Summary

डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक पर ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि की लाइव-सेल इमेजिंग

Published: September 20, 2021
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल एक नई रिपोर्टर जीन प्रणाली और एकल-अणु संवेदनशीलता के साथ डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक पर प्रतिलेखन का पता लगाने के लिए प्रयोगात्मक सेटअप प्रस्तुत करता है।

Abstract

डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक (डीएसबी) डीएनए क्षति का सबसे गंभीर प्रकार है। जीनोम अखंडता पर विनाशकारी परिणामों के बावजूद, यह अब तक मायावी बना हुआ है कि डीएसबी प्रतिलेखन को कैसे प्रभावित करते हैं। इसका एक कारण प्रतिलेखन की निगरानी करने के लिए उपयुक्त उपकरणों की कमी और पर्याप्त अस्थायी और स्थानिक संकल्प के साथ एक जेनिक डीएसबी का प्रेरण था। यह काम नए पत्रकारों के एक सेट का वर्णन करता है जो डीएनए टेम्पलेट में डीएसबी के प्रेरण के तुरंत बाद लाइव कोशिकाओं में प्रतिलेखन की कल्पना करते हैं। बैक्टीरियोफेज आरएनए स्टेम-लूप को एकल-अणु संवेदनशीलता के साथ प्रतिलेखन की निगरानी करने के लिए नियोजित किया जाता है। एक विशिष्ट जीन क्षेत्र के लिए डीएसबी को लक्षित करने के लिए, रिपोर्टर जीन को होमिंग एंडोन्यूक्लिएज I-SceI के एकल मान्यता अनुक्रम को शामिल करने के लिए इंजीनियर किया जाता है, अन्यथा मानव जीनोम से अनुपस्थित होता है। प्रत्येक रिपोर्टर जीन की एक एकल प्रति मानव सेल लाइनों के जीनोम में एकीकृत की गई थी। यह प्रयोगात्मक प्रणाली विहित जीन प्रतिलेखन द्वारा या डीएनए ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन दीक्षा द्वारा उत्पन्न एकल आरएनए अणुओं का पता लगाने की अनुमति देती है। ये रिपोर्टर प्रतिलेखन और डीएनए क्षति के बीच पारस्परिक बातचीत की व्याख्या करने और डीएनए ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन के अब तक के अप्रशंसित पहलुओं का खुलासा करने के लिए एक अभूतपूर्व अवसर प्रदान करते हैं।

Introduction

डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक (डीएसबी) विषाक्त डीएनए घाव हैं जो सेल फ़ंक्शन को बाधित करते हैं और कई बीमारियों और उम्र बढ़ने के विद्रोह में योगदान करते हैं। DSBs की गलत मरम्मत के परिणामस्वरूप उत्परिवर्तन जीन अभिव्यक्ति को प्रभावित करते हैं और सेल की कार्यात्मक गिरावट के लिए आधार निर्धारित करते हैं। आकस्मिक दृष्टिकोण है कि डीएसबी घाव साइट 2,3,4,5,6,7 पर डी नोवो ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन को ड्राइव करते हैं, यह बताता है कि डीएसबी ब्रेक-प्रेरित आरएनए के माध्यम से सेलुलर फ़ंक्शन को भी प्रभावित कर सकते हैं। हाल के कई अध्ययनों से संकेत मिलता है कि डीएसबी प्रोग्राम किए गए (उदाहरण के लिए, उत्तेजना-अपरिवर्तनीय जीन पर) और अनिर्धारित (जैसे, गैर-विहित प्रवर्तकों पर) ट्रांसक्रिप्शन 4,5,7 शुरू करने के लिए पर्याप्त हैं। हालांकि, डीएनए क्षति और प्रतिलेखन के बीच संबंधों की खोज करने वाले कई अध्ययनों के बावजूद, यह क्षेत्र अभी भी डीएनए ब्रेक साइटों पर ट्रांसक्रिप्शनल घटनाओं के सटीक (यानी, एकल-अणु) लक्षण वर्णन को वितरित करने की अपनी क्षमता में पिछड़ गया। इसका एक महत्वपूर्ण कारण उपयुक्त प्रयोगात्मक उपकरणों की कमी थी। सेल विकिरण (γ-किरणें, एक्स-रे, भारी आयन) और दवा उपचार (जैसे, टोपोआइसोमेरेस इनहिबिटर या इंटरकैलेटिंग एजेंट) में स्थानिक सटीकता की कमी होती है और डीएसबी के अलावा अन्य डीएनए घावों को प्रेरित किया जाता है, जिसमें एकल-स्ट्रैंड ब्रेक और डीएनए adducts8 शामिल हैं। एंडोन्यूक्लिएज, जैसे कि I-PpoI और AsiSI, लोकस-विशिष्ट DSBs उत्पन्न करते हैं, लेकिन एक ऐसी प्रणाली के साथ संयुक्त नहीं किए गए हैं जो उच्च अस्थायी परिशुद्धता के साथ एक ही स्थान पर प्रतिलेखन के एक साथ लाइव-सेल विज़ुअलाइज़ेशन की अनुमति देता है। इस सीमा को बायपास करने के लिए, हमारी प्रयोगशाला ने अत्याधुनिक पत्रकारों का एक सेट विकसित करने का नेतृत्व किया जो सीधे एक अद्वितीय डीएसबी 4 के नियंत्रित प्रेरण पर एकल-अणु संकल्प के साथ प्रतिलेखन की कल्पना करते हैं। यहां, हम इन पत्रकारों का वर्णन करते हैं, डीएसबी में प्रतिलेखन के लाइव-सेल इमेजिंग के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रदान करते हैं और एकल डीएसबी में प्रतिलेखन दीक्षा का खुलासा करने वाले डेटा दिखाते हैं।

इस प्रोटोकॉल में उपयोग किए जाने वाले रिपोर्टर जीन सिस्टम अच्छी तरह से विशेषता वाले माउस IgM रिपोर्टर जीन पर आधारित हैं और इसमें IgM के झिल्ली-बाउंड फॉर्म (μm) के एक्सोन M1 और M2 होते हैं μ भारी श्रृंखला 9,10,11। एक हाइब्रिड इंट्रॉन मजबूत एडेनोवायरस प्रमुख देर से प्रतिलेख (AdML) PY tract12 के साथ दो exons अलग करता है। रिपोर्टर जीन की अभिव्यक्ति को मानव साइटोमेगालोवायरस प्रमोटर (सीएमवी) द्वारा नियंत्रित किया जाता है, जिसमें टेट ऑपरेटर (टेटो) अनुक्रम की दो अग्रानुक्रम प्रतियां डाली गई हैं। रिपोर्टर जीन प्रत्येक एक प्लास्मिड वेक्टर में डाला जाता है जिसमें एक एफएलपी पुनर्संयोजन लक्ष्य (एफआरटी) साइट होती है और एक एचईके 293 होस्ट सेल लाइन के जीनोम में एक विशिष्ट एफआरटी लक्ष्य साइट में डाला जाता है। यह सेल लाइन टेट्रासाइक्लिन / डॉक्सीसाइक्लिन की उपस्थिति या अनुपस्थिति के माध्यम से रिपोर्टर जीन की अभिव्यक्ति को विनियमित करने के लिए टेट दमनकारी प्रोटीन को भी व्यक्त करती है। रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन के विज़ुअलाइज़ेशन की अनुमति देने के लिए, एमएस 2 स्टेम लूप अनुक्रम के 24 अग्रानुक्रम दोहराव और पीपी 7 स्टेम लूप अनुक्रम के 24 अग्रानुक्रम दोहराव को ट्रांसक्रिप्शन स्टार्ट साइट और रिपोर्टर जीन के एक्सोन / इंट्रॉन संरचना के संबंध में विभिन्न पदों पर डाला गया था। MS2 / PP7 आरएनए स्टेम लूप प्रतिलेखन पर बनते हैं और विशेष रूप से हरे और लाल फ्लोरोसेंट प्रोटीन के साथ टैग किए गए एक्टोपिकल रूप से व्यक्त एमएस 2 / पीपी 7 कोट प्रोटीन द्वारा बाध्य होते हैं, एक रणनीति जो व्यापक रूप से ट्रांसक्रिप्शन 13,14,15 की छवि बनाने से पहले उपयोग की जाती है इसके अलावा, होमिंग एंडोन्यूक्लिएज I-SceI के लिए 18 बीपी मान्यता अनुक्रम की एक एकल प्रतिलिपि डाली गई थी जो सीधे रिपोर्टर जीन में आरएनए स्टेम-लूप अनुक्रम सरणियों द्वारा flanked है। मानक क्लोनिंग तकनीकों का उपयोग सभी प्लास्मिड उत्पन्न करने के लिए किया गया था, प्रोप रिपोर्टर जीन के I-SceI-24xMS2 स्टेम-लूप वाले टुकड़े को एक वाणिज्यिक जीन संश्लेषण सेवा द्वारा संश्लेषित किया गया था।

