Burada, nanoakışkan bir cihazda akut olaylar ve üretken HIV-1 enfeksiyonu için tek hücrelerin izlendiği bir protokol sunuyoruz. Görüntüleme verileri virüs konakçısı reseptör etkileşimlerini ve sinyal yolu dinamiklerini tanımlar. Bu, nanoakışkan yüksek verimli boyuna tek hücreli kültür ve görüntülemenin sinyal kinetik ve moleküler etkileşimleri incelemek için ilk yöntemidir.
HIV-1, dünya çapında 37 milyondan fazla insanı etkileyen kronik bir enfeksiyona neden olur. İnsan immün yetmezlik virüsü (HIV) ile yaşayan insanlar antiretroviral tedaviye rağmen kronik inflamasyona bağlı komorbidiite yaşarlar. Bununla birlikte, bu enflamatuar sinyalizasyon tam olarak karakterize edilmiştir. Hücresel sinyal olaylarının aktivasyonu ve aşağı akış gen ekspresyasyonunda erken giriş olaylarının rolü tek hücre düzeyinde yakalanmamıştır. Burada yazarlar, canlı hücre floresan mikroskopisi ilkelerini, hücreleri kullanıcı tarafından özelleştirilmiş zaman kursları üzerinden kültürleyen ve dinamik hücresel süreçlerin yüksek verimli analizine izin veren otomatik bir tek hücreli platforma uygulayan bir yöntemi açıklar. Bu test, HIV-1 enfeksiyonunu hemen takip eden erken olayların tek hücreli canlı floresan mikroskopisini, özellikle virüse maruz kalmaya eşlik eden kalsiyum akınını ve floresan bir muhabir virüsü kullanarak üretken enfeksiyonun gelişmesini izleyebilir. MT-4 hücreleri kalsiyuma duyarlı bir boya ile yüklenir ve nanoakışkan bir cihazda izole kalemlerde kültürlenir. Kültürlü hücrelere HIV-1 muhabir virüsü (HIV-1 NLCI) bulaşır. Nanoakışkan cihazın üzerine yerleştirilmiş bir floresan mikroskobu, akut HIV-1 maruziyetini takiben 8 dakikalık bir zaman diliminde kalsiyum akınını ölçer. HIV-1 üretken enfeksiyonu aynı hücrelerde 4 günlük aralıklarla ölçülür. Bu zaman derslerinden elde edilen görüntüleme verileri, virüs konakçısı reseptör etkileşimlerini ve sinyal yolu dinamiklerini tanımlamak için analiz edilir. Yazarlar, tek hücreli sıralama, kültleştirme, görüntüleme ve yazılım otomasyonu yapabilen yeni bir optofluidik platform kullanarak geleneksel görüntüleme yöntemlerine entegre, ölçeklenebilir bir alternatif sunarlar. Bu tahlil, bir dizi parametreyi ölçerken hücre tipi, agonist veya antagonist etki de dahil olmak üzere çeşitli koşullar altında olayların kinetiğini ölçebilir. Bu, nanoakışkan yüksek verimli boyuna tek hücreli kültür ve görüntüleme için ilk kurulan yöntemdir: Bu teknik, hücresel sinyal kinetiği ve dinamik moleküler etkileşimleri incelemek için geniş ölçüde uyarlanabilir.
Kronik inflamasyon HIV ile ilişkili erken morbiditelerin ve mortalitenin önde gelen bir nedenidir1,2,3. HIV’in enflamatuar sinyali aktive edebildiği birden fazla mekanizma vardır ve son kanıtlar, HIV girişinde kalsiyum-gating adenozin trifosfat (ATP) reseptörleri 3 , 4 , 5 , 6,7 ,8,9,10olan P2X reseptörleri için bir rol olduğunu göstermektedir. Pürinerjik reseptörlerin (P2XR) P2X alt tipi bu iltihabın önemli kolaylaştırıcıları olabilir. Bununla birlikte, HIV-P2XR etkileşimlerinin moleküler mekanizmaları büyük ölçüde bilinmemektedir ve erken ve geç HIV-1 viral yaşam döngüsü adımlarını etkileyebilir. HIV ile ilişkili kronik inflamasyonu yönlendiren yolların ve kinetiklerin tanımlanması, HIV’li insanlar için tedavi seçeneklerinin ilerlemesi için kritik öneme sahiptir.
