Микрокомпьютерная томография с двойным литьем смолы, или DUCT, позволяет одновременно визуализировать, оцифровывать и сегментировать две трубчатые системы для облегчения 3D-анализа архитектуры органов. DUCT сочетает в себе ex vivo инъекцию двух рентгеноконтрастных смол с последующим микрокомпьютерным сканированием и сегментацией томографических данных.
Печень является самым большим внутренним органом у людей и мышей, и высокая автофлуоресценция представляет собой значительную проблему для оценки трехмерной (3D) архитектуры органа на уровне всего органа. Архитектура печени характеризуется множественными ветвящимися люменизированными структурами, которые могут быть заполнены смолой, включая сосудистые и желчные деревья, устанавливая очень стереотипный рисунок в богатой гепатоцитами паренхиме. Этот протокол описывает конвейер для выполнения микрокомпьютерной томографии с двойной смолой, или «DUCT». DUCT влечет за собой инъекцию в воротную вену и общий желчный проток с двумя различными рентгеноконтрастными синтетическими смолами с последующей фиксацией ткани. Контроль качества путем очистки одной доли или всей печени оптическим очищающим агентом позволяет проводить предварительный скрининг надлежащим образом введенных образцов. Во второй части трубопровода DUCT доля или вся печень могут быть использованы для микрокомпьютерного сканирования (микроКТ), (полу)автоматизированной сегментации и 3D-рендеринга портальных венозных и желчных сетей. MicroCT приводит к 3D-координатным данным для двух смол, что позволяет проводить качественный, а также количественный анализ двух систем и их пространственных отношений. DUCT может применяться к постнатальной и взрослой печени мыши и может быть дополнительно распространен на другие канальцевые сети, например, сосудистые сети и дыхательные пути в легких.
Литье из органной смолы – это техника, которая восходит к 17 веку1. Один из первых примеров современного литья смолы был выполнен на печени человека после вскрытия. Внутрипеченочные желчные протоки заполняли контрастным веществом, смешанным с желатином, с последующей визуализацией с помощью рентгеновской КТ2. Целью метода DUCT является визуализация, оцифровка и анализ двух трубчатых смоляных сетей в тандеме в 3D.
DUCT основан на обширных существующих знаниях односистемного литья печеночной смолы3,4,5,6,7,8 и распространяется на одновременную 3D-визуализацию и анализ двух систем9. Усовершенствованное литье одной смолы DUCT для литья двойной смолы путем смешивания двух рентгеноконтрастных смол разного контраста и введения этих смол в две разные сети, в частности в общий желчный канал и портальную жилу. DUCT может быть применен к молодым постнатальным мышам с воспроизводимыми результатами уже на 15-й день (P15). По сравнению с методами визуализации, основанными на микроскопии, основным преимуществом является то, что DUCT быстрее, без антител, а аутофлуоресценция тканей печени не мешает визуализации. Кроме того, DUCT предоставляет количественные данные, описывающие состояние люменизации, внутренний диаметр, сетевое подключение и перфузию. Дифференциация между присутствием просветообразующих клеток и их де-факто морфогенезом в трубки имеет важное значение для анализа органов, в которых проточные клетки присутствуют, но не образуют трубок, как это может быть в случае синдрома Алагилле10. Основным недостатком DUCT является ограниченное проникновение смолы, которая является вязкой и не попадает в трубки с малым калибром (<5 мкм). DUCT может применяться для любой трубчатой структуры после определения точки входа инъекции, такой как артериальная и венозная системы кровообращения, дыхательные пути, внепеченочный желчный проток или лимфатические сосуды. Таким образом, это может облегчить анализ архитектуры целых органов других тканей, таких как легкие и поджелудочная железа.
Сегментированные изображения MicroCT могут быть обработаны с использованием коммерчески доступного программного обеспечения для обработки изображений, такого как ImageJ, или специально написанных конвейеров (например, MATLAB). Печень, введенная смолой, может быть качественно проанализирована на предмет расширения сети и связности или количественно на объем, длину, ветвление, извилистость одной системы и взаимодействие между двумя системами, такое как расстояние между двумя системами или зависимость от точки ветвления (разветвляется ли система 1 в непосредственной близости от ветвления системы 2?). Трубопровод DUCT, охватывающий инъекцию смолы, микроКТ-сканирование и сегментацию данных КТ, в сочетании с подробным количественным анализом архитектурных механизмов двух трубчатых систем, может обеспечить стандарт для анализа всей печени на животных моделях.