प्रमोटर-समीपस्थ डीएसबी रिपोर्टर जीन (प्रोप) का निर्माण एक्सन I में परिष्कृत प्रतिलेखन प्रारंभ साइट के I-SceI काटने वाली साइट 45 बेस जोड़े (bp) डाउनस्ट्रीम को सम्मिलित करके किया गया था, इसके बाद 24x MS2 स्टेम-लूप कैसेट की शुरुआत तक 149 bp, जिसे दो वैकल्पिक गैर-समान स्टेम-लूप अनुक्रम16 के साथ डिज़ाइन किया गया था और अतिरेक को कम करने के लिए अतिरिक्त पांच गैर-दोहराए जाने वाले 20 बीपी स्पेसर अनुक्रम। MS2 स्टेम-लूप सरणी 1844 बीपी इंट्रोन की शुरुआत तक 72 बीपी और 1085 बीपी एक्सोन II के बाद होती है जब तक कि दरार और पॉलीएडेनिलेशन साइट तक नहीं। एक्सन II एक सियान फ्लोरोसेंट प्रोटीन (सीएफपी) को एन्कोड करता है जो रिपोर्टर जीन अभिव्यक्ति (चित्रा 1 ए) की एक स्वतंत्र स्क्रीनिंग की अनुमति देने के लिए मानव पेरोक्सिसोमल एसाइल सीओए ऑक्सीडेज से सी-टर्मिनल पेरोक्सिसोमल लक्ष्यीकरण अनुक्रम (पीटीएस) से जुड़ा हुआ है।

एक्सोन II DSB रिपोर्टर जीन (EX2) में 167 bp exon I होता है, जिसके बाद Intron और exon II CFP-PTS एन्कोडिंग करते हैं। आगे 169 बीपी की दूरी पर डाउनस्ट्रीम में, 24x MS2 स्टेम-लूप युक्त एक कैसेट डाला गया था, इसके बाद केंद्र में एक I-SceI साइट के साथ एक 84 बीपी लिंकर अनुक्रम, इसके बाद 24x PP7 स्टेम-लूप और 221 बीपी तक क्लीवेज और पॉलीएडेनिलेशन साइट 17 (चित्रा 1 बी) तक बीपी।

अंत में, एंटीसेंस ट्रांसक्रिप्शन लेबलिंग (EX2AS) के साथ एक्सोन II DSB रिपोर्टर जीन मानव ubiquitin B (UBB) जीन ट्रांसक्रिप्ट UBB-201 पर आधारित है और इसमें दो एक्सोन और एक इंट्रोन शामिल हैं। एक्सॉन मेरे पास 24x एमएस 2 स्टेम-लूप अनुक्रम के व्युत्क्रम सम्मिलन के साथ 1534 बीपी की कुल लंबाई है। इसलिए, सही MS2 स्टेम-लूप आरएनए अनुक्रम को सीएमवी प्रमोटर से रिपोर्टर जीन की भावना प्रतिलेखन के संबंध में एक एंटीसेंस दिशा में ट्रांसक्रिप्ट किया जाएगा। इंट्रॉन की लंबाई 490 बीपी है, इसके बाद I-SceI साइट के साथ एक्सोन II है, और दो इन-फ्रेम यूबिकिटिन सबयूनिट्स के लिए एक कोडिंग क्षेत्र डाला गया था। UBB जीन का डाउनस्ट्रीम एक अनुक्रम है जो एक अर्थ दिशा में रिपोर्टर जीन के प्रतिलेखन पर एक 24x PP7 स्टेम-लूप बनाता है (चित्रा 1 C)।

होमिंग एंडोन्यूक्लिएज I-SceI के एक inducible निर्माण के क्षणिक अभिकर्मक प्रत्येक रिपोर्टर gene18 के भीतर सम्मिलित मान्यता साइट पर एक DSB के नियंत्रित निर्माण के लिए अनुमति देता है। I-SceI एंडोन्यूक्लिएज को ग्लूकोकोर्टिकोइड रिसेप्टर के लिगैंड-बाइंडिंग डोमेन और एक दूर-लाल फ्लोरोसेंट प्रोटीन iRFP713 के साथ फ्रेम में फ्यूज किया जाता है। यह निर्माण ट्रायमसिनोलोन एसिटोनाइड (टीए) की अनुपस्थिति में साइटोप्लाज्मिक है, लेकिन कोशिकाओं के विकास माध्यम में टीए के अलावा नाभिक में तेजी से स्थानांतरित हो जाता है (चित्रा 1 डी)। I-SceI प्रणाली द्वारा DSBs का प्रेरण मजबूत है, जैसा कि 18,19,20 से पहले प्रदर्शित किया गया था। रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन को फ्लोरोसेंटली टैग किए गए आरएनए स्टेम-लूप सिस्टम एमएस 2 और पीपी 7 की कल्पना करके समानांतर में निगरानी की जा सकती है।

