Summary

Neurale stamcellereaktivering i dyrkede Drosophila hjerne explants

Published: May 18, 2022
doi:

Summary

En metode til at genaktivere stillestående neurale stamceller i dyrkede Drosophila hjerne explants er blevet etableret. Ved hjælp af denne metode kan systemiske signalers rolle afkobles fra vævs-iboende signaler i reguleringen af neurale stamceller quiescence, ind- og udgang.

Abstract

Neurale stamceller (NSC’er) har evnen til at sprede sig, differentiere, gennemgå apoptose og endda komme ind og ud af stilhed. Mange af disse processer styres af det komplekse samspil mellem NSC’s indre genetiske programmer med NSC’s ydre faktorer, lokale og systemiske. I den genetiske modelorganisme skifter Drosophila melanogaster, NSC’er, kendt som neuroblaster (NB’er), fra quiescens til spredning under den embryonale til larveovergang. I løbet af denne tid kommer larver ud af deres æggeskaller og begynder at kravle og søge kostnæringsstoffer. Som reaktion på dyrefoder producerer fedtlegemet, et endokrint organ med lipidlagringskapacitet, et signal, som frigives systemisk i den cirkulerende hæmolymfe. Som reaktion på det fede kropsafledte signal (FBDS) produceres og frigives Drosophila insulinlignende peptider (Dilps) fra hjernens neurosekretoriske neuroner og glia, hvilket fører til nedstrøms aktivering af PI3-kinase vækstsignalering i NB’er og deres glial- og trakeal niche. Selv om dette er den nuværende model for, hvordan NB’er skifter fra quiescens til spredning, forbliver arten af FBDS-ekstrinsisk cue undvigende. For bedre at forstå, hvordan NB ydre systemiske signaler regulerer udgang fra quiescence, blev der udviklet en metode til dyrkning af tidlige larvehjerner in vitro før dyrefoder. Med denne metode kan eksogene faktorer leveres til kulturmedierne og NB-udgang fra quiescence assayed. Vi fandt ud af, at eksogent insulin er tilstrækkeligt til at genaktivere NB’er fra stilhed i helhjerneeksplanter. Da denne metode er velegnet til store skærme, sigter vi mod at identificere yderligere ydre signaler, der regulerer NB-quiescens versus spredningsbeslutninger. Fordi de gener og veje, der regulerer NSC-spredningsbeslutninger, er evolutionært bevaret, kan resultaterne fra dette assay give indsigt i forbedring af regenerative terapier i klinikken.

Introduction

Stamceller er af stor interesse på grund af deres potentiale til brug i regenerativ medicin 1,2. Mange dyr, især dem, der er langlivede, opretholder stamceller i deres voksne væv. Disse hjemmehørende stamceller fungerer til at opretholde vævshomeostase og bruges til reparation efter fysisk skade eller sygdom 3,4. De fleste stamceller hos voksne dyr er stillestående, en relativt sovende tilstand karakteriseret ved cellecyklusstop og inaktivering af vækstsignalering5. Som reaktion på ydre signaler forlader stamceller fra stilhed, går ind i cellecyklussen og begynder at generere datterafkom, der er specifikke for deres vævstype. For eksempel, for at montere et effektivt immunrespons, inducerer antigenpræsenterende celler quiescent naive T-celler til at komme ind i cellecyklus og klonalt udvide6. Som reaktion på skeletmuskelskader kommer muskelsatellitstamceller ind i cellecyklussen og genererer datter myoblaster til erstatning for beskadigede myofibriller 5,7. Selvom det er klart, at stillestående stamceller reagerer på ydre signaler, forbliver arten af det ydre signal i mange tilfælde uklart såvel som mekanismen for cue-induceret stamcelleaktivering. At få en bedre forståelse af, hvordan stillestående stamceller reagerer på ydre signaler og kommer ind i cellecyklussen, vil hjælpe med udviklingen af bedre stamcelleterapier i klinikken og øge den videnskabelige viden.

