Summary

Dissociação Mecânica e Enzimática Combinada do Tecido Hipocampal cerebral do rato

Published: October 21, 2021
doi:

Summary

Este protocolo de dissociação de células neurais destina-se a amostras com uma baixa quantidade de material inicial e produz uma suspensão de célula única altamente viável para análise a jusante, com medidas de fixação e coloração opcionais.

Abstract

Este protocolo de dissociação neural (uma adaptação do protocolo que acompanha um kit comercial de dissociação cerebral adulta) otimiza o processamento de tecidos em preparação para análises detalhadas a jusante, como citometria de fluxo ou sequenciamento unicelular. A dissociação neural pode ser conduzida através de dissociação mecânica (como o uso de filtros, técnicas de corte ou trituração de pipetas), digestão enzimática ou uma combinação dela. A natureza delicada das células neuronais pode complicar os esforços para obter a suspensão de célula única altamente viável e verdadeira com detritos celulares mínimos necessários para análise unicelular. Os dados demonstram que essa combinação de dissociação mecânica automatizada e digestão enzimática consistentemente produz uma suspensão unicelular altamente viável (>90%), superando as dificuldades acima mencionadas. Embora algumas das etapas exijam destreza manual, essas etapas diminuem o manuseio da amostra e a perda potencial de células. Este manuscrito detalha cada etapa do processo para equipar outros laboratórios para dissociar com sucesso pequenas quantidades de tecido neural em preparação para análise a jusante.

Introduction

O hipocampo foi descrito pela primeira vez por um anatomista bolonhesa, Giulio Cesare Aranzio, em 1500. Ao nomear esta nova estrutura, Aranzio foi provavelmente inspirado por sua estranha semelhança com o cavalo-marinho do gênero Hipocampo1. O hipocampo está envolvido em respostas ao estresse, mas é amplamente conhecido por seu papel no aprendizado e na memória. Mais especificamente, o hipocampo é responsável pela codificação e recuperação da memória declarativa e espacial1.

O hipocampo, ou hipocampo propriamente dito, é dividido nos subcampos CA1 (cornu ammonis), CA2 e CA31. Comparado com o resto do sistema nervoso, o hipocampo tem várias características únicas de definição, incluindo sua plasticidade e potencial para neurogênesecontínua 2. Neurogênese é o processo de proliferação e diferenciação de células-tronco neurais, seguida por sua integração na rede neuronal pré-existente. A neurogênese é restrita à zona subgranular do giro dentado e da zona subventricular dos ventrículos laterais (e das lâmpadas olfativas)3. Embora a neurogênese seja abundante em embriogênese, é um processo ao longo da vida 3,4. Como tal, essa discussão se concentrará na neurogênese adulta no hipocampo.

As zonas subventricular e subgranular são nichos neurogênicos contendo células ependísicas e vasculares, bem como linhagens imaturas e maduras de células-tronco neurais5. A microglia contribui para esses nichos como células imunes para regular a neurogênese6. Progenitoras neurais são progenias não-progenias de células-tronco de células-tronco neurais7. Três tipos de progenitores neurais estão presentes na zona subventricular: células tipo B radial, progenitores progenitores do tipo C e neuroblastos tipo A 3,8. As células progenitoras neurais do tipo B na zona subventricular podem se diferenciar em células tipo C que dividem lentamente8. Posteriormente, as células tipo C se diferenciam em células tipo A8. Esses neuroblastos migram através do fluxo migratório rostral para a lâmpada olfativa antes de se diferenciarem em interneurons ou oligodendrocytes9. Estes interneurônios de bulbo olfativos são fundamentais para a memória olfativa de curto prazo, e aprendizado associativo, enquanto os oligodendrocitos myelinatos axônios do corpus calosum9. A maioria da neurogênese adulta ocorre na zona subgranular do giro dentado, onde progenitores neurais radiais tipo 1 e não racial 2 são encontrados3. A maioria das células progenitoras neurais estão destinadas a se tornar neurônios dentes e astrócitos10. Conectados por junções de lacunas, os astrócitos formam redes para modular plasticidade, atividade sináptica e excitabilidade neuronal5. Como o neurônio excitatório primário do giro dentado, as células de grânulo fornecem entrada do córtex entorhinal para a regiãoCA3 11.