Protocol

1. तैयारी और लाइव सेल माइक्रोस्कोपी के लिए कोशिकाओं के अभिकर्मक लाइव-सेल माइक्रोस्कोपी प्रयोग से पहले के दिन 80-90% confluency प्राप्त करने के लिए DMEM के 5 mL के साथ रिपोर्टर सेल लाइन (EX2, EX2-AS, या PROM) का 25 सेमी 2 सेल संस्कृति फ्लास्क तैयार करें। 25 सेमी 2 सेल संस्कृति फ्लास्क से एक पिपेट के साथ माध्यम को एस्पिरेट करें और 1x पीबीएस के 2.5 मिलीलीटर के साथ कोशिकाओं को धोएं। ट्रिप्सिन-ईडीटीए (0.05%) के 1 एमएल जोड़ें और सेल टुकड़ी के लिए 2-3 मिनट के लिए 37 डिग्री सेल्सियस पर इनक्यूबेट करें। सेल टुकड़ी के बाद, HEPES बफर युक्त फिनोल लाल के बिना DMEM के 4 mL जोड़ें, 10% (v / v) लकड़ी का कोयला छीन भ्रूण गोजातीय सीरम के साथ पूरक, और धीरे से कोशिकाओं resuspend. प्लेट 10 मिमी ग्लास-बॉटम अच्छी तरह से (व्यास नंबर 1.5) और homogenize के साथ एक 35 मिमी गोल पकवान में सेल समाधान के 1 मिलीलीटर। 100 मिमी मानक सेल संस्कृति डिश के अंदर 35 मिमी गोल पकवान को स्टोर करें और इसे 5% CO2 के साथ एक humidified वातावरण में 37 °C पर इनक्यूबेट करें। ~ 6 ज सीडिंग के बाद, कांच के नीचे पकवान में कोशिकाओं को ट्रांसफेक्ट करें। प्रत्येक अभिकर्मक मिश्रण के लिए, निम्नलिखित तरीके से दो समाधान तैयार करें: एक 1.5 मिलीलीटर माइक्रोसेंट्रिफ्यूज ट्यूब में, समाधान ए तैयार करें जिसमें 150 μL कम-सीरम न्यूनतम आवश्यक माध्यम (एमईएम), प्लास्मिड डीएनए (जैसा कि तालिका 1 में वर्णित है), और अभिकर्मक सहायक अभिकर्मक के डीएनए के 2.5 μg / μL ( सामग्री की तालिका देखें)। समानांतर में, समाधान बी तैयार करें, जिसमें 150 μL कम-सीरम MEM और लिपिड-आधारित अभिकर्मक अभिकर्मक के 1.5 μg / μL डीएनए शामिल हैं (सामग्री की तालिका देखें)। 5 मिनट के लिए कमरे के तापमान (आरटी) पर दोनों समाधानों को इनक्यूबेट करें। फिर, धीरे से समाधान बी में समाधान ए जोड़ें और आरटी पर 20 मिनट इनक्यूबेट करें। कोशिकाओं को स्थानांतरित करने के लिए, प्रत्येक डिश में 300 μL समाधान A + B ड्रॉपवाइज जोड़ें और धीरे से वितरित करें। ग्लास बॉटम डिश को 100 मिमी मानक सेल कल्चर डिश के अंदर स्टोर करें और इसे 5% CO2 के साथ ह्यूमिडिफाइड वातावरण में 37 °C पर इनक्यूबेट करें। HEPES के साथ DMEM के 200 μL के साथ एक 1.5 mL माइक्रोसेंट्रिफ्यूज ट्यूब तैयार करें, बिना फिनोल लाल 10% (v / v) लकड़ी का कोयला-छीन भ्रूण गोजातीय सीरम के साथ पूरक और 7.5 x 10-7 एम की एकाग्रता में टीए जोड़ें। 2. प्रयोगात्मक सेटअप बड़े plexiglass माइक्रोस्कोप इनक्यूबेशन कक्ष और आम नियंत्रण इकाई पर 37 डिग्री सेल्सियस करने के लिए कक्ष इनक्यूबेशन शीर्ष चरण के तापमान सेट करें। 5% CO2 और 100% आर्द्रता के लिए मंच इनक्यूबेशन कक्ष के अंदर पर्यावरणीय परिस्थितियों को सेट करें।नोट: माइक्रोस्कोप पिंजरे और चरण इनक्यूबेटर तापमान को तापमान में उतार-चढ़ाव को कम करने के लिए पूर्ण प्रणाली के हीटिंग की अनुमति देने के लिए प्रयोग शुरू करने से पहले कम से कम 1 घंटे तक स्थापित किया जाना चाहिए। एक ही समय में अन्य सभी माइक्रोस्कोप नियंत्रण और ऑपरेटिंग इकाइयों को शुरू करें। विकास माध्यम के लिए doxycycline (0.5 μg / mL) जोड़कर रिपोर्टर जीन के प्रतिलेखन को प्रेरित करें और माइक्रोस्कोपी अवलोकन शुरू करने से पहले 200 μL माइक्रोपिपेट ~ 1 ज के साथ ऊपर और नीचे पाइपिंग करके धीरे से मिश्रण करें।नोट: transfected कोशिकाओं के साथ ग्लास-बॉटम डिश रखें एक 100 मिमी मानक सेल संस्कृति पकवान के अंदर आसान हैंडलिंग और सेल संस्कृति से एक स्टायरोफोम कंटेनर में माइक्रोस्कोप रूम में परिवहन के लिए तापमान को यथासंभव स्थिर बनाए रखने के लिए। अवलोकन शुरू करने से कम से कम 30 मिनट पहले कोशिकाओं को माइक्रोस्कोप में ले जाएं और आगमन पर, 100 मिमी डिश को कोशिकाओं के साथ पहले से गर्म बड़े माइक्रोस्कोप इनक्यूबेशन कक्ष के तुरंत अंदर रखें। चरण 1.7 से पूर्व पतला टीए के साथ microcentrifuge ट्यूब जगह. बड़े माइक्रोस्कोप पर्यावरण कक्ष के अंदर 37 डिग्री सेल्सियस तक गर्म करने के लिए। ढक्कन (चित्रा 2 ए) में ड्रिल किए गए 3 मिमी व्यास के छेद के साथ पहले तैयार किए गए ग्लास बॉटम डिश के ढक्कन को बदलें।नोट: टीए को माइक्रोस्कोप चरण पर घुड़सवार डिश में हेरफेर किए बिना ढक्कन में छोटे छेद के माध्यम से कोशिकाओं में बाद में जोड़ा जाएगा। माइक्रोस्कोप नियंत्रण कक्ष में 100x (apochromatic उद्देश्य, 1.4 संख्यात्मक एपर्चर) तेल विसर्जन उद्देश्य का चयन करें। उद्देश्य के लिए विसर्जन तेल की एक बूंद लागू होते हैं। कक्ष के माइक्रोस्कोप चरण के अंदर कोशिकाओं के साथ ग्लास-बॉटम डिश सेट इनक्यूबेशन और इसे जगह में लॉक करें। मंच इनक्यूबेटर और माइक्रोस्कोप आवास के सभी दरवाजों के ढक्कन को बंद करें। माइक्रोस्कोप ऑपरेटिंग और नियंत्रण सॉफ़्टवेयर प्रारंभ करें, फ़ोकस कंट्रोल विंडो (चित्रा 2B) खोलें, क्षेत्र फलक पर क्लिक करें, और उत्सर्जन चयन फलक में, आंखों द्वारा प्रत्यक्ष नमूना अवलोकन के लिए ओकुलर बीम पथ सेट करने के लिए 100% नेत्र बॉक्स पर क्लिक करें। फ़िल्टर सेट मेनू में, Eye फ़िल्टर सेट पर जाएँ और Brightfield क्लिक करें, और Open Brightfield बटन दबाएँ. जब तक तेल कांच को छूता है तब तक माइक्रोस्कोप उद्देश्य को कांच के नीचे पकवान की ओर ले जाएं। फिर ओकुलर के माध्यम से देखें और मैन्युअल रूप से कोशिकाओं के विमान पर ध्यान केंद्रित करें। Open Brightfield बटन को बंद करें। पर्यावरणीय परिस्थितियों के अनुकूल होने के लिए प्रयोगात्मक टिप्पणियों को शुरू करने से पहले कोशिकाओं को 30 मिनट के लिए छोड़ दें और तापमान ग्रेडिएंट द्वारा इमेजिंग के दौरान फोकल बहाव को रोकें। एक 200 μL micropipette और 200 μL फिल्टर युक्तियाँ कमरे के तापमान पर एक तरफ का उपयोग करने के लिए तैयार रखें। 3. छवि अधिग्रहण माइक्रोस्कोप नियंत्रण सॉफ़्टवेयर की फोकस कंट्रोल विंडो में, लेजर तीव्रता को 5% पर सेट करें और एक्सपोज़र समय (चित्रा 2 बी) के लिए 50 एमएस का मान दर्ज करें। तीन आयामी (3D) समय-अंतराल (चित्रा 2C) की स्वचालित छवि अधिग्रहण करने के लिए सेटिंग्स को समायोजित करने के लिए कैप्चर विंडो खोलें। 3 डी कैप्चर अधिग्रहण प्रकार का चयन करें और 0.4 μm द्वारा अलग किए गए 12 से 16 ऑप्टिकल स्लाइस सेट करें, वर्तमान के आसपास रेंज के चेकबॉक्स पर टिक करें और कैप्चर करने के बाद वर्तमान स्थिति में लौटें। टाइमलैप्स कैप्चर फलक में, समय बिंदुओं के # के लिए 120 और अंतराल के लिए 30 s का मान दर्ज करें. GFP के लिए π = 488 nm के साथ transfected fluorescent protein labels के अनुसार confocal filter set का चयन करें , π = 561 nm for TagRFPt, और iRFP713 के लिए π = 640 nm और प्रत्येक चैनल के लिए एक्सपोज़र समय 50 ms पर सेट करें। फ़ोकस विंडो (चित्र2C) में चयनित 5% के मान का उपयोग करने के लिए लेजर पावर के लिए सेटिंग वर्तमान का उपयोग करें। फ़ोकस नियंत्रण विंडो में, कैमरा फलक पर जाएँ, स्केल छवि प्रदर्शन नियंत्रण का चयन करें और प्रदर्शित की जाने वाली छवि तीव्रता की एक निश्चित श्रेणी सेट करने के लिए मैन्युअल बटन चुनें. निम्न के लिए मान दर्ज करें: 500 और उच्च: 5000 (चित्र 2B देखें).नोट:: यह सेटिंग प्रतिदीप्ति तीव्रता (चित्रा 2D) की समान श्रेणी के भीतर कक्षों का चयन करने के लिए लाइव दृश्य में प्रदर्शित कैमरा कैप्चर की डायनेमिक श्रेणी को सीमित करती है. एक DSB के प्रेरण पर प्रतिलेखन साइटों के 3D टाइम-लैप्स इमेजिंग के लिए कोशिकाओं का चयन करें। कक्षों को स्क्रीन करें और चर्चा में वर्णित शर्तों के अनुसार दृश्य के तीन फ़ील्ड का चयन करें. Z-स्टैक के मध्य तल में प्रतिलेखन साइट के साथ दृश्य के क्षेत्र के केंद्र में पहले स्थित प्रत्येक चयनित कक्ष पर ध्यान केंद्रित करें।