Summary

Кристаллизация на кристалле и крупномасштабная последовательная дифракция при комнатной температуре

Published: March 11, 2022
doi:

Summary

В этом вкладе описывается, как настроить кристаллизацию белка на кристаллических устройствах и как выполнять автоматизированный последовательный сбор данных при комнатной температуре с использованием платформы кристаллизации на кристалле.

Abstract

Биохимические реакции и биологические процессы можно лучше всего понять, продемонстрировав, как белки переходят между своими функциональными состояниями. Поскольку криогенные температуры не являются физиологическими и могут предотвращать, сдерживать или даже изменять структурную динамику белка, очень желателен надежный метод для обычных экспериментов по дифракции рентгеновских лучей при комнатной температуре. Устройство «кристалл на кристалле» и сопутствующее аппаратное и программное обеспечение, используемое в этом протоколе, предназначены для обеспечения рентгеновской дифракции in situ при комнатной температуре кристаллов белка различных размеров без каких-либо манипуляций с образцами. Здесь мы представляем протоколы для ключевых этапов от сборки устройства, кристаллизации на кристалле, оптического сканирования, распознавания кристаллов до планирования рентгеновского снимка и автоматизированного сбора данных. Поскольку эта платформа не требует сбора кристаллов или каких-либо других манипуляций с образцами, от сотен до тысяч кристаллов белка, выращенных на чипе, могут быть введены в рентгеновский луч программируемым и высокопроизводительным способом.

Introduction

Из-за ионизирующего воздействия рентгеновского излучения кристаллография белка в значительной степени была ограничена криогенными условиями в последние три десятилетия. Таким образом, современные знания о движениях белка во время его функционирования в значительной степени возникают из сравнений статических структур, наблюдаемых в различных состояниях в криогенных условиях. Однако криогенные температуры неизбежно препятствуют прогрессированию биохимической реакции или взаимоконверсии между различными конформационными состояниями во время работы белковых молекул. Для непосредственного наблюдения структурной динамики белка при атомном разрешении с помощью кристаллографии необходимы надежные и рутинные методы проведения дифракционных экспериментов при комнатной температуре, что требует технических инноваций в доставке образцов, сборе данных и анализе задних данных. С этой целью последние достижения в области серийной кристаллографии предложили новые возможности для захвата молекулярных изображений промежуточных продуктов и короткоживущих структурных видов при комнатной температуре 1,2,3. В отличие от стратегии «один кристалл — один набор данных», широко используемой в обычной криокристаллографии, серийная кристаллография использует стратегию сбора данных, аналогичную стратегии криоэлектронной микроскопии с одной частицей. В частности, экспериментальные данные в серийной кристаллографии собираются в небольших фракциях из большого количества отдельных образцов с последующей интенсивной обработкой данных, в которой фракции данных оцениваются и объединяются в полный набор данных для определения 3D-структуры4. Эта стратегия «один кристалл — один выстрел» эффективно облегчает рентгеновское радиационное повреждение кристаллов белка при комнатной температуре посредством дифракции перед стратегией разрушения5.

Поскольку серийная кристаллография требует большого количества кристаллов белка для завершения набора данных, она создает серьезные технические проблемы для многих биологических систем, где образцы белка ограничены и / или связана деликатная обработка кристаллов. Другим важным соображением является то, как наилучшим образом сохранить целостность кристаллов в экспериментах по серийной дифракции. Методы дифракции in situ решают эти проблемы, позволяя кристаллам белка дифрагировать непосредственно из того места, где они растут, не нарушая уплотнения камеры кристаллизации 6,7,8,9. Эти методы без обработки естественным образом совместимы с крупномасштабной последовательной дифракцией. Недавно мы сообщили о разработке и реализации кристаллизационного устройства для дифракции in situ на основе концепции кристалл-на-кристалле – белковых кристаллов, выращенных непосредственно на монокристаллическом кварце11. Это устройство «кристалл на кристалле» предлагает несколько преимуществ. Во-первых, он имеет рентгеновское и светлое прозрачное окно, сделанное из монокристаллической кварцевой подложки, которая производит небольшое фоновое рассеяние, что приводит к отличным соотношениям сигнал/шум на дифракционных изображениях из кристаллов белка. Во-вторых, монокристаллический кварц является отличной пароизоляцией, эквивалентной стеклу, тем самым обеспечивая стабильную среду для кристаллизации белка. Напротив, другие кристаллизационные устройства, использующие подложки на полимерной основе, склонны к высыханию из-за паропроницаемости, если полимерный материал не имеет существенной толщины, что, следовательно, способствует высокому фоновому рассеянию10. В-третьих, это устройство позволяет доставлять большое количество кристаллов белка в рентгеновский луч без какой-либо формы манипуляции с кристаллами или сбора, что имеет решающее значение для сохранения целостности кристаллов11.

