Summary

Hjerneorganoidgenerering fra inducerede pluripotente stamceller i hjemmelavede minibioreaktorer

Published: December 11, 2021
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokol til generering af hjerneorganoider fra menneskeskabte pluripotente stamceller (iPSC’er). For at opnå hjerneorganoider i store mængder og af høj kvalitet bruger vi hjemmelavede minibioreaktorer.

Abstract

Den iPSC-afledte hjerneorganoid er en lovende teknologi til in vitro-modellering af patologierne i nervesystemet og lægemiddelscreening. Denne teknologi er opstået for nylig. Det er stadig i sin vorden og har nogle begrænsninger uløst endnu. De nuværende protokoller tillader ikke at opnå organoider at være konsekvent nok til opdagelse af lægemidler og prækliniske undersøgelser. Modningen af organoider kan tage op til et år og presse forskerne til at lancere flere differentieringsprocesser samtidigt. Det pålægger laboratoriet yderligere omkostninger med hensyn til plads og udstyr. Derudover har hjerneorganoider ofte en nekrotisk zone i midten, som lider af næringsstof og iltmangel. Derfor bruger de fleste nuværende protokoller et cirkulerende system til kulturmedium til at forbedre ernæringen.

I mellemtiden er der ingen billige dynamiske systemer eller bioreaktorer til organoid dyrkning. Dette papir beskriver en protokol til fremstilling af hjerneorganoider i kompakte og billige hjemmelavede minibioreaktorer. Denne protokol gør det muligt at opnå organoider af høj kvalitet i store mængder.

Introduction

Humane iPSC-afledte modeller anvendes i vid udstrækning i undersøgelserne af neuroudviklingsmæssige og neurodegenerative lidelser1. I løbet af det seneste årti har 3D-hjernevævsmodeller, såkaldte hjerneorganoider, i det væsentlige suppleret traditionelle 2D neuronale kulturer2. Organoiderne generobrer til en vis grad den embryonale hjernes 3D-arkitektur og tillader mere præcis modellering. Mange protokoller er offentliggjort for generering af organoider, der repræsenterer forskellige hjerneområder: cerebral cortex3,4,5, lillehjern6, midbrain, forhjern, hypothalamus7,8,9og hippocampus10. Der har været flere eksempler på at bruge organoider til at studere sygdomme i menneskers nervesystem11. Organoiderne blev også implementeret i lægemiddelfund12 og anvendes i undersøgelser af smitsomme sygdomme, herunder SARS-Cov-213,14.

Hjernen organoider kan nå op til flere millimeter i diameter. Så den indre zone af organoid kan lide af hypoxi eller underernæring og i sidste ende blive nekrotisk. Derfor omfatter mange protokoller specielle bioreaktorer8,shakere eller mikrofluidiske systemer15. Disse enheder kan kræve store mængder dyre cellekulturmedier. Omkostningerne ved sådant udstyr er også normalt høje. Nogle bioreaktorer består af mange mekaniske dele, der gør dem vanskelige at sterilisere til genbrug.

De fleste protokoller lider af “batcheffekten”16, som genererer betydelig variation blandt organoider opnået fra de identiske iPSCs. Denne variation hindrer dopingtest eller prækliniske undersøgelser, der kræver ensartethed. Det høje udbytte af organoider nok til at vælge organoider af ensartet størrelse kan delvist løse dette problem.

Tidsfaktoren er også et væsentligt problem. Matsui et al. (2018) viste, at hjerneorganoider kræver mindst seks måneder for at nå modenhed17. Trujillo et al. (2019) viste også, at elektrofysiologisk aktivitet først forekom i organoider efter seks måneders dyrkning18. På grund af den lange organoid modningstid lancerer forskerne ofte ny differentiering, før de afslutter den foregående. Flere parallelle processer for differentiering kræver yderligere udgifter, udstyr og laboratorieplads.

Vi har for nylig udviklet en mini bioreaktor, der primært løser de ovennævnte problemer. Denne hjemmelavede bioreaktor består af en ultra-lav vedhæftning eller ubehandlet petriskål med en plastikknap i midten. Denne plast drejeknap forhindrer fortrængning af organoider og deres conglutination i midten af Petri parabol, som er forårsaget af rotation af shaker. Dette papir beskriver, hvordan denne billige og enkle hjemmelavede minibioreaktor gør det muligt at generere hjerneorganoider af høj kvalitet i store mængder.