नोट:: XYZ में कक्ष और प्रतिलेखन साइट को केंद्रित करना कक्ष के कुछ आंदोलन के लिए समायोजित करता है. फ़ोकस नियंत्रण विंडो के XY फलक में प्रत्येक XYZ स्थिति सेट बिंदु क्लिक करके चिह्नित करें.नोट: रिपोर्टर जीन के निरंतर प्रतिलेखन और XYZ आयामों में कोशिकाओं की स्थिति की सापेक्ष स्थितिगत स्थिरता की पुष्टि करने के लिए निम्नलिखित 5 मिनट में 2-3 बार चयनित पदों पर फिर से जाएँ। चरण 1.7 से पूर्व-पतला टीए के 200 μL जोड़ें। कक्षों के लिए जैसा कि चित्र 2F में दिखाया गया है।नोट: चिह्नित XY पदों से किसी भी बदलाव को रोकने के लिए टीए जोड़ते समय ग्लास-बॉटम डिश या ढक्कन को छूने के लिए अत्यधिक सावधानी बरतें। डीएसबी प्रेरण के बाद, पुष्टि करें कि कोशिकाएं दृश्य के क्षेत्र में केंद्रित हैं, और प्रतिलेखन साइट केंद्र जेड-प्लेन में है। पुन: ध्यान केंद्रित करने और स्थिति अद्यतन 1-2 मिनट से अधिक नहीं लेना चाहिए। कैप्चर विंडो पर प्रारंभ करें पर क्लिक करके 3D समय-श्रृंखला इमेजिंग प्रारंभ करें। माइक्रोस्कोप नियंत्रण कंप्यूटर हार्ड ड्राइव पर माइक्रोस्कोप नियंत्रण सॉफ़्टवेयर डेटा स्वरूप में इमेजिंग डेटा सहेजें। 4. डेटा विश्लेषण माइक्रोस्कोप नियंत्रण सॉफ़्टवेयर में इमेजिंग डेटा खोलें और 16-बिट TIFF-प्रारूप फ़ाइलों के रूप में निर्यात करें। StaQtool21 सॉफ़्टवेयर के साथ निर्यात की गई फ़ाइलों को खोलें। सिंगल स्पॉट 3 डी मोड का चयन करें और जाओ दबाकर छवि फ़ाइलों को लोड करें।नोट:: चयनित समय श्रृंखला अधिकतम प्रोजेक्शन टाइमलैप्स व्यूअर में खुलता है, जो पहली बार बिंदु (चित्रा 3A) के z-स्टैक की अधिकतम तीव्रता प्रोजेक्शन दिखा रहा है. बाईं ओर ऊर्ध्वाधर MAX स्लाइडर के साथ छवि तीव्रता प्रदर्शन समायोजित करें। क्षैतिज टाइमपॉइंट स्लाइडर के साथ विश्लेषण करने के लिए टाइमपॉइंट का चयन करें. मैन्युअल रूप से चिह्नित करने के लिए लेबल किए गए प्रतिलेखन साइट की स्थिति में कर्सर को होवर करें या ऑटो डिटेक्ट फ़ंक्शन का उपयोग करें और कई ऑब्जेक्ट्स का पता चलने पर संबंधित प्रतिलेखन साइट पर दबाएं। समय के साथ प्रतिलेखन साइट की XYZ स्थिति निर्धारित करने के लिए स्वत: ट्रैक फ़ंक्शन का उपयोग करें।नोट:: यदि किसी दिए गए स्थान को ठीक से ट्रैक नहीं किया गया था, तो StaQtool सॉफ़्टवेयर मैन्युअल के अनुसार मैन्युअल रूप से प्रतिलेखन साइट का चयन करें। प्रत्येक टाइमपॉइंट के लिए गॉस फिटिंग करने और कुल प्रतिदीप्ति तीव्रता (टीएफआई) को मापने के लिए ऑटो बटन दबाएँ।नोट:: यदि ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि बंद हो जाती है, तो ट्रैकिंग उपकरण अंतिम स्थिति पर रहता है जहाँ एक विवर्तन-सीमित ऑब्जेक्ट (लेबल प्रतिलेखन साइट) का पता लगाया गया था। प्रतिलेखन साइट लेबल अदृश्य होने के बाद कक्ष XY दिशा में चलता है, तो खोज वर्ग की मैन्युअल repositioning की आवश्यकता है। प्रत्येक टाइमपॉइंट के लिए TFI मान फिटिंग को समाप्त करने के बाद, वर्तमान समय-श्रृंखला छवि फ़ाइल को बंद करने और अगली फ़ाइल पर जारी रखने के लिए एंड टाइमलैप्स बटन दबाएँ।नोट:: TFI मान स्वचालित रूप से निर्यात और किसी Excel फ़ाइल में सहेजे जाते हैं। 5. माइक्रोस्कोपी अंशांकन माप और विश्लेषण 35 मिमी ग्लास-बॉटम व्यंजनों में बीज कोशिकाएं और फ्लोरोसेंटली टैग किए गए एमएस 2 और पीपी 7 कोट प्रोटीन के साथ ट्रांसफेक्ट करें जैसा कि धारा 1 में वर्णित है।नोट:: अंशांकन माप के लिए, परिचय में वर्णित एक ही रिपोर्टर जीन सेल लाइनों का उपयोग करें। माइक्रोस्कोपी छवि अधिग्रहण शुरू करने से पहले कोशिकाओं के विकास माध्यम में 0.5 μg / mL doxycycline जोड़ें 1 घंटे। कक्ष के माइक्रोस्कोप चरण के अंदर कांच के नीचे डिश माउंट इनक्यूबेशन और पहले की तरह छवि अधिग्रहण तैयार करें (अनुभाग 2 देखें)।नोट:: कांच के नीचे पकवान के मूल ढक्कन अंशांकन प्रयोगों के लिए प्रतिस्थापित नहीं किया गया है। बिंदु 3.1 में वर्णित के रूप में एक ही लेजर तीव्रता और जोखिम सेटिंग्स का उपयोग करें। 2D समय-श्रृंखला के लिए कैप्चर सेटिंग्स सेट करें ( कैप्चर प्रकार फलक में 3D विकल्प का चयन रद्द करें) और टाइमलैप्स कैप्चर पैनल (चित्र2C) में 500 ms के अंतराल पर 120 टाइमपॉइंट्स सेट करें.नोट:: इस छवि अधिग्रहण सेटिंग बहुत कम अंतराल पर एक ही ऑप्टिकल विमान के भीतर समय श्रृंखला में परिणाम होगा। कई सौ एकल टेपों TFI माप की गिनती करने के लिए डेटा सेट उत्पन्न करने के लिए एकाधिक पदों से अंशांकन समय श्रृंखला के दर्जनों प्राप्त करें। अंशांकन समय श्रृंखला के विश्लेषण के लिए, फ़ाइलों को 16-बिट TIFF-स्वरूप फ़ाइलों के लिए तदनुसार 4.1 बिंदु पर कनवर्ट करें। StaQtool21 सॉफ़्टवेयर (चित्र3) के साथ निर्यात की गई फ़ाइलों को खोलें। लॉग फ़ाइल का चयन करें बटन दबाएँ, बिंदु 4.2 में वर्णित के रूप में अधिग्रहित संबंधित 2D समय श्रृंखला की Logfile चुनें। एकाधिक स्पॉट 2D चेक बॉक्स का चयन करें और विश्लेषण सॉफ़्टवेयर में समय श्रृंखला लोड करने के लिए GO बटन दबाएँ। टाइमलैप्स व्यूअर विंडो (चित्रा 3A) में, PSF FWHM में, इनपुट फ़ील्ड माइक्रोस्कोप सिस्टम और उद्देश्य के लिए परिकलित मान को वर्णित 21 के रूप में सम्मिलित करता है। विश्लेषण प्रक्रिया प्रारंभ करने के लिए, प्रदर्शित वर्तमान समय बिंदु के लिए सभी विवर्तन-सीमित ऑब्जेक्ट्स का पता लगाने के लिए स्वत: पता लगाएँ बटन दबाएँ। उसके बाद, प्रत्येक ऑब्जेक्ट (चित्रा 3A) के लिए TFI मान निर्धारित करने के लिए गाऊसी फिटिंग करने के लिए AutoFit पर क्लिक करें। वैकल्पिक रूप से, कर्सर को किसी विवर्तन-सीमित ऑब्जेक्ट पर इंगित करें और इसे चुनने के लिए क्लिक करें (एक सफेद वर्ग के भीतर हरा सर्कल दिखाई देता है), और मैन्युअल चयन और गॉस फिटिंग प्रक्रिया के लिए गॉसियन फ़िट बटन दबाएं।नोट:: अंतिम मोड की सिफारिश की जाती है कि उन वस्तुओं को बाहर किया जाए, जिन्हें गिना नहीं जाता है, जैसे कि एक ही नाभिक में मौजूद कई नवजात टेपों के साथ उज्ज्वल प्रतिलेखन साइटें। पिछले चरण को समाप्त करने के लिए अंतिम टाइमलैप्स बटन दबाएँ।नोट:: परिणाम स्वचालित रूप से छवि फ़ाइल के रूप में एक ही फ़ोल्डर में एक Microsoft Excel फ़ाइल स्वरूप में सहेजे जाते हैं। TFI और W Distributions मॉड्यूल संबंधित बटन (चित्रा 3B) दबाकर एकाधिक धब्बों के लिए प्रारंभ करें। फ़ाइल जोड़ें बटन के माध्यम से Excel फ़ाइलें लोड करें और जाओ बटन दबाकर TFI विश्लेषण प्रारंभ करें।नोट:: आउटपुट एक से अधिक मापा एकल टेपTFIs से निर्धारित माध्य TFI मान है। पहले बिंदु 5.10 में उपयोग किए गए PSF FWHM सम्मिलित करके W विश्लेषण प्रारंभ करें। और बिन के लिए डिफ़ॉल्ट मान का उपयोग कर जाओ बटन दबाएँ।नोट:: W पैरामीटर का उपयोग माइक्रोस्कोप सिस्टम के लिए सही PSF FWHM मान का पालन करने के लिए एकल प्रतिलेख TFI माप के लिए गुणवत्ता नियंत्रण है। 6. डेटा और अंशांकन विलय बिंदु 4.8 में सहेजे गए Excel पत्रक से प्राप्त समय श्रृंखला TFI मान दर्ज करें. एक नए Excel पत्रक में और बिंदु 5.15 में प्राप्त एकल टेपों के लिए माध्य TFI द्वारा प्रत्येक समय बिंदु मान विभाजित करें।नोट:: इस प्रक्रिया को मानकीकृत करने के लिए, कस्टम-तैयार Excel टेम्पलेट प्रपत्रों का उपयोग किया गया था.