Для оптимизации последовательных экспериментов по дифракции рентгеновских лучей с использованием кристаллических устройств мы разработали прототип дифрактометра, облегчающий легкое переключение между режимами12 оптического сканирования и дифракции рентгеновских лучей. Этот дифрактометр имеет небольшую площадь и используется для последовательного сбора данных на двух линиях луча усовершенствованного источника фотонов (APS) в Аргоннской национальной лаборатории. В частности, мы использовали BioCARS 14-ID-B для дифракции Лауэ и LS-CAT 21-ID-D для монохроматических колебаний. Это дифрактометрическое оборудование не требуется, если синхротронная или рентгеновская лазерная линия свободных электронов оснащена двумя ключевыми возможностями: (1) моторизованное позиционирование образца с диапазоном перемещения ±12 мм вокруг рентгеновского пучка во всех направлениях; и (2) осевая цифровая камера для просмотра кристаллов при световом освещении, безопасная для исследуемых кристаллов белка. Монокристаллическое кварцевое устройство вместе с портативным дифрактометром и управляющим программным обеспечением для оптического сканирования, распознавания кристаллов и автоматизированного сбора данных in situ в совокупности составляют платформу inSituX для серийной кристаллографии. Хотя эта разработка в первую очередь мотивирована ее динамическими кристаллографическими приложениями с использованием полихроматического источника рентгеновского излучения, мы продемонстрировали потенциал этой технологии для поддержки методов монохроматических колебаний10,12. Благодаря автоматизации эта платформа предлагает высокопроизводительный метод последовательного сбора данных при комнатной температуре с доступным потреблением белка.

В этом материале мы подробно описываем, как настроить кристаллизацию на кристалле в влажной лаборатории и как выполнять последовательный сбор рентгеновских данных на линии синхротронного пучка с помощью платформы inSituX.

Пакетный метод используется для установки кристаллизации на чипе в условиях, аналогичных условиям метода диффузии паров, полученного для того же образца белка (таблица 1). В качестве отправной точки мы рекомендуем использовать осадок в концентрации 1,2-1,5x от таковой для метода диффузии паров. При необходимости состояние кристаллизации партии может быть дополнительно оптимизировано с помощью тонкого сетчатого просеивания. Кварцевые пластины не нужны для оптимизационных испытаний; вместо этого можно использовать стеклянные крышки (см. ниже). Частично загруженные кристаллизационные устройства рекомендуются для проведения оптимизационных испытаний в меньших масштабах. Ряд белковых образцов был успешно кристаллизован на таких устройствах с использованием периодического метода10 (таблица 1).

Само устройство состоит из следующих частей: 1) наружного кольца; 2) две кварцевые пластины; 3) одна шайбообразная прокладка из пластика или нержавеющей стали; 4) стопорное кольцо; 5) микроскоп погружное масло в качестве герметика (рисунок 1). Общий объем кристаллизационного раствора, загруженного на один чип, зависит от цели эксперимента. Емкость камеры кристаллизации можно регулировать, выбирая прокладку различной толщины и/или внутреннего диаметра. Мы регулярно устанавливаем кристаллизационные устройства емкостью 10-20 мкл с использованием прокладок толщиной 50-100 мкм. Типичное устройство может производить от десятков до тысяч кристаллов белка, достаточных для последовательного сбора данных (рисунок 2).

