Summary

Isolement, propagation et identification d’espèces bactériennes ayant des propriétés métabolisant les hydrocarbures dans les habitats aquatiques

Published: December 07, 2021
doi:

Summary

Nous présentons le processus d’isolement, de propagation et de caractérisation des bactéries dégradant les hydrocarbures des habitats aquatiques. Le protocole décrit l’isolement bactérien, l’identification par la méthode de l’ARNr 16S et le test de leur potentiel de dégradation des hydrocarbures. Cet article aiderait les chercheurs à caractériser la biodiversité microbienne dans les échantillons environnementaux, et plus particulièrement à dépister les microbes ayant un potentiel de biorestauration.

Abstract

Les polluants hydrocarbonés sont récalcitrants à la dégradation et leur accumulation dans l’environnement est toxique pour toutes les formes de vie. Les bactéries codent pour de nombreuses enzymes catalytiques et sont naturellement capables de métaboliser les hydrocarbures. Les scientifiques exploitent la biodiversité dans les écosystèmes aquatiques pour isoler les bactéries ayant un potentiel de biodégradation et de biorestauration. Ces isolats de l’environnement fournissent un riche ensemble de voies métaboliques et d’enzymes, qui peuvent être utilisées pour intensifier le processus de dégradation à l’échelle industrielle. Dans cet article, nous décrivons le processus général d’isolement, de propagation et d’identification des espèces bactériennes des habitats aquatiques et examinons leur capacité à utiliser les hydrocarbures comme seule source de carbone in vitro en utilisant des techniques simples. Le présent protocole décrit l’isolement de diverses espèces bactériennes et leur identification ultérieure à l’aide de l’analyse de l’ARNr 16S. Le protocole présente également des étapes pour caractériser le potentiel de dégradation des hydrocarbures des isolats bactériens. Ce protocole sera utile aux chercheurs qui tentent d’isoler des espèces bactériennes des habitats environnementaux pour leurs applications biotechnologiques.

Introduction

Les hydrocarbures (HC) sont largement utilisés à la fois comme combustibles et dans des applications chimiques. Les hydrocarbures aromatiques tels que le benzène, le toluène et le xylène sont largement utilisés comme solvants1. Les alcènes tels que l’éthylène et le propylène servent de précurseurs dans la synthèse des polymères de polyéthylène et de polypropylène, respectivement. Polymérisation d’un autre hydrocarbure, le styrène forme du polystyrène. Les activités anthropiques introduisent des hydrocarbures dans l’environnement au cours de leur production et de leur transport. La contamination des sols et de l’eau par les hydrocarbures est très préoccupante pour l’environnement et la santé humaine. Les microbes jouent un rôle majeur dans le maintien de l’écosystème en régulant les cycles biogéochimiques et en utilisant un large éventail de substrats, qui comprennent également des polluants et des xénobiotiques, les convertissant en carbone et en source d’énergie. Ce processus de détoxification des contaminants environnementaux par les micro-organismes est connu sous le nom de biorestauration 3,4,5,6,7.

On trouve des microorganismes capables de dégrader les hydrocarbures dans les habitats aquatiques et pédologiques 8,9,10. De nombreuses bactéries ayant le potentiel de dégrader les alcanes et les HC aromatiques ont été identifiées, telles que Pseudomonas, Acinetobacter, Rhodococcus, Marinobacter et Oleibacter11. Le développement d’approches technologiquement avancées indépendantes de la culture a permis de découvrir de nouvelles communautés microbiennes dégradant HC12. Le matériel génomique directement isolé des échantillons sources est amplifié et séquencé par des méthodes à haut débit telles que le séquençage de nouvelle génération (NGS) suivi d’une analyse éliminant le besoin de cultiver des micro-organismes. Les méthodes NGS, telles que l’analyse du métagénome, sont coûteuses et souffrent d’inconvénients liés au processus d’amplification13. Les techniques de culture telles que la culture d’enrichissement sélectif14 qui ciblent l’isolement des microbes dégradant les hydrocarbures sont toujours utiles car elles permettent aux chercheurs de sonder et de manipuler les voies métaboliques dans les isolats bactériens.

L’isolement de l’ADN génomique et le séquençage ultérieur du matériel génomique révèlent des informations précieuses sur tout organisme. Le séquençage du génome entier aide à identifier les gènes qui codent pour la résistance aux antibiotiques, les cibles médicamenteuses potentielles, les facteurs de virulence, les transporteurs, les enzymes métabolisant les xénobiotiques, etc.15,16,17. Le séquençage du gène codant pour l’ARN16Sr s’est avéré être une technique robuste pour identifier la phylogénie bactérienne. La conservation de la séquence et de la fonction des gènes au fil des ans en fait un outil fiable pour identifier les bactéries inconnues et comparer un isolat avec les espèces les plus proches. De plus, la longueur de ce gène est optimale pour l’analyse bioinformatique18. Toutes ces caractéristiques, ainsi que la facilité d’amplification des gènes à l’aide d’amorces universelles et l’amélioration de la technologie de séquençage des gènes, en font une référence en matière d’identification des microbes.