Representative Results

चित्रा 1A-C में वर्णित रिपोर्टर जीन को आश्रय देने वाली सेल लाइनें जीवित कोशिकाओं में एकल DSB पर प्रतिलेखन गतिशीलता के अध्ययन की अनुमति देती हैं। प्रत्येक ग्राफिकल रिपोर्टर जीन प्रतिनिधित्व के नीचे चित्र1A-C में संख्याएं किलोबेस जोड़े (kbp) में लंबाई को इंगित करती हैं। सीएमवी साइटोमेगालोवायरस प्रमोटर को इंगित करता है, टेटो टेट-ऑपरेटर अनुक्रम है, पीए जीन के अंत में 3 ‘दरार और पॉली-एडेनिलेशन साइट पर प्रकाश डालता है। CFP-PTS एन्कोडेड सियान फ्लोरोसेंट प्रोटीन है जो एक पेरोक्सिसोमल लक्ष्यीकरण संकेत से जुड़ा हुआ है, और 2UBB एन्कोडेड मानव यूबिकिटिन बी अग्रानुक्रम इकाई है। ऊपर वर्णित प्रोटोकॉल और विश्लेषण प्रक्रियाओं का पालन करके, समय के साथ फ्लोरोसेंटली लेबल रिपोर्टर जीन टेपों की संख्या को प्रदर्शित करने वाले ग्राफ़ प्राप्त करना संभव है, जिसमें घंटों तक की अवधि में सेकंड का अस्थायी रिज़ॉल्यूशन होता है (चित्रा 4 ए-डी)। चित्रा 4A में ग्राफ एक PROM रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन साइट के TFI मूल्यों के समय पाठ्यक्रम को नवजात टेपों पर MS2-GFP अणुओं के संचय द्वारा लेबल प्रदर्शित करता है। यह विशेष ग्राफ टीए के अलावा के बिना एक नियंत्रण प्रयोग का प्रतिनिधित्व करता है; इसलिए, कोई DSB प्रेरित नहीं है। प्रतिलेखन 60 मिनट की पूरी अवलोकन अवधि में एक समय में फट जैसी चोटियों और 2-8 टेपों के साथ जारी रहता है। इसी तरह के परिणाम EX2 और EX2-AS रिपोर्टर जीन (डेटा यहां नहीं दिखाए गए हैं) 4 के लिए प्राप्त किए गए थे। रिपोर्टर जीन में एक एकल डीएसबी का प्रेरण (I-SceI-GR-iRFP का उपयोग करके) चल रहे रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन पर DSB के प्रभाव का अध्ययन करने और DSB साइट से उभरने वाली प्रतिलेखन घटनाओं की निगरानी, अर्थात् ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन (चित्रा 4B-D) का अध्ययन करने की अनुमति देता है। डीएनए ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन की गतिशीलता जीन के भीतर डीएसबी के स्थान पर निर्भर करती हैएक प्रमोटर-समीपस्थ I-SceI मान्यता साइट के साथ रिपोर्टर जीन में I-SceI-GR-iRFP द्वारा एक एकल DSB का प्रेरण टीए के अतिरिक्त के बाद लगभग 11 मिनट के बाद रिपोर्टर जीन के ट्रांसक्रिप्शनल मौन की ओर जाता है, और प्रतिलेखन 60 मिनट की अवलोकन अवधि (चित्रा 4 बी) के भीतर बहाल नहीं किया जाता है। EX2 रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन का अवलोकन करते समय, विहित प्रमोटर-संचालित प्रतिलेखन का पूर्ण दमन टीए के अतिरिक्त 30 मिनट बाद लगभग 30 मिनट के बाद एमएस 2-जीएफपी और पीपी 7-आरएफपी संकेतों दोनों के एक साथ पूर्ण नुकसान से पता लगाया गया था। हालांकि, 10 मिनट के भीतर, प्रतिलेखन पुनरारंभ हो जाता है, जैसा कि पीपी 7-आरएफपी प्रतिदीप्ति की चोटियों को फिर से प्रकट करने से पता चला है। PP7-RFP सिग्नल (और MS2-GFP प्रतिदीप्ति नहीं) की पूरी वसूली ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन दीक्षा (चित्रा 4C) दिखाती है। ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन लंबी अवधि में स्थिर नहीं है; यह फट की तरह और कम चोटी की तीव्रता दिखाई देता है, यह दर्शाता है कि केवल कुछ ब्रेक-प्रेरित टेपों को डीएसबी साइट से शुरू किया गया था। EX2AS रिपोर्टर जीन, जिसमें एक 24x PP7 स्टेम-लूप सरणी शामिल है एक्सन II में I-SceI साइट के डाउनस्ट्रीम में भावना प्रतिलेखन का पता लगाने के लिए, टीए के अलावा के बाद लगभग 25 मिनट के भीतर EX2AS रिपोर्टर जीन के भीतर समाप्त होने वाले विहित प्रमोटर-संचालित प्रतिलेखन को दिखाता है। फिर इसे एंटीसेंस ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन द्वारा प्रतिस्थापित किया जाता है, जैसा कि एंटीसेंस एमएस 2 स्टेम-लूप अनुक्रमों (चित्रा 4 डी) से उत्पन्न आरएनए के लिए एमएस 2-जीएफपी प्रोटीन बाइंडिंग के संचय से पता चला है। एंटीसेंस ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि डीएसबी के प्रेरण के कारण सेंस ट्रांसक्रिप्शनल के व्यवधान से पहले अनुपस्थित थी और इस उदाहरण में दिखाती है कि लगभग 15 मिनट के भीतर ब्रेक साइट से कई टेप शुरू किए गए थे। यहां प्राप्त प्रतिनिधि डेटा से पता चलता है कि डीएसबी का जीन के भीतर उनके स्थान के आधार पर प्रतिलेखन पर अलग-अलग प्रभाव पड़ता है, जैसा कि हाल ही में रिपोर्ट किया गया था। डेटा I-SceI-GR-iRFP द्वारा DSB प्रेरण के समय में सेल परिवर्तनशीलता के लिए एक सेल को भी प्रकट करता है, जो टीए के अतिरिक्त के बाद 12 से 30 मिनट तक होता है। इसके अलावा, अलग-अलग टेपों का पता लगाने से सेल की खोज को सेल की खोज की अनुमति मिलती है और ब्रेक-प्रेरित ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि की तीव्रता की ओर साइट के अंतर को तोड़ता है। ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन केवल जीन के भीतर डीएसबी में पाया जाता है। यह प्रमोटर-समीपस्थ डीएसबी में अनुपस्थित है, जहां शेष अवलोकन अवधि के लिए डीएसबी पर विहित प्रतिलेखन बंद हो जाता है। चित्रा 1: रिपोर्टर जीन और डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक को प्रेरित करने के लिए सिस्टम। (ए) से (सी) में योजनाबद्ध प्रतिनिधित्व डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक के प्रेरण पर प्रतिलेखन का अध्ययन करने के लिए उपयोग किए जाने वाले तीन रिपोर्टर जीनों की संरचना को दर्शाता है। प्रमोटर-समीपस्थ I-SceI साइट के साथ रिपोर्टर जीन पहले एक्सोन (PROM) में एक 24x MS2 स्टेम-लूप (MS2-SL) अनुक्रम सरणी द्वारा डाउनस्ट्रीम flanked (ए) में दर्शाया गया है। दूसरे एक्सोन (EX2) में I-SceI साइट के साथ रिपोर्टर जीन एक 24x MS2 स्टेम-लूप अनुक्रम के साथ अपस्ट्रीम में flanked और एक 24x PP7 स्टेम-लूप (PP7-SL) सरणी द्वारा डाउनस्ट्रीम में दिखाया गया है (बी)। एंटीसेंस ट्रांसक्रिप्शन (EX2-AS) का पता लगाने के लिए I-SceI साइट के 24x MS2 स्टेम-लूप अनुक्रम के 24x MS2 स्टेम-लूप अनुक्रम के एक विरोधी-समानांतर सम्मिलन के साथ एक्सन II में स्थित I-SceI साइट के साथ रिपोर्टर जीन (C) में दिखाया गया है। I-SceI-GR-iRFP संलयन प्रोटीन निर्माण के कार्य को (D) में एक ग्राफिकल डिस्प्ले और नीचे लाइव कोशिकाओं की संबंधित छवियों द्वारा दर्शाया गया है। रिपोर्टर जीन सेल लाइनों में निर्माण (लाल रंग) की क्षणिक अभिव्यक्ति पर, प्रोटीन विशेष रूप से साइटोप्लाज्मिक होता है, जो आई-एससीईआई एंडोन्यूक्लिएज द्वारा लक्ष्य साइट की समय से पहले दरार को रोकता है। टीए के अलावा, संलयन प्रोटीन सेल नाभिक (एक धराशायी रेखा द्वारा इंगित) में माइग्रेट करना शुरू कर देता है और 5-15 मिनट के बीच जमा होना शुरू हो जाता है। स्केलबार = 10 μm कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्रा 2: प्रतिलेखन साइटों के 3 डी टाइम-लैप्स इमेजिंग के लिए कोशिकाओं का चयन करना। (ए) में फोटो लाइव सेल इमेजिंग के लिए उपयोग किए जाने वाले 35 मिमी ग्लास-बॉटम डिश को दिखाती है, जिसमें एक कस्टम संशोधित ढक्कन होता है, जिसमें 3 मिमी व्यास का एक छेद सीधे विकास