As populações de células-tronco neurais podem ser isoladas usando estratégias de isolamento imunomagnético ou imunofluorescente12,13. O tecido neural é particularmente difícil de dissociar; esforços para fazê-lo muitas vezes resultam em amostras com má viabilidade celular e/ou não produzem a suspensão de célula única necessária para análise a jusante. A dissociação neural pode ser conduzida por meio de dissociação mecânica (como o uso de filtros, técnicas de corte ou trituração de pipetas), digestão enzimática ou uma combinação de técnicas14,15. Em estudo que avaliou os métodos de dissociação neural, foram comparadas15 a viabilidade e a qualidade da dissociação mecânica manual por trituração de pipetas versus combinações de trituração de pipetas e digestão com várias enzimas. A qualidade foi classificada com base na quantidade de aglomerados celulares e DNA ou detritos subcelulares na suspensão preparada15. As suspensões de tumores gliais submetidos apenas à dissociação mecânica manual apresentaram viabilidade celular significativamente menor do que os tratamentos com dispase ou uma combinação de DNase, colagenase e hialuronidase15. Volovitz et al. reconheceram a variação da viabilidade e da qualidade entre os diferentes métodos e enfatizaram que a dissociação inadequada pode reduzir a precisão da análise a jusante15.

Em um estudo separado, os autores compararam mais de 60 métodos diferentes e combinações de dissociação de células neuronais cultivadas14. Estes métodos incluíram oito variações diferentes de dissociação mecânica manual por trituração de pipetas, comparação da incubação com cinco enzimas individuais em três intervalos diferentes, e várias combinações de dissociação mecânica com digestão enzimática ou a combinação de duas enzimas14. Nenhum dos métodos mecânicos resultou em uma suspensão de célula única14. Quatro dos tratamentos enzimáticos únicos, dez dos tratamentos enzimáticos combinados, e quatro das combinações de dissociação mecânica com digestão enzimática produziram uma suspensão unicelular14. Digestão enzimática com TrypLE seguido por Trypsin-EDTA mais efetivamente dissociado amostras14. Aliás, amostras tratadas com TrypLE e/ou Trypsin-EDTA tendem a formar aglomerados gelatinosos14. Embora este estudo tenha sido realizado em células cultivadas, ele fala apenas das deficiências da trituração de pipetas ou da digestão enzimática.

Faltam comparações lado a lado de dissociação mecânica manual versus automatizada. No entanto, um grupo executou citometria de fluxo para comparar a dissociação mecânica manual e semi-automatizada de cérebros inteiros de camundongos em conjunto com os kits comerciais de dissociação enzimática papain ou trypsin16. O processamento com o dissociador produziu de forma mais consistente células viáveis16. Após a dissociação, os autores também isolaram células prominina-1, células precursoras neuronais e microglia16. Para duas das três populações celulares isoladas, a pureza das células isoladas foi ligeiramente maior quando as amostras foram processadas com o dissociador, em comparação commanualmente 16. Reiß et al. observaram que a variabilidade de pessoa para pessoa na técnica de pipetagem dificulta a reprodutibilidade do rendimento da população celular viável na dissociação tecidual16. Os autores concluíram que a dissociação mecânica automatizada padroniza o processamento da amostra16.

O método de dissociação descrito neste manuscrito é uma combinação de dissociação mecânica totalmente automatizada e digestão enzimática, utilizando soluções que acompanham um kit comercial de dissociação cerebral adulta17. Ao contrário dos protocolos padrão, este protocolo otimizado reduz a manipulação da amostra, produz uma suspensão de célula única altamente viável, e destina-se a processar quantidades mínimas de tecido inicial.

Protocol

Os experimentos foram realizados de acordo com os padrões éticos aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da UAMS. Camundongos fêmeas C57Bl6/J de 6 meses de idade foram comprados e agrupados (4 ratos por gaiola) sob um ciclo constante de 12 horas de luz/escuridão. 1. Preparação de reagentes Prepare a solução de estoque de manchas vivas/mortas fixas. Reconstitua a mancha fluorescente com 20 μL de sulfóxido de dimetila (DMSO). Enrole o frasc…

Representative Results

As amostras foram processadas com um citômetro de fluxo em uma instalação central, e os dados resultantes foram avaliados com um pacote de software para análise de fluxo. Anteriormente, foram analisados os controles de compensação- a mancha viva/morta e o controle negativo. Se forem utilizados vários fluorochromes, os controles de fluorescência menos um (FMO) e os controles de uma única mancha devem ser preparados para cada anticorpo. A compensação pela sobreposição espectral para as amostras experimentais f…

Discussion

Várias etapas neste protocolo de dissociação neural requerem técnica proficiente e destreza-perfusão, aspiração supernante e remoção de mielina. Durante todo o processo de perfusão, os órgãos internos devem permanecer intactos (além de remover o diafragma e cortar o coração); isso inclui evitar as câmaras superiores do coração com a agulha borboleta. Enquanto a quantidade de soro fisiológico com heparina necessária varia, o fluido transparente que flui do coração indica que o processo está completo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos à Aimee Rogers por fornecer treinamento prático e suporte contínuo ao produto. Agradecemos à Dra. Agradecemos a Meredith Joheim e ao Grupo de Comunicação Científica da UAMS pela edição gramatical e formatação deste manuscrito. Este estudo foi apoiado pelo NIH R25GM083247 e NIH 1R01CA258673 (A.R.A).