Ici, nous décrivons une procédure pour récupérer des micro-organismes cultivables ayant un potentiel de dégradation des HC à partir d’échantillons environnementaux. La méthode décrite ci-dessous décrit la collecte et l’identification des bactéries dégradant les HC et est divisée en cinq sections : (1) collecte de bactéries à partir d’échantillons d’eau, (2) isolement de cultures pures, (3) exploration de la capacité de dégradation des HC des isolats bactériens (4) isolement de l’ADN génomique et (5) identification basée sur le séquençage du gène de l’ARNr 16S et l’analyse BLAST. Cette procédure peut être adaptée pour isoler des bactéries pour de nombreuses applications biotechnologiques différentes.

Protocol

1. Collecte, traitement et analyse des échantillons NOTE: Ici, nous présentons un protocole pour isoler les bactéries des habitats aquatiques. Certains des isolats peuvent être pathogènes, par conséquent, portez des gants et désinfectez la zone de travail avant et après utilisation. Prélever 500 mL d’échantillon d’eau dans cinq bouteilles de verre stériles provenant de différents sites du plan d’eau. Mesurer le pH et la température de chaque échan…

Representative Results

Le schéma décrivant l’ensemble de la procédure d’isolement et de criblage des bactéries des habitats aquatiques et leur identification ultérieure par l’analyse de l’ARNr 16S est représenté à la figure 1. Des échantillons d’eau prélevés dans une zone humide de Dadri, en Inde, ont été prélevés dans des bouteilles en verre stériles et immédiatement emmenés au laboratoire pour traitement. Les échantillons ont été passés à travers des feuilles fil…

Discussion

Il est bien établi que seulement environ 1% des bactéries sur Terre peuvent être facilement cultivées en laboratoire6. Même parmi les bactéries cultivables, beaucoup restent non caractérisées. L’amélioration des méthodes moléculaires a donné une nouvelle dimension à l’analyse et à l’évaluation des communautés bactériennes. Cependant, ces techniques ont des limites, mais elles ne rendent pas les analyses de culture redondantes. Les techniques de culture pure pour isoler des e…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions le Dr Karthik Krishnan et les membres du laboratoire de RP pour leurs commentaires et suggestions utiles. DS est soutenu par la bourse SNU-Doctoral et la bourse Earthwatch Institute India. Le laboratoire RP est soutenu par une subvention CSIR-EMR et des fonds de démarrage de l’Université Shiv Nadar.

Materials

Agarose Sigma-Aldrich A4718 Gel electrophoresis
Ammonium chloride (NH4Cl) Sigma-Aldrich A9434 Growth medium component
Ammonium sulphate Sigma-Aldrich A4418 Growth medium component
Bacto-Agar Millipore 1016141000 Solid media preparation
Calcium chloride (CaCl2) MERCK C4901-500G Growth medium component
Catechol Sigma-Aldrich 135011 Hydrocarbon degradation assay
Cetyltrimethylammonium bromide, CTAB Sigma-Aldrich H6269 Genomic DNA Isolation
Chloroform HIMEDIA MB109 Genomic DNA isolation
Disodium phosphate (Na2HPO4) Sigma-Aldrich S5136 Growth medium component
EDTA Sigma-Aldrich E9884 gDNA buffer component
Ferrous sulphate, heptahydrate (FeSO4.7H20) Sigma-Aldrich 215422 Growth medium component
Glucose Sigma-Aldrich G7021 Growth medium component
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 Growth medium component; Glycerol stocks
Isopropanol HIMEDIA MB063 Genomic DNA isolation
LB Agar Difco 244520 Growth medium
Luria-Bertani (LB) Difco 244620 Growth medium
Magnesium sulphate (MgSO4) MERCK M2643 Growth medium component
Manganese (II) sulfate monohydrate (MnSO4.H20) Sigma-Aldrich 221287 Growth medium component
Nutrient Broth (NB) Merck (Millipore) 03856-500G Growth medium
Peptone Merck 91249-500G Growth medium component
Phenol Sigma-Aldrich P1037 Genomic DNA isolation
Potassium phosphate, dibasic (K2HPO4) Sigma-Aldrich P3786 Growth medium component
Potassium phosphate, monobasic (KH2PO4) Sigma-Aldrich P9791 Growth medium component
Proteinase K ThermoFisher Scientific AM2546 Genomic DNA isolation
QIAquick Gel Extraction kit QIAGEN 160016235 DNA purification
QIAquick PCR Purification kit QIAGEN 163038783 DNA purification
R2A Agar Millipore 1004160500 Growth medium
SmartSpec Plus Spectrophotometer BIO-RAD 4006221 Absorbance measurement
Sodium acetate Sigma-Aldrich S2889 Genomic DNA isolation
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S9888 Growth medium component
Sodium dodecyl sulphate (SDS) Sigma-Aldrich L3771 Genomic DNA isolation
Styrene Sigma-Aldrich S4972 Styrene biodegradation
Taq DNA Polymerase NEB M0273X 16s rRNA PCR
Tris-EDTA (TE) Sigma-Aldrich 93283 Resuspension of genomic DNA
Tryptic Soy Broth (TSB) Merck 22092-500G Growth medium
Yeast extract Sigma-Aldrich Y1625-1KG Growth medium component
Zinc sulfate heptahydrate (ZnSO4.7H20) Sigma-Aldrich 221376 Growth medium component

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Citar este artigo
Sethi, D., Priyadarshini, R. Isolation, Propagation, and Identification of Bacterial Species with Hydrocarbon Metabolizing Properties from Aquatic Habitats. J. Vis. Exp. (178), e63101, doi:10.3791/63101 (2021).

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