माध्यम में पतला टीए को जोड़ने के लिए ड्रिल किया गया था। छेद स्थान को एक लाल सर्कल के साथ चिह्नित किया गया है। (बी) में पैनल माइक्रोस्कोप नियंत्रण सॉफ़्टवेयर की “फोकस” विंडो का एक स्क्रीनशॉट दिखाता है ताकि लाइव व्यू एक्सपोज़र टाइम, फ़िल्टर सेटिंग, लेजर तीव्रता, और बाद के समय-अंतराल इमेजिंग के लिए कोशिकाओं के लिए स्क्रीन पर छवि प्रदर्शन को स्केल किया जा सके (सी), इसी “कैप्चर” विंडो का स्क्रीनशॉट लाइव सेल के लिए सभी सेटिंग्स को समायोजित करने के लिए 3 डी टाइम लैप्स अधिग्रहण। फ़िल्टर, कैप्चर प्रकार, टाइम-लैप्स कैप्चर, और 3D कैप्चर फलकों के लिए विशिष्ट सेटिंग्स अनुभाग 3 में वर्णित हैं. यहां दिखाए गए दृश्य में, सेटिंग्स को प्रोम रिपोर्टर जीन लाइन के 3 डी टाइम-लैप्स को प्राप्त करने के लिए समायोजित किया जाता है, जो एमएस 2-जीएफपी और आई-एससीईआई-जीआर-आईआरएफपी के साथ संक्रमित होता है, जो रिपोर्टर जीन के प्रमोटर-समीपस्थ क्षेत्र में डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक के प्रेरण पर इमेजिंग ट्रांसक्रिप्शन के लिए ट्रांसफेक्ट होता है। (डी) में छवि को जीएफपी और आईआरएफपी चैनलों के लिए विलय कर दिया गया है और 293-प्रोम रिपोर्टर जीन सेल लाइन की कई कोशिकाओं के साथ माइक्रोस्कोप सिस्टम के माध्यम से देखे गए दृश्य का एक क्षेत्र दिखाता है। कोशिकाओं को एक परमाणु स्थानीयकरण अनुक्रम, दो हरे फ्लोरोसेंट प्रोटीन (GFP-MS2CP), और I-SceI-GR-iRFP निर्माण के लिए फ्यूज्ड टैंडेम डिमर MS2 कोट प्रोटीन निर्माण के साथ सह-संक्रमित किया गया था। कई कोशिकाएं GFP-MS2CP निर्माण की अभिव्यक्ति दिखाती हैं, जिससे नाभिक और I-SceI-GR-iRFP निर्माण को हाइलाइट किया जाता है जो साइटोप्लाज्म को उजागर करता है। धराशायी वर्ग (ई) में दिखाए गए आवर्धित क्षेत्र को इंगित करता है। 3 डी टाइम-लैप्स इमेजिंग के लिए, कोशिकाओं को चर्चा में प्रदान की गई आवश्यकताओं के अनुसार चुना जाता है, जैसे कि (डी) में आवर्धित क्षेत्र में बड़े नाभिक के साथ सेल। यह सेल फ्लोरोसेंट निर्माणों दोनों के साथ transfected है और एक उज्ज्वल लेबल प्रतिलेखन साइट (एरोहेड) डी नोवो ट्रांसक्रिप्टेड रिपोर्टर जीन पूर्व mRNA (बाईं छवि) पर GFP-MS2CP जमा करके दिखाता है। कोशिकाओं के विकास माध्यम में टीए नहीं होता है; इसलिए, I-SceI-GR-iRFP निर्माण विशेष रूप से साइटोप्लाज्मिक (सही छवि) है। (एफ) में, ग्लास बॉटम डिश को 3 डी टाइम-लैप्स इमेजिंग प्रयोगों के लिए माइक्रोस्कोप चरण इनक्यूबेशन चैंबर में रखा जाता है और टीए लोडिंग होल वाले कस्टम ढक्कन से सुसज्जित किया जाता है। 200 μL माइक्रोपिपेट टिप को कोशिकाओं के विकास माध्यम में पतला टीए लागू करने के लिए छेद में सावधानीपूर्वक डाला जाता है। स्केलबार = 10 μm कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्रा 3: छवि अधिग्रहण और विश्लेषण सॉफ्टवेयर. (ए) में पैनल STaQTool का स्क्रीनशॉट दिखाता है: स्पॉट ट्रैकिंग और परिमाणीकरण उपकरण। छवि केंद्र में अधिकतम तीव्रता प्रक्षेपण प्रदर्शन में हरे घेरे / सफेद वर्ग के साथ चिह्नित लेबल प्रतिलेखन साइट के साथ PROM रिपोर्टर जीन सेल लाइन की एक उदाहरण समय-श्रृंखला प्रदर्शित करती है। दाईं ओर की खिड़कियां चयनित प्रतिलेखन साइट स्पॉट का एक आवर्धित दृश्य प्रदर्शित करती हैं, वर्तमान समय बिंदु के लिए 2 डी गाऊसी फिट ग्रिड के साथ-साथ जेड-स्टैक के भीतर प्रतिलेखन साइट स्पॉट जेड स्थिति के भूखंडों के साथ संबंधित 3 डी छायांकित तीव्रता सतह प्लॉट, गाऊसी फिट चौड़ाई (डब्ल्यू) और समय के साथ टीएफआई माप। (बी) में माइक्रोस्कोपिक छवि एक प्रोम रिपोर्टर जीन सेल लाइन के नाभिक के एक ज़ूम किए गए एकल ऑप्टिकल विमान को MS2-GFP के साथ transfected दिखाती है। छवि 120 टाइमपॉइंट्स के साथ 2D अंशांकन समय श्रृंखला के एक-बार बिंदु का प्रतिनिधित्व करती है। नाभिक न्यूक्लियोप्लाज्म (सफेद वर्गों द्वारा चिह्नित) में विवर्तन-सीमित वस्तुओं के रूप में दिखाई देने वाले कई फ्लोरोसेंटली लेबल टेपों को दिखाता है। दाईं ओर पैनल 2 डी समय-चूक अधिग्रहण में कई स्थानों का विश्लेषण करने के लिए STaQTool में TFI और W Distributions उपकरण का स्क्रीनशॉट दिखाता है। इस उदाहरण विश्लेषण में, उपकरण ने 408 विवर्तन-सीमित धब्बों का पता लगाया जो एमएस 2-जीएफपी के साथ लेबल किए गए रिपोर्टर जीन टेपों का प्रतिनिधित्व करते हैं जो न्यूक्लियोप्लाज्म में फैलते हैं। सही पर रेखांकन TFI और गाऊसी फिट चौड़ाई वितरण हिस्टोग्राम वस्तुओं और गाऊसी फिट घटता के प्रदर्शित करते हैं। TFI और W का अर्थ गाऊसी फिट वक्र के केंद्र शिखर की स्थिति से व्युत्पन्न मान और परिकलित विश्वास अंतराल संबंधित फलक में प्रदर्शित होते हैं। स्केलबार = 10 μm कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्रा 4: डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक की साइटों पर प्रतिलेखन का पता लगाने के प्रतिनिधि परिणाम। (ए) से (डी) में रेखांकन समय के साथ एक प्रतिलेखन साइट के कैलिब्रेटेड टीएफआई वक्र का प्रतिनिधित्व करते हैं। टीएफआई मानों को संबंधित रिपोर्टर जीन निर्माण के लिए अंशांकन प्रयोगों में मापा गया एकल टेपों के माध्य टीएफआई का उपयोग करके टेपों में परिवर्तित किया जाता है और संबंधित प्रयोग में उपयोग किए जाने वाले आरएनए स्टेम-लूप बाइंडिंग प्रोटीन एमएस 2 या पीपी 7 को फ्लोरोसेंटली टैग किया जाता है। (ए) में, टीए के अलावा के बिना प्रोम रिपोर्टर जीन का उपयोग करके एक नियंत्रण प्रयोग से एक ग्राफ दिखाया गया है। MS2-GFP के साथ लेबल किए गए टेप पूरे अवलोकन अवधि में निरंतर ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि का संकेत देते हैं। (बी) में ग्राफ टीए के अलावा और एक डीएसबी के प्रेरण पर प्रोम रिपोर्टर जीन का प्रतिनिधित्व करता है जो शेष अवलोकन समय के लिए प्रतिलेखन के दमन की ओर जाता है। (सी) में EX2 रिपोर्टर जीन ग्राफ टीए के अलावा पर विहित प्रमोटर-संचालित प्रतिलेखन का एक प्रतिलेखन दमन दिखाता है। बाद में एक ही समय-अंतराल में, केवल पीपी 7-आरएफपी लेबल ट्रांसक्रिप्शनल गतिविधि उभरती है। (डी) में ग्राफ में, अर्थ दिशा में विहित प्रमोटर से EX2-AS रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन को इसी तरह (C) में EX2 रिपोर्टर जीन के लिए TA के अतिरिक्त दबा दिया जाता है। हालांकि, MS2-RFP लेबल किए गए टेपों की उपस्थिति व्युत्क्रम सम्मिलित MS2 स्टेम-लूप अनुक्रम से उत्पन्न होती है, जो टीए अतिरिक्त से पहले सेंस ट्रांसक्रिप्शन गतिविधि के दौरान अनुपस्थित एंटीसेंस ट्रांसक्रिप्शन को इंगित करती है। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहाँ क्लिक करें. रिपोर्टर कक्ष पंक्ति EX2 और EX2-AS प्रोम Plasmids transfect करने के लिए 1.5 μg pi-SceI-GR-iRFP 1.5 μg pi-SceI-GR-iRFP 0.65 μg pUBC-mCherry-nls-tdPP7-mCherry 0.5 μg pUBC-GFP-nls-tdMS2-GFP 0.35 μg pUBC-GFP-nls-tdMS2-GFP तालिका 1: रिपोर्टर जीन सेल लाइनों का अभिकर्मक। तालिका अभिकर्मक योजनाओं और विभिन्न plasmids की मात्रा का वर्णन करता है जो विभिन्न रिपोर्टर जीन सेल लाइनों को क्षणिक रूप से ट्रांसफ़ेक्ट करने के लिए उपयोग किए जाते हैं।