I årtier er modelorganismer blevet brugt til at afdække de gener og cellesignalveje, der regulerer stamcelleproliferation under udvikling og i voksenalderen. I Drosophila deler neurale stamceller (NSC’er), kendt som neuroblaster (NB’er), sig gennem hele udviklingen for at generere alle neuroner og glia, der i sidste ende integreres og danner det neurale kredsløb, der kræves til hjernefunktion 8,9. Ligesom andre stamceller deler NB’er sig asymmetrisk for at forny sig selv og i nogle tilfælde symmetrisk for at udvide stamcellepuljen. NB’er specificeres under embryogenese, og de fleste går ind i stilhed mod slutningen, sammenfaldende med faldende maternelle næringsstoflagre (figur 1). Efter embryogenese er afsluttet, lukker larverne og begynder at fodre. Som reaktion på dyrefodring genaktiverer NB’er fra stilhed og genoptager celledelinger 10,11,12,13,14,15,16. Fordi Drosophila CNS er relativt enkel, og fordi NB’er går ind og ud af quiescence på definerede tidspunkter, viser det sig ideelt at bruge Drosophila til at undersøge reguleringen af quiescence, ind- og udrejse.

Figure 1
Figur 1: Relativ spredning af CB NB’er (centrale hjerneneuroblaster, rød) og MB NB’er (svampekropsneuroblaster, blå) over udviklingstid. Ved afslutningen af embryogenese ophører de fleste NB’er (rød linje) med spredning og går ind i quiescence. Quiescence fortsætter, indtil friskklækkede larver spiser deres første komplette måltid. Tidspunkterne for denne metode betegnes i røde cirkler (1, quiescence og 2, reaktivering). MB NB’er (blå) er en delmængde af centrale hjerne-NB’er, der opdeles kontinuerligt gennem hele udviklingen (4 pr. Hjernehalvdel). Klik her for at se en større version af denne figur.

Som reaktion på dyrefoder bliver PI3-kinase og TOR vækstsignalveje aktive i NB’er og i deres glial- og trakealniche 10,11,15,16. Når næringsstoffer i kosten trækkes tilbage, eller når niveauet af PI3-kinase reduceres, undlader NB’er at genaktivere, og væksten af glia og luftrør reduceres også 10,11,15,16. Den nuværende model postulerer, at NB-reaktivering er koblet til larvevækst af fedtlegemet, som frigiver et systemisk signal som reaktion på dyrefoder 12,17,18. Dette signal, som forbliver undvigende, fremmer sandsynligvis ekspressionen og frigivelsen af Drosophila insulinlignende peptid (Dilps) i hjernen, hvilket fører til nedstrøms aktivering af PI3-kinase i NB’er og deres glial- og trakeal niche. For bedre at forstå arten af de systemiske signaler udviklede vi en metode til at genaktivere quiescent NB’er i dyrkede hjerneforplantninger. Med denne metode kan reaktivering af NB’er analyseres i fravær af hele dyrs systemiske signaler. Eksogene faktorer kan genforsynes på kulturmedierne og NB-reaktiveringsassayed baseret på inkorporeringen af thymidinanalogen, EdU. Ved hjælp af denne metode fastslog vi, at eksogent insulin er tilstrækkeligt til at genaktivere quiescent NB’er i hjerneeksplanter. Fremtidigt arbejde vil være rettet mod at identificere yderligere faktorer, der, når de tilføjes tilbage, enten positivt eller negativt regulerer NB-quiescens i hjerneforplantninger.

Protocol

1. Drosophila larver samling BEMÆRK: Forbered gærpladen, druepastaen og Fly-lejligheden, inden du starter: Gærpasta: Bland 5 g aktiv tør gær i en lille beholder med 10 ml vand for at danne en pasta, der har konsistensen af jordnøddesmør. Dæk gærpastaen med plastfolie og brug et gummibånd til at fastgøre det fast til beholderen.BEMÆRK: Frisk gærpasta udvides i beholderen og springer af låget, medmindre den er fastgjort. Gærpasta vil vare i …

Representative Results

Nyklækkede OregonR-hjerner af vildtypen blev dissekeret og dyrket i 24 timer i suppleret Schneiders medier (SSM) med insulin. Væv blev fastgjort og farvet i henhold til protokollen. Primære antistoffer genereret mod Deadpan (Dpn) til påvisning af NB’er og Scribble til mærkning af cellemembraner blev anvendt. Den thymidinanaloge 5-ethynyl-2′-deoxyuridin (Edu) blev tilsat for at detektere S-faseindgang og NB-reaktivering. Vi fandt store Edu-positive og Dpn-positive NB’er efter 24 timer i kultur (<st…

Discussion

Den her beskrevne metode til dyrkning af hjerneudsendelser kan udføres i de fleste laboratoriemiljøer. De nødvendige værktøjer samt proceduren og dataindsamlingen er enkle og ligetil. Med denne metode kan man teste en række hypoteser, herunder dem, der er relateret til cellesignalkaskader og ydre faktorer, der regulerer NB-reaktivering og proliferation. Her fandt vi ved hjælp af vildtype OregonR-dyr, at eksogent insulin var tilstrækkeligt til at genaktivere NB’er fra quiescens uafhængigt af andre dyrespecifikke …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkender LSAMP Bridges to Doctorate-programmet for finansiering (CNK) samt NIH / NIGMS (R01-GM120421 og R35-GM141886). Vi er taknemmelige for Dr. Conor Sipe for figur 1. Vi takker også alle Siegrist lab medlemmer for deres fortsatte støtte og mentorskab. Vi takker især Chhavi Sood og Gary Teeters for deres omhyggelige læsning af manuskriptet og for at give kommentarer.

