该协议提出了从麻醉小鼠大脑包裹的围带和附近血管的血流数据中获取和分析荧光钙图像的步骤。这些技术可用于壁画细胞生理学的研究,并可以适应研究任何细胞类型的钙瞬态。
蛋白质生物学和小鼠遗传学的最新进展使得测量 体内 脑细胞的细胞内钙波动并将其与局部血液动力学联系起来成为可能。该协议使用用慢性颅窗制备的转基因小鼠,在α平滑肌肉作用剂促进器下表达基因编码的钙指示器RCaMP1.07,以专门标记壁画细胞,如血管平滑肌肉细胞和包皮膜。步骤概述了如何准备尾静脉导管静脉注射荧光染料,以跟踪血液流动,以及如何测量脑腹膜钙和局部血管血液动力学(直径,红细胞速度等),通过两个光子显微镜 在体内 通过颅窗在氯胺酮/西拉辛麻醉小鼠。最后,通过巴雷特等人开发的图像处理算法,详细介绍了钙的波动和血流电影的分析,重点是这些过程如何适应其他细胞成像数据。
中枢神经系统血管由穿透动脉、毛细血管和上升静脉组成。在这个网络中,壁画细胞,如血管平滑肌肉细胞包裹动脉和腹膜沿第一个动脉分支和毛细血管1扩展细胞过程。围产层在大脑中似乎有几个作用,包括维持血脑屏障1,2,迁移和动能3,潜在的干细胞特性,以及调节脑血流4,5,6。围产期的许多功能作用都与细胞内钙的波动有关,这些波动可能调节这些细胞的扩散或收缩4、5、6。
最近的几项研究已经设定了识别不同类型的脑周细胞7,8的标准。穿透动脉前4个分支中的壁画细胞根据收缩蛋白α光滑肌肉作用素(αSMA)的表达和其突出的卵样索马塔,其过程围绕血管7,8,9包裹,包裹在腹膜上。为了可视化包裹内膜的钙波动,本协议使用一种新的转基因小鼠线,Acta2-RCaMP1.07,也称为Tg(RP23-370F21-RCaMP1.07)B3-3Mik/J10。这些小鼠在βSMA表达细胞(血管平滑肌肉细胞和包皮外膜)中表达红色基因编码钙指标RCaMP1.07。繁殖殖民地通过与杂交动物交叉来维持。RCaMP1.07是一种红色荧光蛋白,具有镇静剂结合域,当与细胞内钙10、11结合时,可增加荧光。本协议概述了两个光子显微镜结合围板钙成像和血流量测量的步骤,包括荧光染料尾静脉注射程序、麻醉小鼠显微镜图像采集以及与编程平台的数据分析(图1)。这些技术可用于解决有关壁画细胞生理学的问题,但可以适应研究大脑或其他器官系统中任何细胞类型的钙瞬态。
一只10个月大的雌性Acta2-RCaMP1.07小鼠被用于本文中提出的实验。两个月前,小鼠接受了慢性颅窗和头部后植入手术。手术方案的细节在以前的研究中讨论12,13和类似的程序已经执行在其他先前公布的协议14,15。血管被标记为绿色荧光素-德克斯特兰(70,000兆瓦,电离溶液,2.5%w/v)静脉注射。这种染料具有成本效益,从商业来源随时可用,但它具有更广泛的排放光谱,可能与 RCaMP 排放重叠,并在显微镜图像采集过程中渗出。下面的第 4 节概述了光谱未混合的步骤,以规避这种情况,但也可能使用其他排放光谱较窄的绿色染料,如基于 EGFP 的染料。
本方法通过导管、深度堆叠的双光子显微镜图像采集、细胞钙信号膜、造血机同源测定仪、钙和血液学分析等细节,使用我们的图像处理算法17(图1)。这些技术有几个优点,可以改善体内成像结果,减少会话中的时间、资源和动物压力。首先,使用导管注射尾静脉可以控制针头、注射器和注射到小鼠血液中的物质量。此外,它防止染料注射到尾部组织,节省昂贵的试剂。其次,我们使用转基因小鼠,它表达基因编码的钙传感器在包裹周边细胞,并演示如何定位他们的大脑血管网络与深度z堆栈,这有利于细胞识别和搬迁在随后的成像会议长期。这是围网细胞研究的一个重要因素,并确保正确的细胞分类6,7。第三,我们提供收集钙膜和血液同位素线扫描数据的参数,这些数据是测量动态细胞信号的良好起点。最后,我们介绍了我们的图像处理算法17,一个全面的图像处理工具箱,其中包含图像预处理(如光谱未混合)、钙图像分析和血液同位素分析(直径、速度等)的多种方法。这些算法可以生成图,以便快速、轻松地可视化数据,同时最大限度地减少分析结果所需的用户专业知识水平。此外,它可以自动使用几行代码快速批量处理具有相同参数的多个数据集。这有可能改善数据可视化和研究人员的时间投入。