Несколько критических шагов определяют успех DUCT, от подготовки образца до параметров устройства КТ. Для достижения наилучших результатов следует использовать хорошо контрастную, хорошо впрыскиваемую и безпузырьковую смолу, чтобы обеспечить простую цифровую обработку с автоматическим пороговым значением для получения 3D-данных, изображений и фильмов. При обучении и следовании этому протоколу 90% инъекций являются успешными и приводят к воспроизводимым данным. Важно использовать свежую желтую смолу для достижения наилучшего контраста между двумя инжекторными системами. Желтая смола имеет очень сильную рентгенопроницаемость, в то время как синяя смола имеет неопределяемую рентгенопроницаемость. Наилучшие результаты достигаются в течение первых трех месяцев после открытия новой бутылки с желтой смолой. Со временем смола выпадает в осадок, и после более длительного хранения (>6 месяцев) желтая и зеленая смолы больше не будут различимы на КТ. Изображения с плохой контрастностью требуют обширной и трудоемкой ручной трассировки и сегментации двух систем. Далее, хорошо растянутая трубка незаменима, чтобы вписаться в общий желчный проток взрослых мышей и общий желчный проток и воротную вену постнатальных мышей. Точка входа для инъекции должна быть создана с осторожностью. Если общий желчный проток разрезать поперечно, он, вероятно, отсоединится от окружающих тканей, препятствуя успешному проникновению трубки. Этот шаг особенно деликатный для постнатальных мышей, у которых общий желчный проток втягивается и «сворачивается», если он отделился от окружающих тканей, что делает введение трубки чрезвычайно сложным. Общий вход в желчный проток и инъекция могут потребовать некоторой практики. При приготовлении трубки со смолой и на протяжении всей инъекции избегайте образования пузырьков, так как пузырьки создадут негативное пространство на изображениях КТ и потребуют трудоемкой ручной коррекции. Важно мягко массировать печень, перекатываясь по ее поверхности смоченным ватным тампоном во время и после процедуры инъекции, так как это облегчает равномерное распространение смолы. После завершения инъекции и снятия трубки шелковый шовной узел необходимо быстро и осторожно затянуть, чтобы смола не вытекала из печени до того, как она полностью полимеризуется. Для успешной микроКТ-визуализации образец должен быть правильно закреплен на месте с помощью агарозы и термически адаптирован для устранения артефактов движения в данных КТ. Настройки сбора также имеют ключевое значение, которое должно быть оптимизировано для достижения адекватного пространственного разрешения для разрешения тонких структур.
Технические изменения в процедуре инъекции могут быть сделаны для достижения инъекции у молодых мышей. В настоящее время литье смолы молодых печени мышей ограничено наличием достаточно тонких трубок, причем PE10 является самой маленькой коммерчески доступной трубкой. Tanimizu et al. успешно ввели углеродные чернила в эмбриональный желчный проток 17 (E17) с использованием стеклянных капилляров11. Поэтому будущее тестирование того, может ли смола быть доставлена через стеклянный капилляр, будет представлять интерес. DUCT был дополнительно адаптирован для инъекции других канальцевых систем, таких как дыхательные пути и сосудистая система легочной артерии легких9. Двойное впрыскивание смолы также может быть модифицировано для использования с другими коммерчески доступными смолами, или этот протокол может быть использован для инъекций углеродными чернилами.
Одним из основных ограничивающих факторов трубопровода DUCT является вязкость смолы. DUCT может быть использован только для литья смолы трубчатых конструкций диаметром выше 5 мкм. В этом наборе данных смола могла проникать в трубы с наименьшим диаметром 5 мкм9. Это ограничение размера исключает анализ тонких протоков и мелких капилляров. Для дальнейшего продвижения трубопровода DUCT к сосудам меньшего калибра должны быть протестированы другие коммерчески доступные смолы, или разработка новых низковязких рентгеноконтрастных агентов может улучшить проникновение просвета.
В Hankeova et al.9 DUCT сравнивали с двумя другими широко используемыми методами: двойными инъекциями углеродных чернил с последующей очисткой тканей и стандартной фотографией и iDISCO+ с окрашиванием кровеносных сосудов актином альфа-гладкомышечных клеток и желчных протоков цитокератином 7, с последующей 3D-визуализацией9. DUCT превзошел два других метода с точки зрения двойного анализа (что было сложно для iDISCO+ из-за высокой аутофлуоресценции печени), 3D-визуализации и количественной оценки (невозможно при инъекции углеродных чернил) и люменизации (DUCT предоставляет данные для архитектуры внутреннего просвета и перфузии системы). Как упоминалось выше, основным ограничением DUCT является минимальный размер светового потока, который может быть введен и проанализирован (предел 5 мкм), параметр, в котором как впрыск углеродных чернил, так и iDISCO+ работали лучше. DUCT превосходит односистемное литье смолы3,5,6, поскольку позволяет анализировать каждую инжектируемую систему отдельно, а также облегчает двойное 3D-исследование для изучения архитектурных отношений между двумя системами.