Materials

10 µL Pipette tips Denville Sci P2102
1000 µL Pipette tips Denville Sci P2103-N
1000 µL Pipettor Gilson P1000
16% paraformaldehyde (10 x 10 mL) Electron Microscopy Sciences 2912.60.0000 Used for Fixation of Larval Brains
20 µL Pipette Gilson P20
200 µL Pipette tips Gilson P200
200 µL Pipette tips Denville Sci 1158U56
24-well multiwell culture plates Fisher Scientific 50-197-4477
35 mm Petri dishes Fisher Scientific 08-757-100A Grape Plate Ingredients
4 °C refrigerator Fisher Scientific Provides an ideal temperature for >24 h incubations in antibody solution
63x Objective Lecia
Active dry yeast Most supermarkets
Agarose Fisher Scientific 214010 Grape Plate Ingredients
Click-iT EdU Cell Proliferation Kit for Imaging, Alexa Fluor 647 dye Thermo Fisher Scientific C10340 to label proliferating cells
Confocal Microscope Leica SP8
Coverslips 22 mm x 22 mm x 1 mm , 10 pack of 4 oz Fisher Scientific 12-544-10 Two Coverslips are super glued to the ends of the microscope slide. This creates a space that allows for the brains to float in antifade while being imaged.
Coverslips, 22 mm x 50 mm x 1 mm Fisher Scientific 12-545E The coverslip is placed on two square coverslips on the microscope slide ensuring that the brain in the antifade does not move while imaging.
Dissecting microscope Zeiss Stemi 2000
Ethanol 200 proof (100%), Decon Labs, 1 gallon bottle Fisher Scientific 2701 Used to wash off the larvae before the 24 hr hold in culture medium
Fetal Bovine Serum (10%) Sigma F4135-100ML Supplement for cell culture media.
Fine forceps for dissection Fine Science Tools 11295-20 Forcepts used in disections. They work best when sharpened.
Fly Bottles for Crossing Genessee Scientific 32-130 This bottle is used as a container that lets the flies lay eggs on the grape plate.
Glass Dissection Dish (3 well) These are no longer available
Glutathione Sigma G6013 Provides oxidative protection during cell culture.
Goat Serum Sigma G9023- 10ML Blocking Agent
Grape Plates Made in house Made in house Grape juice/agarose plates for collecting freshly hatched eggs
Image J Imagej.net/fiji/downloads Free Download:  https://fiji.sc Imaging platform that is used to count cells and Edu reactivation
Incubator Thermo Fisher Scientific Ensures that the temperature, humidity, and light exposure is exactly the same throughout experiment.
Insulin Sigma I0516 Independant variable of the experiment
Laminar flow hood For aliquoting culture media
L-Glutamine Sigma G7513 Provides support during cell culture
Nunc 72-well Microwell Mini Trays Fisher Scientific 12-565-154 Immunostaining steps are performed in this tray
Parafilm Fisher Scientific S37440 Film used to seal plates in order to prevent evaporation
Pen-Strep Sigma P4458-100ml Antibiodics used to prevent bacterial contamination of cells during culture.
Phosphate Buffer, pH7.4 Made in house Made in house Solvent used to wash the brains after fixing and staining steps
Pick Fine Science Tools 10140-01 Used to pick larvae off of the grape plate
Propionic acid Fisher Scientific A-258 Grape Plate Ingredients
Rabbit 405 Abcam ab175653 Antibodies used for immunostaining
Rat 555 Abcam ab150166 Antibodies used for immunostaining
Rb Scribble A Gift from Chris Doe Antibodies used for immunostaining
Rt Deadpan Abcam ab195173 Antibodies used for immunostaining
Schneiders Culture Medium Life Tech 21720024 Contains nutrients that help the cells grow and proliferate
SlowFade Diamond Antifade (5 x 2 mL) Life Tech S36963 Reagent that provides protection against fading fluorophores
Sterile Water Autoclave Milli-Q water made in house Needed for Solutions
Sucrose Fisher S2-12 Grape Plate Ingredients
Superfrost Microscope Slides Fisher Scientific 12-544-7
Superglue Most supermarkets
Tegosept Genesee Scientific 20-259 Grape Plate Ingredients
Triton-X 100 Sigma T9284-100ML PBT
Welch's 100% grape grape juice Most supermarkets Grape Plate Ingredients