Protocol

BEMÆRK: Brug steril teknik i hele protokollen, undtagen trin 1.2 og 1.3. Varm alle kulturmedier og opløsninger op til 37 °C, før de påføres celler eller organoider. Dyrke celler i en CO2-inkubator ved 37 °C ved 5% CO2 ved 80% fugtighed. Protokolskemaet er vist i figur 1. 1. Omdanne Petri retter i mini bioreaktorer Skær sterile 15 mL centrifugerør i ringe på 7-8 mm i højden; autoklaveringerne. Br…

Representative Results

Protokolskemaet er vist i figur 1. Protokollen omfattede fem medier, hvor iPSCs differentieret i hjernen organoider i løbet af mindst en måned. Differentiering blev startet derefter iPSCs nåede 75-90% sammenløbet (figur 2A,B). De første tegn på differentiering mod neuroner blev observeret på dag 10-11 af iPSC dyrkning i medium A, når cellerne begyndte at klynge sig til “rosetter” (Figur 2C). På dag 14-15 di…

Discussion

Den beskrevne protokol har to afgørende skridt, der gør det muligt at frembringe organoider af høj kvalitet af ensartet størrelse. For det første vokser organoiderne fra spheroider, der er næsten identiske i celletal og cellemodenhed. For det andet giver de hjemmelavede bioreaktorer hver organoid et ensartet miljø, hvor organoider ikke fortrænger eller holder sammen.

Cellekvaliteten og tilstanden af cellemodning er afgørende for at udføre protokollen. Det er afgørende at starte neur…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud 075-15-2019-1669 fra Ministeriet for Videnskab og Videregående Uddannelse i Den Russiske Føderation (RT-PCR-analyse) og ved tilskud nr. 19-15-00425 fra Den Russiske Videnskabsfond (for alt andet arbejde). Forfatterne takker også Pavel Belikov for hans hjælp med videoredigeringen. Figurer i manuskriptet blev skabt med BioRender.com.

Materials

Advanced DMEM/F-12 Gibco 12634010 DMEM/F-12
AggreWell400 STEMCELL Technologies Inc 34425 24-well culture plate with microwells
B-27 Supplement Gibco 17504044 Neuronal supplement B
GlutaMAX Supplement Gibco 35050061 200 mM L-alanyl-L-glutamine
Human BDNF Miltenyi Biotec 130-096-285
Human FGF-2 Miltenyi Biotec 130-093-839
Human GDNF Miltenyi Biotec 130-096-290
KnockOut Serum Replacement Gibco 10828028 Serum replacement
mTESR1 STEMCELL Technologies Inc 85850 Pliripotent stem cell medium
N2 Supplement Gibco 17502001
Neurobasal Medium Gibco 21103049 Basal medium for neuronal cell maintenance
Penicillin-Streptomycin Solution Gibco 15140130
Plasmocin InvivoGen ant-mpt-1 Antimicrobials
Purmorphamine EMD Millipore 540220
StemMACS Y27632 Miltenyi Biotec 130-106-538 Y27632
StemMACS Dorsomorphin Miltenyi Biotec 130-104-466 Dorsomorphin
StemMACS LDN-193189 Miltenyi Biotec 130-106-540 LDN-193189
StemMACS SB431542 Miltenyi Biotec 130-106-543 SB431542
Trypan Blue Solution Gibco 15250061
Versen solution Gibco 15040066 0.48 mM EDTA in PBS
β-mercaptoethanol Gibco 31350010