Discussion

प्रतिकृति, प्रतिलेखन, डीएनए क्षति और डीएनए मरम्मत जैसी आवश्यक जैविक प्रक्रियाओं के बीच संघर्ष को जीनोम अस्थिरता के एक महत्वपूर्ण स्रोत के रूप में पहचाना गया है। इन अध्ययनों ने डीएनए क्षति की साइटों पर प्रतिलेखन की खोज का भी नेतृत्व किया है और डीएनए क्षति मरम्मत प्रक्रियाओं को विनियमित करने में ब्रेक-प्रेरित टेपों के लिए एक कार्यात्मक भूमिका को जिम्मेदार ठहराया है। नए उपकरण और यहां वर्णित प्रोटोकॉल डीएसबी में आरएनए पोल II प्रतिलेखन गतिशीलता की आगे की जांच की अनुमति देते हैं। इस प्रोटोकॉल में एक महत्वपूर्ण बिंदु सेल लाइनों की पीढ़ी है जिसमें जीनोम में एकीकृत रिपोर्टर जीन की एक एकल प्रति होती है। यह प्रमुख विशेषता एक ही जीनोमिक लोकस के भीतर कई प्रतियों के साथ एकीकृत कई रिपोर्टर जीनों के प्रतिलेखन द्वारा बनाए गए शोर को समाप्त करती है और प्रतिलेखन गतिशीलता और व्यक्तिगत आरएनए टेपों के गतिज मापदंडों के संग्रह की अनुमति देती है। एकल रिपोर्टर जीन एकीकरण के प्रतिलेखन का निरीक्षण करने के लिए एक महत्वपूर्ण तकनीकी आवश्यकता एक माइक्रोस्कोप सिस्टम की उपलब्धता है जो लाइव सेल 4,12 में एमएस 2 या पीपी 7 सिस्टम के साथ लेबल किए गए एकल आरएनए टेपों का पता लगाने की अनुमति देती है। यहां, लाइव-सेल माइक्रोस्कोपी एक कॉन्फोकल स्पिनिंग डिस्क सिस्टम पर किया जाता है जो एक उल्टे माइक्रोस्कोप पर घुड़सवार होता है, जो 100 mW ठोस-राज्य लेज़रों से सुसज्जित होता है, जो एक ध्वनिक-ऑप्टिक ट्यूनेबल फ़िल्टर के साथ युग्मित होता है जैसा कि कहीं और वर्णित है24। इसके अलावा, पत्रकारों का उपयोग करके एकल डीएसबी में प्रतिलेखन का अध्ययन करने के लिए, व्यक्तिगत कोशिकाओं को उच्चतम समय संकल्प प्राप्त करने के लिए सावधानीपूर्वक निगरानी की जानी चाहिए, जिसके लिए कई घंटों के लिए इमेजिंग कोशिकाओं की आवश्यकता होती है, जिससे यह एक कम थ्रूपुट परख बन जाता है। फिर भी, हम एक पीजो-संचालित माइक्रोस्कोप चरण द्वारा नियंत्रित स्थिति के समानांतर कई कोशिकाओं का निरीक्षण करते हैं। घंटों में लाइव सेल अवलोकन के लिए इष्टतम पर्यावरणीय स्थितियों को सुनिश्चित करने के लिए, नमूना चरण सहित माइक्रोस्कोप शरीर को एक plexiglass पर्यावरण कक्ष के अंदर रखा जाता है। इसके अलावा, कक्ष इनक्यूबेशन एक बंद चरण माइक्रोस्कोप चरण पर लगाया जाता है और सीओ 2 और आर्द्रता आपूर्ति नियंत्रकों से जुड़ा होता है।

प्रोटोकॉल में पहला महत्वपूर्ण कदम इमेजिंग के लिए कोशिकाओं के साथ रुचि के क्षेत्रों का चयन है। इमेजिंग के लिए चिह्नित प्रत्येक XY स्थिति में एक या अधिक कोशिकाएं होनी चाहिए जो धारा 1, तालिका 1, साथ ही चित्रा 2 D, E में वर्णित रिपोर्टर जीन और अभिकर्मक योजना के अनुसार फ्लोरोसेंट आरएनए स्टेम-लूप बाइंडिंग प्रोटीन के साथ अभिकर्मक दिखाती हैं। इसके अलावा, कोशिकाओं को उज्ज्वल लेबल प्रतिलेखन साइटों को प्रदर्शित करना चाहिए, उन्हें I-SceI-GR-iRFP713 निर्माण के साथ सह-संक्रमित होना चाहिए, और प्रोटीन को शुरू में साइटोप्लाज्म (चित्रा 2 डी और ई) में स्थानीयकृत किया जाना चाहिए।

कोशिकाओं को अनबाउंड फ्लोरोसेंटली टैग किए गए एमएस 2 और / या पीपी 7 कोट प्रोटीन का एक प्रतिदीप्ति तीव्रता स्तर दिखाना चाहिए जो पृष्ठभूमि प्रतिदीप्ति स्तर पर एकल लेबल टेपों का पता लगाने के लिए पर्याप्त रूप से कम है। उसी समय, फ्लोरोसेंटली टैग किए गए एमएस 2 और / या पीपी 7 कोट प्रोटीन का एक मजबूत प्रतिदीप्ति तीव्रता स्तर कुछ ब्लीचिंग के कारण बहुत अधिक प्रतिदीप्ति खोने के बिना कम से कम 60 मिनट में इमेजिंग की अनुमति देने के लिए आवश्यक है। अनुभाग 3.7 में वर्णित एक निश्चित श्रेणी के साथ “स्केल छवि प्रदर्शन” का उपयोग उनके प्रतिदीप्ति तीव्रता स्तर के अनुसार कोशिकाओं के मानकीकृत चयन की अनुमति देने के लिए किया जाता है।

एक दूसरा महत्वपूर्ण प्रोटोकॉल चरण ग्लास बॉटम डिश के ढक्कन में छोटे छेद के माध्यम से पूर्व-निर्धारित XY पदों पर कोशिकाओं में टीए जोड़ रहा है। ग्लास बॉटम डिश का कोई भी हेरफेर कोशिकाओं की चिह्नित XY स्थिति से बदलाव का कारण होगा और इससे बचा जाना चाहिए। इसलिए, सेलुलर विकास माध्यम में टीए को पतला करते समय माइक्रोपिपेट को सावधानीपूर्वक संभालना पूर्व-चयनित कोशिकाओं के सफल अवलोकन के लिए महत्वपूर्ण है, जैसा कि चित्रा 2 एफ में दिखाया गया है। माइक्रोस्कोप चरण पर घुड़सवार कोशिकाओं में दवाओं को जोड़ने के लिए विभिन्न प्रणालियों के अनुकूलन, जैसे कि एक परफ्यूजन सिस्टम, ट्यूब प्रवेश द्वार और निकास उद्घाटन के साथ कक्ष इनक्यूबेशन एक अलग चरण और दवाओं के प्रशासन के लिए एक पंप या इंजेक्शन प्रणाली की आवश्यकता होगी। अन्य तरीकों जैसे कि कवरस्लिप जैसी निचली सतहों के साथ चैनल स्लाइड के परिणामस्वरूप चैनल में प्रशासित दवाओं का धीमा प्रसार होता है और दवा के अलावा और प्रभाव के बीच एक अतिरिक्त देरी होती है। अंत में, एक चैनल स्लाइड खोलने में असावधान pipetting नमूना स्थिति के रूप में अच्छी तरह से स्थानांतरित कर सकते हैं. इसलिए, ग्लास-बॉटम डिश के ढक्कन में एक कस्टम ड्रिल किए गए छेद के साथ वर्तमान प्रणाली अनुकूलन, कम लागत और विभिन्न विकास मीडिया, दवाओं और घटकों के प्रशासन के लिए उपयुक्त है। छेद का छोटा व्यास और कक्ष के चरण में ह्यूमिडिफाइड वातावरण इनक्यूबेशन भी सेल माध्यम से सूखने से रोकता है।