收集良好的钙成像数据的关键是调整激光功率和PMT设置,以获得清晰的荧光信号,但也以足够的帧速率收集数据,以捕获整个钙事件。此协议中的数据以每秒 10-11 帧的速度获取,从而捕获包裹围板中较慢的钙振荡。分析过程中还有几个步骤可以改进分析结果。首先,如果氟的发射光谱(图2)之间有显著重叠,光谱未混合是有益的。氟辛-德克斯特兰用于本协议,因为它是一种具有成本效益和商业可用的德克斯特兰结合体,通常用于血液测量5。光谱未混合有助于清理数据,以增强钙信号的检测,但也可以使用排放光谱较窄的替代氟。其次,手工选择细胞结构作为ROI(图3)对于对不同亚细胞区域(如索马或工艺分支)的钙事件进行分类是有用的。基于活动的ROI选择(图4)16提供了更多关于个别钙事件的空间和时间信息。当确定特定区域的钙事件频率或将事件传播到其他细胞区域时,这很有帮助。使用编程软件分析成像数据可以节省研究人员处理数据所需的数小时时间,但需要一些初始时间投资来调整参数以获得最佳结果。最重要的因素是活动区域的预期大小(在 μm2中)以及信号的持续时间(必须定义最小信号时间和最大信号时间)。研究人员必须首先检查一些T系列电影的例子,以最好地确定哪些参数适合他们的数据。最后,在显微镜上获得的劣质数据会极大地阻碍钙和血液动力学的分析(图6)。因此,应谨慎优化显微镜采集设置。考虑到这些因素,此协议可以适应钙成像或分析其他组织或细胞类型的其他动态细胞信号(例如荧光钠、钾、代谢物或电压波动)。
此协议有几个限制。首先,这些数据是在麻醉下收集的,麻醉会影响大脑活动,并可能影响血液流动。类似的成像可以在清醒的小鼠身上进行,这些小鼠经过训练,接受头部固定,以获得更多的生理结果。此外,重要的是要记住,我们收集2维图像的3维细胞和血管 在体内。因此,我们只能捕捉到这些细胞内钙事件的一个派系,或者一次在血管的单个部分的血流。
需要注意的另一个限制是,双光子钙成像对运动器件很敏感,在运动器件中进出焦距平面的运动可能被误认为是钙的波动。此协议是在麻醉下执行的,它限制了动物的运动:然而,运动神器可以通过小鼠的呼吸速率,心率,可能的组织肿胀,并在包皮细胞,血管收缩或血管运动的情况下引入4,6,18,19。运动伪影可以通过多种策略来缓解。本协议中使用的图像处理包包括一个可选的运动校正步骤,该步骤利用二维卷积引擎根据可见血管13、17对齐T系列中的图像。焦距平面有显著变化的帧由此算法识别,可排除在分析之外。此外,还可以在成像处理包中使用统计策略,例如生成荧光痕迹时的 Z 分数,以使运动诱发的钙波动正常化20。在双光子成像中,最可靠的解释运动伪影的方法是将同一细胞内两个荧光指示器的表达组合在一起,例如钙指示器(例如 GCaMP)和荧光记者(例如 mCherry),这些荧光灯是独立的。荧光机的波动可以归因于运动,并从钙指示信号中减去,使运动器件正常化。
本协议的目的是明确了解如何 在体内 收集最佳的钙成像和血流数据,并提供研究人员可以实施的新方法和分析工具,以提高其结果。这些技术可用于研究不同围甲酸盐群在血流量控制或不同脑病状态中的作用。这些成像参数还可用于研究其他细胞类型和器官系统的钙和血流,类似的原理也适用于其他基因编码传感器(钙之外)可能实现的其他动态成像技术。
The authors have nothing to disclose.