Referências

  1. Suman, S., Domingues, A., Ratajczak, J., Ratajczak, M. Z. Potential clinical applications of stem cells in regenerative medicine. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1201, 1-22 (2019).
  2. Tabar, V., Studer, L. Pluripotent stem cells in regenerative medicine: challenges and recent progress. Nature Reviews Genetics. 15, 82-92 (2014).
  3. Daley, G. Q. Stem cells and the evolving notion of cellular identity. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 370, 20140376 (2015).
  4. Rodrigues, M., Kosaric, N., Bonham, C. A., Gurtner, G. C. Wound healing: A cellular perspective. Physiological Reviews. 99, 665-706 (2019).
  5. van Velthoven, C. T. J., Rando, T. A. Stem cell quiescence: Dynamism, restraint, and cellular idling. Cell Stem Cell. 24, 213-225 (2019).
  6. Chapman, N. M., Boothby, M. R., Chi, H. Metabolic coordination of T cell quiescence and activation. Nature Reviews Immunology. 20, 55-70 (2020).
  7. Wosczyna, M. N., Rando, T. A. A muscle stem cell support group: Coordinated cellular responses in muscle regeneration. Developmental Cell. 46, 135-143 (2018).
  8. Homem, C. C., Knoblich, J. A. Drosophila neuroblasts: a model for stem cell biology. Development. 139, 4297-4310 (2012).
  9. Kang, K. H., Reichert, H. Control of neural stem cell self-renewal and differentiation in Drosophila. Cell and Tissue Research. 359, 33-45 (2015).
  10. Chell, J. M., Brand, A. H. Nutrition-responsive glia control exit of neural stem cells from quiescence. Cell. 143, 1161-1173 (2010).
  11. Sousa-Nunes, R., Yee, L. L., Gould, A. P. Fat cells reactivate quiescent neuroblasts via TOR and glial insulin relays in Drosophila. Nature. 471, 508-512 (2011).
  12. Britton, J. S., Edgar, B. A. Environmental control of the cell cycle in Drosophila: nutrition activates mitotic and endoreplicative cells by distinct mechanisms. Development. 125, 2149-2158 (1998).
  13. Lin, S., et al. Extremes of lineage plasticity in the Drosophila brain. Current biology : CB. 23, 1908-1913 (2013).
  14. Sipe, C. W., Siegrist, S. E. Eyeless uncouples mushroom body neuroblast proliferation from dietary amino acids in Drosophila. Elife. 6, 26343 (2017).
  15. Speder, P., Brand, A. H. Systemic and local cues drive neural stem cell niche remodelling during neurogenesis in Drosophila. Elife. 7, 30413 (2018).
  16. Yuan, X., Sipe, C. W., Suzawa, M., Bland, M. L., Siegrist, S. E. Dilp-2-mediated PI3-kinase activation coordinates reactivation of quiescent neuroblasts with growth of their glial stem cell niche. PLoS Biology. 18, 3000721 (2020).
  17. Colombani, J., et al. A nutrient sensor mechanism controls Drosophila growth. Cell. 114, 739-749 (2003).
  18. Geminard, C., Rulifson, E. J., Leopold, P. Remote control of insulin secretion by fat cells in Drosophila. Cell Metabolism. 10, 199-207 (2009).
  19. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Molecular Biology of the Cell. 16, 5127-5140 (2005).
  20. Prithviraj, R., Trunova, S., Giniger, E. Ex vivo culturing of whole, developing Drosophila brains. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e4270 (2012).
  21. Bostock, M. P., et al. An immobilization technique for long-term time-lapse imaging of explanted drosophila tissues. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 590094 (2020).
  22. Datta, S. Activation of neuroblast proliferation in explant culture of the Drosophila larval CNS. Brain Research. 818, 77-83 (1999).
check_url/pt/63189?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Naomi Keliinui, C., Doyle, S. E., Siegrist, S. E. Neural Stem Cell Reactivation in Cultured Drosophila Brain Explants. J. Vis. Exp. (183), e63189, doi:10.3791/63189 (2022).

View Video