इस प्रोटोकॉल में एक तीसरा महत्वपूर्ण कदम डेटा विश्लेषण है, जिसके लिए समय बिंदुओं के मैनुअल निरीक्षण की आवश्यकता होती है जब डीएसबी के प्रेरण के कारण प्रतिलेखन बंद हो जाता है। प्रतिलेखन को समाप्त करने का समय बिंदु रिपोर्टर जीन प्रतिलेखन के पहले उज्ज्वल लेबल वाली साइट से अंतिम टेपों को जारी करके इंगित किया जाता है। इसी तरह, ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन दीक्षा की घटनाओं को एकल फ्लोरोसेंटली लेबल वाले एमआरएनए के अपेक्षाकृत कम सिग्नल-टू-शोर अनुपात के साथ व्यक्तिगत प्रतिलेखन घटनाओं का पता लगाने के लिए देखभाल के साथ निरीक्षण किया जाना चाहिए।

प्रेरित डीएसबी की मरम्मत की गतिशीलता इन पत्रकारों का उपयोग करके उत्पन्न डेटा के विश्लेषण के लिए जटिलता की एक अतिरिक्त परत जोड़ती है, उन्हें डीएसबी के प्रेरण के तुरंत बाद पहले मिनट तक सीमित करती है। रिपोर्टर जीन की ट्रांसजेनिक प्रकृति और MS2 और PP7 स्टेम-लूप सरणियों की पुनरावृत्ति-समृद्ध प्रकृति एक अद्वितीय क्रोमैटिन परिदृश्य को इकट्ठा कर सकती है, जो स्थिर ब्रेक-प्रेरित प्रतिलेखन कार्यक्रमों की स्थापना के साथ हस्तक्षेप कर सकती है। फिर भी, आयनीकरण- या यूवी-विकिरण की तुलना में, रिपोर्टर जीन में डीएसबी के आई-एससीईआई मध्यस्थता प्रेरण व्यक्तिगत डीएसबी में प्रतिलेखन की जांच करने के लिए एक बहुत अधिक मजबूत प्रणाली है।

I-CreI, I-PpoI, या AsiSI जैसे विभिन्न एंडोन्यूक्लिएज सिस्टम जिनके पास मानव जीनोम के भीतर अतिरिक्त मान्यता साइटें हैं या नहीं हैं, उन्हें DSBs उत्पन्न करने की संभावित उच्च दक्षता के लिए वर्तमान रिपोर्टर जीन सिस्टम के साथ जोड़ा जा सकता है। हालांकि, उन्हें पहले रिपोर्टर जीन में एंडोन्यूक्लिएज मान्यता साइट को पेश करने की आवश्यकता होती है। दूसरे, उनके पास व्यक्तिगत कोशिकाओं में डीएसबी के समय और दक्षता प्रेरण पर एक समान परिवर्तनशीलता हो सकती है। दूसरी ओर, एंडोन्यूक्लिएज मान्यता साइटों की अग्रानुक्रम प्रतियां डालने से डीएसबी प्रेरण की दक्षता बढ़ सकती है। इसके अलावा, विभिन्न सेल लाइनों में प्रस्तुत रिपोर्टर जीन सिस्टम का परीक्षण विभिन्न सेलुलर पृष्ठभूमि के बीच डीएसबी साइटों पर प्रतिलेखन गतिशीलता की तुलना और कैंसर कोशिकाओं, प्राथमिक कोशिकाओं और विभेदित गैर-साइकिल चालन कोशिकाओं जैसे विभिन्न डीएनए क्षति मरम्मत मार्गों की उपलब्धता की अनुमति देगा। हालांकि, रिपोर्टर जीन का निर्माण Flp / FRT प्रणाली के साथ संगत होने के लिए वर्तमान में उपलब्ध Flp / FRT होस्ट सेल लाइनों में एकीकरण को सीमित कर रहा है।

माइक्रोस्कोपी-आधारित अनुप्रयोगों के अलावा, वर्तमान रिपोर्टर जीन को जैव रासायनिक assays के साथ भी जोड़ा जा सकता है, जैसे कि क्रोमैटिन immunoprecipitation, एक एकल DSB के लिए डीएनए मरम्मत या प्रतिलेखन कारकों की भर्ती का अध्ययन करने के लिए या DSB साइट के चारों ओर न्यूक्लियोसोम अधिभोग, हिस्टोन संशोधनों और क्रोमैटिन राज्य का आकलन करने के लिए। इसके अलावा, विभिन्न रिपोर्टर प्रणालियों के साथ एक संयोजन डीएनए क्षति और जीनोम संगठन या डीएनए प्रतिकृति जैसी प्रक्रियाओं के बीच कार्यात्मक लिंक के अध्ययन की अनुमति देगा।

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम प्लास्मिड और अभिकर्मकों के उपहारों के लिए आरएच सिंगर, जे.ए. चाओ, टी. मिस्टेली, एम. कार्मो-फोन्सेका को धन्यवाद देते हैं। हम भी आईएमएम Bioimaging सुविधा कर्मचारियों, ए Temudo, ए Nascimento, और जे रिनो, पांडुलिपि के महत्वपूर्ण पढ़ने के लिए ऋणी हैं. इस काम को PTDC / MED-OUT / 32271 /2017, PTDC / BIA-MOL / 30438/2017 और PTDC / MED-OUT / 4301/2020 द्वारा Fundação पैरा ए Ciência e a Tecnologia (FCT), पुर्तगाल और LISBOA-01-0145-FEDER-007391 द्वारा वित्त पोषित किया गया था, जो कि पोर लिसिओ के माध्यम से फेडर द्वारा सह-वित्त पोषित किया गया था। यूरोपीय संघ के क्षितिज 2020 अनुसंधान और नवाचार कार्यक्रम (राइबोमेड 857119) से भी धन प्राप्त हुआ था। एमए एफसीटी पीएचडी फैलोशिप 2020.05899.BD के प्राप्तकर्ता हैं।

Materials

100 mW solid-state Lasers Coherent Inc., Santa Clara, CA, USA
3i Marianas SDC Confocal Spinning Disk system Intelligent Imaging Innovations Inc.
Air-cooled EMCCD Camera Evolve 512 Photometrics, Tucson, AZ USA
Axio Observer Z1 inverted microscope Carl Zeiss MicroImaging, Germany
Blasticidin InvivoGen ant-bl-1
charcoal-stripped fetal bovine serum Sigma-Aldrich F6765-500 ML
CO2 module S PeCon GmbH, Erbach, Germany
CSU-X1 confocal spinning disk unit Yokogawa Electric, Tokyo, Japan
DMEM Gibco 41966029
DMEM with Hepes no PhenolRed Gibco 21063-029
Doxicyclin Sigma-Aldrich D9891 for induction of reporter gene expression; stock solution of 0.5 mg/ml was used at 1:1000 dillution in cell growth medium
FBS Gibco 10270106
Flp-In T-REx 293 cell line Thermo Fischer Scientific Invitrogen R75007
I-SceI-24x MS2 stem loop sequence GeneArt, Thermo Fischer Scientific custom synthesized DNA fragment containing a single I-SceI recognition sequence and 24 tandem MS2 stem loop sequences
Heating Device Humidity 2000 PeCon GmbH, Erbach, Germany
Hygromycin B Roche 10843555001
Immersion oil Immersol 518 F Carl Zeiss MicroImaging Inc.) 444960-0000-000
L-glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081
Lipofectamin 3000 helper reagent P3000 Thermo Fisher Scientific L3000001 transfection helper reagent
Lipofectamine 3000 reagent Thermo Fisher Scientific L3000001 lipid-based transfection reagent
MatTek 35 mm dish, Glass bottom No. 1.5 MatTek Corporation, Ashland, MA, USA P35G-1.5-10-C
microscope incubation chamber PeCon GmbH, Erbach, Germany
pcDNA5/FRT/TO Thermo Fischer Scientific Invitrogen V652020
pOG44 plasmid Thermo Fischer Scientific Invitrogen V600520
SlideBook 6.0 Software Intelligent Imaging Innovations Inc.
stage incubation chamber PeCon P-Set 2000 PeCon GmbH, Erbach, Germany
StaQtool Software iMM-JLA Lisbon, Portugal available at: https://imm.medicina.ulisboa.pt/facility/bioimaging/lib/exe/fetch.php?media=STaQTool_setup.zip
triamcinolone acetonide (TA) Sigma-Aldrich T6501 synthetic glucocorticoid; induces the glucocorticoid receptor to migrate from the cytoplasm to the nucleus
Trypsin/EDTA Solution (TE) Thermo Fisher Scientific R001100

Referências

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Citar este artigo
de Almeida, M. R., Gameiro, E., de Almeida, S. F., Martin, R. M. Live-Cell Imaging of Transcriptional Activity at DNA Double-Strand Breaks. J. Vis. Exp. (175), e62968, doi:10.3791/62968 (2021).

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