J. Meza 得到米塔克斯和马尼托巴省研究部的研究金的支持。这项工作的资金由加拿大卫生研究所、马尼托巴省研究所、马尼托巴省医疗服务基金会提供,马尼托巴大学和加拿大大脑研究所通过加拿大大脑研究基金提供启动资金,加拿大卫生部和Azrieli基金会提供财政支助。这里表达的观点不一定代表卫生部长或加拿大政府的意见。
Acta2-RCaMP1.07 | The Jackson Laboratory | 28345 | In the video protocol the animal model used is a female mouse of 10 months, 1 day old. |
Applicators (Regular) | Bisco | X-80250P | |
BioFormats package for MATLAB | NA | NA | Denominated in this protocol as "image processing packages". Available in: https://docs.openmicroscopy.org/bio-formats/ |
CHIPS MATLAB toolbox | NA | NA | Denomitaded in this protocol as "image processing algorithms". Barrett MJP, Ferrari KD, Stobart JL, Holub M, Weber B. CHIPS: an Extensible Toolbox for Cellular and Hemodynamic Two-Photon Image Analysis. Neuroinformatics. 2018;16(1):145-147. doi:10.1007/s12021-017-9344-y. Available in: https://github.com/EIN-lab/CHIPS |
Clear Ultrasound Gel, Medium viscosity | HealthCare Plus | UGC250 | |
Dextran, fluorescein, 70,000 MW, anionic | Thermo Fisher Scientific | D1823 | |
Dextran, Texas Red, 70,000 MW, neutral | Thermo Fisher Scientific | D1830 | |
Eye Lube Plus | Optixcare | NA | |
FIJI | Image J | NA | Denominated in this protocol as "image processor software". Available in: https://imagej.net/Fiji/Downloads |
GCaMP6sfl/fl | The Jackson Laboratory | ||
Head Post fixing platform | University of Zurich | NA | |
Ketamine (Narketan 100 mg/mL) | Vetoquinol | 440893 | |
MATLAB R2020b | NA | Denominated in this protocol as "programming platform ". Available in: https://www.mathworks.com/downloads/ | |
Needle 0.3mmx25mm | BD PrecisionGlide | 305128 | |
Objective XLUMPLFLN20XW | Olympus | NA | https://www.olympus-lifescience.com/en/objectives/lumplfln-w/ |
PDGFRβ-CreERT2 | The Jackson Laboratory | 30201 | |
Polyethylene Tubing, PE10 I.D. 28mm (0.11”) O.D. 61mm (.024”) | BD Intramedic | 427401 | |
Prairie View | Bruker Fluorescence Microscopy | NA | https://www.bruker.com/en/products-and-solutions/fluorescence-microscopy/multiphoton-microscopes/ultima-in-vitro.html |
Ultima In Vitro Multiphoton Microscope | Bruker Fluorescence Microscopy | NA | https://www.bruker.com/en/products-and-solutions/fluorescence-microscopy/multiphoton-microscopes/ultima-in-vitro.html |
Under Tank Heater | Reptitherm U.T.H | E169064 | |
Xylazine (Rompun 20 mg/mL) | Bayer HealthCare | 2169592 |