vagal afferents의 세포 체는 경정맥, 석유, 및 nodose ganglia^1,2,3에포함된다. 그들의 축축은 두개골, 흉부 및 복부 영토^4,5,6,7에미주 신경의 여러 가지를 통해 함께 여행한다. 그들의 내장 엔딩에서, vagal afferents는 생리적이고 유해한 자극의 넓은 범위에 반응할 수 있습니다^8,9,10. 그러나, 바갈 감지에 관여하는 신호 분자 및 수용체의 분포는 제대로 특성화 남아 있습니다. 이는 부분적으로 그들의 작은 크기에도 불구하고, 많은 수의GPCRs8,^11,12,13을포함하여 광범위한 수용체 스펙트럼을 표현하기 때문이다. 더욱이, vagal 발포성 뉴런은 본질적으로 이질적이며 뚜렷한 분자^{프로파일(14)을}표시한다. 문제를 복잡하게 하기 위해 경정맥, 석유 및 노도스 신경리아가 마우스에 부착되어 단일 신경절 질량을 형성합니다. 마지막으로, 동물의 하위 집합에서, 노도스 신경절은 공감 우수한 자궁 경부^{신경절(15)에}부착된다.

과거에, 조사자들은 vagal 포퍼트 뉴런의 신경화학적 구성을 연구하기 위해 면역히토화학으로 전환했다^16,17,18. 검증된 항체를 이용한 면역히스트토화학이 유용하지만, 면역히스토케미칼 연구의 결과는 주의해서 해석되어야 한다. 예를 들어, GPCRs에 대한 특정 항체를 식별하는 수많은 노력은^{19,20,21,22, 23,24,25에}실패했으며, 주요 연구자들은 GPCRs에 대한 항체의 대부분이 신뢰할 수 없다는 결론을 내렸다. 이러한 문제점을 회피하기 위해, 정량적 PCR(qPCR)은 설치류 혈관 신경절 질량^{26,27,28,29에서}유전자 발현을 평가하는 데 널리 사용되어 왔다. 그러나, qPCR을 이용한 유전자 발현을 검사하는 것은 공간 정보의 손실의 희생으로 발생한다. 특히, 관심 있는 특정 유전자(예를 들어, 노도스 대 경정맥 세포)를 발현하는 세포 또는 셀 유형(들)의 수를 예측할 수 없다. 되풀이되는 문제점은 또한 인접한 조직으로 오염및 해부¹⁵도중 미주 신경의 가변 길이, 우수한 자궁 경부 및 경정맥 의 포함을 포함합니다. 위의 어려움의 결과로, 논쟁은 vagal 포성 뉴런에서 여러 GPCRs의 표현과 분포를 둘러싸고 있습니다. 한 특히 수수께끼 예는 ghrelin 수용 체에 관한 (Ghsr). 일부 연구는 vagal afferent^{뉴런30,31,32에서이}수용체의 광범위한 표현을 발견하는 반면, 다른 사람은 Ghsr mRNA가 nodose 신경절^11,14에서거의 감지 할 수없는 것으로 나타났습니다. 따라서 vagal ganglionic 질량에 있는 Ghsr mRNA의 상세한 매핑은 그러므로 보증됩니다.

시투 혼성화(ISH)에서도 vagal ganglionic 질량^{7,11,12,33,34,35에서}유전자 발현 패턴을 평가하는 데 사용되었습니다. RNA 기반 기술은 대부분의 상황에서 항체 기반 기술보다 더 신뢰할 수 있고 특이적으로 남아 있기 때문에^36,37,ISH 연구는 vagal 포성 뉴런의 신경 화학 코딩을 더 잘 이해하는 데 가치가 입증되었습니다. 그럼에도 불구하고, 전통적인 ISH 기술 자체는 주의없이하지 않습니다. 방사성 이스는 민감하지만 배경을 생성하고 성가신³⁸남아있다. 비 방사성 ISH는 덜 복잡하지만 덜^{민감하지 도 38.} 대조적으로, 최근에 개발된 RNAscope ISH 방법은 매우 민감하고 최소한의^{배경(39)을}생성한다. 현재 연구는 마우스의 vagal 포성 뉴런에서 GPCRs의 검출에 멀티플렉스 형광 RNAscope를 적용. 우리는 Ghsr의 분포를 매핑에 초점을 맞추고 cholecystokinin 수용체 (Cck1r)의 분포를 비교, 또 다른 GPCR잘 노도스 신경절에서 발현 될 것으로 알려진⁽³⁴⁾. 마지막으로, 쌍과 같은 동종박스 2b(Phox2b) 및 PR 도메인 아연 핑거 단백질 12(Prdm12)는 각각^14개의노도스와 경정맥 성신경에 대한 선택적 마커로 사용되었다. Phox2b 또는 Prdm12를 시각화하지 않으면 경정맥 대 노도스 포렌티를 확실하게 식별하는 것이 어려울 것입니다. 잠재적인 기술적 함정은 또한 기사 전반에 걸쳐 논의됩니다.