S. Activation of neuroblast proliferation in explant culture of the Drosophila larval CNS. Brain Research. 818, 77-83 (1999).
check_url/pt/63189?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Naomi Keliinui, C., Doyle, S. E., Siegrist, S. E. Neural Stem Cell Reactivation in Cultured Drosophila Brain Explants. J. Vis. Exp. (183), e63189, doi:10.3791/63189 (2022).

View Video