В случае успеха кристаллизация на чипе будет производить десятки, сотни или даже тысячи кристаллов белка на каждом кварцевом устройстве, готовых к рентгеновской дифракции. На синхротронной лучевой линии такое устройство монтируется на трехосевой ступени трансляции дифрактометра с помощью кинематического механизма. Окно кристаллизации навесного устройства оптически сканируется и визуализируется на десятках-сотнях микроснимков. Эти микроснимки затем сшиваются в монтаж с высоким разрешением. Для светочувствительных кристаллов оптическое сканирование может быть выполнено под инфракрасным (ИК) светом, чтобы избежать непреднамеренной фотоактивации. Было разработано программное обеспечение для компьютерного зрения для идентификации и определения местоположения кристаллов белка, случайным образом распределенных на устройстве. Затем эти кристаллы ранжируются в соответствии с их размером, формой и положением, чтобы информировать или направлять стратегию сбора данных в серийной кристаллографии. Например, один или несколько выстрелов могут быть расположены на каждом целевом кристалле. Пользователи могли планировать один проход или несколько маршрутов через целевые кристаллы. Мы внедрили программное обеспечение для вычисления различных маршрутов путешествий. Например, кратчайший маршрут вычисляется с использованием алгоритмов, которые решают задачу13 коммивояжера. Для динамических кристаллографических применений насос-зонд можно выбрать время и продолжительность лазерных (накачки) и рентгеновских (зондовых) снимков. Автоматизированный последовательный сбор данных запрограммирован на перемещение каждого целевого кристалла в рентгеновский пучок один за другим.

К ключевым компонентам дифрактометра insituX относятся: 1) держатель прибора; 2) трехосевой этап трансляции; 3) источник света для оптического сканирования; 4) остановка рентгеновского пучка; 5) накачивать лазеры, если изучаются светочувствительные белки; 6) Микрокомпьютер Raspberry Pi, оснащенный ИК-чувствительной камерой; 7) программное обеспечение управления для синхронизации двигателей, камеры, источников света, накачки лазера и взаимодействия с элементами управления линией луча.

Protocol

1. Предварительная сборка устройства Маркировка наружного кольца (диаметр 30 мм) для идентификации образца. При необходимости укажите название проекта, номер устройства, условие кристаллизации и дату (рисунок 1A). Поместите наружное кольцо вверх ногами на ч?…

Representative Results

За последние несколько лет было опубликовано несколько репрезентативных наборов данных10,12 вместе с кристаллографическими результатами и научными выводами из разнообразного спектра белков, включая фоторецепторные белки и ферменты, например, раститель…

Discussion

Кристаллография белка в первые годы, проводимая при комнатной температуре, испытывала огромные трудности в борьбе с повреждением рентгеновским излучением. Таким образом, он был заменен более надежным методом криокристаллографии, поскольку синхротронные рентгеновские источники стал…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Использование Advanced Photon Source, пользовательского объекта Управления науки, управляемого для Министерства энергетики США Аргоннской национальной лабораторией, было поддержано контрактом DE-AC02-06CH11357. Использование BioCARS было поддержано Национальным институтом общих медицинских наук Национальных институтов здравоохранения под номером гранта R24GM111072. Содержание является исключительной ответственностью авторов и не обязательно отражает официальную точку зрения Национальных институтов здравоохранения. Использование LS-CAT Sector 21 было поддержано Мичиганской корпорацией экономического развития и грантом Michigan Technology Tri-Corridor 085P1000817. Эта работа поддерживается грантами Университета Иллинойса в Чикаго, Национальных институтов здравоохранения (R01EY024363) и Национального научного фонда (MCB 2017274) для XY.

Materials

Analysis software In-house developed
Cerium doped yttrium aluminum garnet MSE Supplies Ce:Y3Al5O12, YAG single crystal substrates
Chip holder In-house developed
Control software In-house developed
Immersion oil Cargille Laboratories 16482 Type A low viscosity 150 cSt
inSituX platform In-house developed
IR light source Thorlabs Incorporated LED1085L LED with a Glass Lens, 1085 nm, 5 mW, TO-18
Microscope Zeiss SteREO Discovery V8
Outer ring In-house developed
Petri dish Fisher Scietific FB0875713
Pipette Pipetman F167380 P10
Pump lasers Thorlabs Incorporated LD785-SE400 785 nm, 400 mW, Ø9 mm, E Pin Code, Laser Diode
Raspberry Pi Raspberry Pi Fundation
Retaining ring Thorlabs Incorporated SM1RR SM1 retaining ring for Ø1" lens tubes and mounts
Seedless quartz crystal University Wafers, Inc. U01-W2-L-190514 25.4 mm diameter Z-cut 0.05 mm thickness double side polish 8 mm on -X
Shim In-house developed
X-ray beam stop In-house developed