Referências

  1. Marchetto, M. C., Winner, B., Gage, F. H. Pluripotent stem cells in neurodegenerative and neurodevelopmental diseases. Human Molecular Genetics. 19, 71-76 (2010).
  2. Lee, C. T., Bendriem, R. M., Wu, W. W., Shen, R. F. 3D brain Organoids derived from pluripotent stem cells: promising experimental models for brain development and neurodegenerative disorders. Journal of Biomedical Science. 24 (1), 1-12 (2017).
  3. Kadoshima, T., et al. Self-organization of axial polarity, inside out layer pattern, and species-specific progenitor dynamics in human ES cell-derived neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences U.S.A. 110 (50), 20284 (2013).
  4. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  5. Xiang, Y., et al. Fusion of regionally specified hPSC derived organoids models human brain development and interneuron migration. Cell Stem Cell. 21, 383-398 (2017).
  6. Muguruma, K., Nishiyama, A., Kawakami, H., Hashimoto, K., Sasai, Y. Self-organization of polarized cerebellar tissue in 3D culture of human pluripotent stem cells. Cell Reports. 10 (4), 537-550 (2015).
  7. Qian, X., et al. Brain region specific organoids using mini bioreactors for modeling ZIKV exposure. Cell. 165 (5), 1238-1254 (2016).
  8. Qian, X., et al. Generation of human brain region specific organoids using a miniaturized spinning bioreactor. Nature Protocols. 13 (3), 565-580 (2018).
  9. Jo, J., et al. Midbrain like organoids from human pluripotent stem cells contain functional dopaminergic and neuro melanin producing neurons. Cell Stem Cell. 19 (2), 248-257 (2016).
  10. Sakaguchi, H., et al. Generation of functional hippocampal neurons from self-organizing human embryonic stem cell derived dorsomedial telencephalic tissue. Nature Communication. 6 (1), 8896 (2015).
  11. Di Lullo, E., Kriegstein, A. R. The use of brain organoids to investigate neural development and disease. Nature Reviews Neuroscience. 18 (10), 573-584 (2017).
  12. Chen, K. G., et al. Pluripotent stem cell platforms for drug discovery. Trends in Molecular Medicine. 24 (9), 805-820 (2018).
  13. Dang, J., et al. Zika virus depletes neural progenitors in human cerebral organoids through activation of the innate immune receptor TLR3. Cell Stem Cell. 19 (2), 258-265 (2016).
  14. Tiwari, S. K., Wang, S., Smith, D., Carlin, A. F., Rana, T. M. Revealing tissue-specific SARS-CoV-2 infection and host responses using human stem cell-derived lung and cerebral organoids. Stem Cell Reports. 16 (3), 437-445 (2021).
  15. Ao, Z., et al. One-stop microfluidic assembly of human brain organoids to model prenatal cannabis exposure. Analytical Chemistry. 92 (6), 4630-4638 (2020).
  16. Di Nardo, P., Parker, G. C. Stem cell standardization. Stem Cells Development. 20 (3), 375-377 (2011).
  17. Jo, J., Xiao, Y., et al. Midbrain like organoids from human pluripotent stem cells contain functional dopaminergic and neuro melanin producing neurons. Cell Stem Cell. 19 (2), 248-257 (2016).
  18. Matsui, T. K., et al. Six-month cultured cerebral organoids from human ES cells contain matured neural cells. Neuroscience Letters. 670, 75-82 (2018).
  19. Trujillo, C. A., et al. Complex oscillatory waves emerging from cortical organoids model early human brain network development. Cell Stem Cell. 25 (4), 558-569 (2019).
  20. Eremeev, A. V., et al. Necessity Is the mother of invention” or inexpensive, reliable, and reproducible protocol for generating organoids. Biochemistry (Moscow). 84 (3), 321-328 (2019).
  21. Qian, X., et al. Generation of human brain region–specific organoids using a miniaturized spinning bioreactor. Nature Protocols. 13, 565-580 (2018).
  22. Matsui, T. K., Tsuru, Y., Hasegawa, K., Kuwako, K. I. Vascularization of human brain organoids. Stem Cells. 39 (8), 1017-1024 (2021).
  23. Hall, G. N., et al. Patterned, organoid-based cartilaginous implants exhibit zone specific functionality forming osteochondral-like tissues in vivo. Biomaterials. 273, 120820 (2021).
  24. Zachos, N. C., et al. Human enteroids/colonoids and intestinal organoids functionally recapitulate normal intestinal physiology and pathophysiology. Journal of Biological Chemistry. 291, 3759-3766 (2016).
  25. Eremeev, A., et al. Cerebral organoids—challenges to establish a brain prototype. Cells. 10 (7), 1790 (2021).
  26. Kadoshima, T., et al. Self-organization of axial polarity, inside-out layer pattern, and species-specific progenitor dynamics in human ES Cell-derived neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences U. S. A. 110, 20284-20289 (2013).
check_url/pt/62987?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Eremeev, A., Belikova, L., Ruchko, E., Volovikov, E., Zubkova, O., Emelin, A., Deev, R., Lebedeva, O., Bogomazova, A., Lagarkova, M. Brain Organoid Generation from Induced Pluripotent Stem Cells in Home-Made Mini Bioreactors. J. Vis. Exp. (178), e62987, doi:10.3791/62987 (2021).

View Video