Materials

1.5 mL Microcentrifuge Tubes Fisher Scientific 02-682-003 Basix, assorted color
15 mL Falcon Tubes Becton Dickinson Labware Europe 352009 Polystyrene
25 mL Serological Pipets Fisher Scientific 14-955-235
5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube Falcon 352052
500 mL Vacuum Filter/ Storage Bottle System Corning 431097
70 μm cell strainer Fisher Scientific 08-771-2
Adult Brain Dissociation Kit Miltenyi Biotec  130-107-677 Contains Enzyme P, Buffer Z, Buffer Y, Enzyme A, Buffer A, Debris Removal Solution
Aluminum Foil Fisher Scientific 01-213-105
Anti-ACSA-2-PE-Vio770, mouse, clone REA969 Miltenyi Biotec 130-116-246
Anti-Myelin Basic Protein Sigma-Aldrich M3821-100UG
Anti-PSA-NCAM-PE, human, mouse and rat, Clone 2-2B Miltenyi Biotec 130-117-394
BD LSRFortessa BD
BSA Sigma-Aldrich A7906-50G
CD11b-VioBlue, mouse, Clone REA592 Miltenyi Biotec 130-113-810
CD31 Antibody Miltenyi Biotec 130-111-541
Ceramic Hot Plate Stirrer Fisher Scientific 11-100-100SH
Dimethyl Sulfoxide Fisher Scientific BP231-100
Ethanol Pharmco by Greenfield Global 111000200
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-432-22
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14060-09 Perfusion
FlowJo BD (v10.7.0)
gentleMACS C Tubes Miltenyi Biotec 130-093-237
gentleMACS Octo Dissociator with Heaters Miltenyi Biotec 130-096-427
Gibco DPBS (1X) ThermoFisher Scientific 14190144
Glass Beaker Fisher Scientific 02-555-25A
Heparin sodium Fresenius Kabi 504011
LIVE/DEAD Fixable Aqua Dead Cell Stain Kit ThermoFisher L34965
Magnetic Stir Bar Fisher Scientific 14-513-51
Noyes Spring Scissors Fine Science Tools 15012-12 Dissection
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 441244-3KG Prilled, 95%
Pipette tips GP LTS 20 µL 960A/10 Rainin 30389270
Pipette Tips GP LTS 250 µL 960A/10 Rainin 30389277
Pipette tips RT LTS 1000 µL FL 768A/8 Rainin 30389213
Rainin Pipet-Lite XLS (2, 20, 200, 1000 μL) Rainin 30386597
RBXMO FITC XADS Fisher Scientific A16167
Round Ice Bucket with Lid Fisher Scientific 07-210-129
Round-Bottom Tubes with Cell Strainer Cap Falcon 100-0087
S1 Pipet Fillers ThermoFisher Scientific 9541
Spatula & Probe Fine Science Tools 10090-13 Dissection & Perfusion
Surflo Winged Infusion Set 23 G x 3/4" Termuno SV-23BLK Butterfly needle
Test Tube Rack Fisher Scientific 14-809-37
Thermo Scientific Legend XTR Centrifuge ThermoFisher discontinued Or other standard table top centrifuge
Variable-Flow Peristaltic Pump Fisher Scientific 13-876-2 Low-flow model
VetFlo Starter Kit for Mice Kent Scientific VetFlo-MSEKIT Anesthesia mask, tubing, induction chamber, charcoal canisters
VetFlo Vaporizer Single Channel Anesthesia System Kent Scientific VetFlo-1210S 0.2–4 LPM
Vi-CELL XR Cell Viability Analyzer Beckman Coulter Life Sciences 731196 Cell Counting
Vi-CELL XR 4 Bags of Sample Vials Beckman Coulter Life Sciences 383721 Cell Counting

Referências

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Citar este artigo
Trujillo, M., McElroy, T., Brown, T., Simmons, P., Ntagwabira, F., Allen, A. R. Combined Mechanical and Enzymatic Dissociation of Mouse Brain Hippocampal Tissue. J. Vis. Exp. (176), e63007, doi:10.3791/63007 (2021).

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