Referências

  1. Brändén, G., Neutze, R. Advances and challenges in time-resolved macromolecular crystallography. Science. 373, (2021).
  2. Fischer, M. Macromolecular room temperature crystallography. Quarterly Reviews of Biophysics. 54, (2021).
  3. Schaffer, J. E., Kukshal, V., Miller, J. J., Kitainda, V., Jez, J. M. Beyond X-rays: an overview of emerging structural biology methods. Emerging Topics in Life Sciences. 5 (2), 221-230 (2021).
  4. Nogales, E., Scheres, S. H. W. Cryo-EM: A unique tool for the visualization of macromolecular complexity. Molecular Cell. 58, 677-689 (2015).
  5. Chapman, H. N., Caleman, C., Timneanu, N. Diffraction before destruction. Philosophical Transactions of the Royal Society B Biological Sciences. 369, 20130313 (2014).
  6. Kisselman, G., et al. X-CHIP: an integrated platform for high-throughput protein crystallization and on-the-chip X-ray diffraction data collection. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography. 67 (6), 533-539 (2011).
  7. Liang, M., et al. Novel combined crystallization plate for high-throughput crystal screening and in situ data collection at a crystallography beamline. Acta Crystallographica Section F Structural Biology Communications. 77, 319-327 (2021).
  8. le Maire, A., et al. In-plate protein crystallization, in situ ligand soaking and X-ray diffraction. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography. 67, 747-755 (2011).
  9. Perry, S. L., et al. In situ serial Laue diffraction on a microfluidic crystallization device. Journal of Applied Crystallography. 47, 1975-1982 (2014).
  10. Ren, Z., et al. Crystal-on-crystal chips for in situ serial diffraction at room temperature. Lab on a Chip. 18, 2246-2256 (2018).
  11. Ren, Z. Single crystal quartz chips for protein crystallization and X-ray diffraction data collection and related methods. US patent. , (2017).
  12. Ren, Z., et al. An automated platform for in situ serial crystallography at room temperature. IUCrJ. 7, 1009-1018 (2020).
  13. Croes, G. A. A method for solving traveling salesman problems. Operations Research. 6, 791-812 (1958).
  14. Bandara, S., et al. Crystal structure of a far-red-sensing cyanobacteriochrome reveals an atypical bilin conformation and spectral tuning mechanism. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118, 2025094118 (2021).
  15. Shin, H., Ren, Z., Zeng, X., Bandara, S., Yang, X. Structural basis of molecular logic OR in a dual-sensor histidine kinase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116, 19973-19982 (2019).
  16. Yang, X., Ren, Z., Kuk, J., Moffat, K. Temperature-scan cryocrystallography reveals reaction intermediates in bacteriophytochrome. Nature. 479, 428-432 (2011).
  17. Zhang, F., Scheerer, P., Oberpichler, I., Lamparter, T., Krauss, N. Crystal structure of a prokaryotic (6-4) photolyase with an Fe-S cluster and a 6,7-dimethyl-8-ribityllumazine antenna chromophore. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 7217-7222 (2013).
  18. Zeng, X., et al. Dynamic crystallography reveals early signaling events in ultraviolet photoreceptor UVR8. Nature Plants. 1, 14006 (2015).
  19. Wang, M., et al. Insights into base selectivity from the 1.8 Å resolution structure of an RB69 DNA polymerase ternary complex. Bioquímica. 50, 581-590 (2011).
  20. Rodgrs, D. W. Cryocrystallography. Structure. 2, 1135-1140 (1994).
  21. Zhao, F. -. Z., et al. A guide to sample delivery systems for serial crystallography. TheFEBS Journal. 286, 4402-4417 (2019).

Play Video

Citar este artigo
Biju, L. M., Wang, C., Kang, W., Tom, I. P., Kumarapperuma, I., Yang, X., Ren, Z. On-Chip Crystallization and Large-Scale Serial Diffraction at Room Temperature. J. Vis. Exp. (181), e63022, doi:10.3791/63022 (2022).

View Video