DUCT может быть применен для изучения любых двух трубчатых сетей в 3D. В качестве доказательства принципа DUCT был использован для визуализации систем желчных и портальных вен печени, а также сосудистой системы и дыхательных путей легочной артерии в легких9. Внутрипеченочные желчные протоки развиваются рядом с портальной веной, а портальная вена обеспечивает структурный шаблон и сигнальный центр, который регулирует рост и дифференцировку желчевыводящего дерева12. В Hankeova et al.9 DUCT исследовал билиарную регенерацию в мышиной модели для детского заболевания человека синдрома Алагилле. DUCT выявил ранее неизвестные архитектурные механизмы, которые билиарная система использовала для достижения дикого типа тома9. Мыши с синдромом Алагилле использовали две различные стратегии: (1) в хиларной и центральной областях печени билиарная система увеличила свое ветвление, и (2) на периферии печени de novo-генерируемые желчные протоки были очень извилистыми. Эти два фактора в совокупности дали почти нормальный объем билиарной системы, несмотря на аномальную архитектуру. Кроме того, DUCT обнаружил аномальное ветвление желчных протоков, которое происходило независимо от ветвления портальных вен и желчных протоков, образующих соединительные мосты между двумя портальными венами9. Эти фенотипы было бы невозможно обнаружить при литье одной смолы и могут быть неправильно истолкованы в 2D гистологических срезах как пролиферация желчных протоков. Таким образом, DUCT предоставляет данные, описывающие 3D-архитектуру двух трубчатых сетей на уровне всего органа или доли с возможностью качественного и глубокого количественного анализа. DUCT может стать новым стандартом для анализа постнатального развития печени и регенерации печени на различных животных моделях.
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим Кари Юпперт и Стейси Юппер за их опыт и помощь в отношении каннуляции желчных протоков и их лабораторное гостеприимство. Мы также благодарим Надю Шульц и Шарлотту Л. Маттссон за их помощь в канюляции желчных протоков.
Мы благодарим следующие учреждения, предоставляющие гранты, за их поддержку:
За работу в ERA Lab: Karolinska Institutet (2-560/2015-280), Stockholms Läns Landsting (CIMED (2-538/2014-29)), Ragnar Söderbergs stiftelse (Стартовый грант шведских фондов), Европейская ассоциация по изучению печени (премия Даниэля Алагилле), Шведский фонд сердца и легких (20170723) и Vetenskapsrådet (2019-01350).
За работу в JK Lab: Мы благодарим исследовательскую инфраструктуру CzechNanoLab, поддерживаемую MEYS CR (LM2018110). J.K. благодаря поддержке гранта FSI-S-20-6353.
1.5 mL SafeSeal micro tubes | Sarstedt | 72.706 | |
23 G butterfly needle with tubing | BD bioscience | 367283 | |
25 G needle | BD bioscience | 305122 | |
30 G needle | BD bioscience | 305106 | |
Agarose | Top-Bio | P045 | |
Benzyl alcohol | Sigma Aldrich | 108006 | |
Benzyl benzoate | Sigma Aldrich | B6630 | |
Corning 50 mL tubes | Sigma Aldrich | CLS430829-500EA | polypropylene |
Cotton swabs | Medicarier | 60406 | |
Dissection Microscope | Leica Camera AG | Leica M60 | |
Dulbecco's phosphate-buffered saline | ThermoFisher Scientific | 14190144 | |
Ethanol 70% | VWR | 83801.41 | |
Falcon tube 15 mL | Verkon | 331.850.084.006 | |
Forceps curved | Fine Science Tools | 11051-10 | Fine Graefe 10 cm curved |
Forceps straight | Fine Science Tools | 11050-10 | Fine Graefe 10 cm straight |
Formaldehyde solution | Sigma Aldrich | F8775 | |
GE Phoenix v|tome|x L 240 | Waygate Technologoies | micro computed tomography scanner | |
Hanks' Balanced Salt Solution | ThermoFisher Scientific | 14025092 | |
Heparin | Leo Pharma | B01AB01 | 5000 IE/mL |
Isolfurane | Baxter | FDG9623 | |
Methanol | ThermoFisher Scientific | 11413413 | |
MICROFIL | Flowtech | MV-122 | synthetic resin yellow |
MICROFIL | Flowtech | MV-120 | synthetic resin blue |
MICROFIL | Flowtech | MV-diluent | clear resin diluent |
Pasteur pipette | Verkon | 130.690.424.503 | |
Peristaltic pump | AgnThos | 010.6131.M20 | |
phoenix datos|x 2.0 software | Baker Hughes | CT data reconstruction software | |
Rocker | VWR | 444-0142 | |
Silk suture | AgnThos | 14757 | Black silk, 4-0, sterile, 100 m |
Skin scissor | Fine Science Tools | 14058-09 | Iris straight tip 9 cm |
Spring scissor | Fine Science Tools | 15000-03 | Vannas micro, straight tip 2 mm |
Syringe 1 mL Luer | BD bioscience | 303172 | |
Tubing PE10 | BD bioscience | 427401 | |
Tubing PE50 | BD bioscience | 427411 | |
VG Studio MAX 3.3 software | Volume Graphics GmbH | CT data processing and analysis software |