HIV-1’in P2X reseptörlerini doğrudan acıtırıp acıtmadığını değerlendirmek için P2XR aktivasyonu ve HIV-1 enfeksiyonu paralel olarak ölçülmelidir. P2XR aktivitesi ve HIV-1 enfeksiyonu tahlilleri bağımsız olarak belirlenmiştir: Hücresel kalsiyum akını P2XR aktivasyonunun bir göstergesidir ve HIV-1 üretken enfeksiyonu RNA bolluğu ile ölçülebilir. Fluo-4 kalsiyuma duyarlı boya ile kalsiyum akınının floresan tespiti mümkündür ve HIV-1 enfeksiyonu mCherry floresan muhabir virüsü HIV-NLCI11 , 12,13,14,15ile görselleştirilebilir.
P2X aktivasyonu (akut hücresel kalsiyum akını) ve HIV-1 enfeksiyonu (HIV-1 RNA sentezi) bu göstergeleri farklı zaman ölçeklerinde (dakikalara karşı günler) ortaya çıktığı için, P2XR aktivasyonu ve HIV-1 enfeksiyonunun eşleştirilmiş analizine izin veren yüksek verimli bir yöntem yoktur. Akış sitometrisi gibi standart yüksek verimli deneysel teknikler popülasyon analizine izin verir, ancak tek hücrelerde akut ve boyuna olaylar arasındaki ilişkiyi değerlendiremez. Alternatif olarak, standart floresan mikroskopi ile tek hücreli görüntüleme düşük verimdir. Bu deneysel sınırlamalar, akut ve boyuna hücresel olaylar arasındaki ilişkileri doğrudan ölçmek için yeni, yüksek verimli tekniklere ihtiyaç duymaktadır.
Açıklanan optofluidik sistem, tek hücreli sıralama ve izolasyon, kültleştirme, görüntüleme ve yazılım otomasyonu16 , 17,18,19. Bu sistem, geleneksel görüntüleme yöntemlerinin sınırlamalarına entegre, yüksek verimli bir alternatif sunar. Beacon platformu, bir çipin içerdiği hücreleri destekleyen bir karbondioksit (CO2)ve sıcaklık kontrollü inkübatörden oluşur. Çip, hedeflenen ışığa yanıt olarak elektriksel bir gradyan üreten ışığa duyarlı transistörlere sahiptir. Elde edilen bu dielektrofotik kuvvet, nanoakışkan çip boyunca tek tek hücreleri istenen bölgelere taşımak için kullanılır. Hücreler, tek tek hücreleri fiziksel olarak izole etmek için bir bariyer sağlayan çip üzerindeki kalemlere sıralanır. Çip boyunca sürekli laminer büyüme ortamı akışı, kalemlerden hücre göçlerini önlerken, besin maddelerinin ve deneye özgü reaktiflerin küçük parçacıklı difüzyonunu sağlar. Bir floresan mikroskobu çipin üzerinde bulunur. Yazılım otomasyonu, çipin görüntülerini kullanıcı tarafından belirtilen zaman noktasında yakalamak için kullanılır.
Tüm hücre karakterizasyonu, tek hücreli seçim ve manipülasyon için optofluidik bir sistem kullanılarak gerçekleştirildi. Bu sistem, tek hücreli manipülasyon, tahlil, kültür ve görüntüleme sağlayan entegre mekanik, mikroakışkan ve optik bileşenlerden oluşur. Hücreler, her biri alt nanoliter hacmini tutabilen 3.500 ayrı odadan (kalem) oluşan tek kullanımlık nanoakışkan cihaza yüklenir ve kültürlenir. Hücreler, hafif kaynaklı dielektrofoetik “kafesler” kullanılarak kalemlere yerleştirilecek ve sıcaklık ve CO2kontrollü koşullar altında kültürlenebilir. Mikroakışkanlar, hücre kültürü veya ilaç tedavisi için çip üzerindeki medya veya tamponların perfüzyonunu izin eder. Aktüasyonlu bir iğne, inkübe ve kepenkli kuyu plakalarından hücrelerin ithal ve ihracatına izin verir. Çip alanı, hücresel fenotipleri veya fonksiyonel analizi karakterize etmek için parlak alan ve floresan kanallarda (DAPI, FITC, TRed veya Cy5 dahil) 4x veya 10x büyütmede görüntülenebilir. Tüm sistem, önceden tasarlanmış iş akışları veya özel denemeler için kullanılabilecek yazılım kullanılarak otomatikleştirilmiştir.
HIV-1 enfeksiyonu ve P2XR arasındaki ilişkiler incelenmiştir, ancak bu etkileşimleri paralel olarak doğrudan karakterize etmek için yüksek verimli bir prosedür bildirilmemiştir. Burada yazarlar, akut kalsiyum akınını ve ardından hiv-1 üretken enfeksiyonunu tek hücre düzeyinde izleyerek HIV-P2XR etkileşimlerini incelemek için bir metodolojiyi açıklarlar. Özellikle, bu, tek hücrelerdeki birden fazla hedefin doğrudan, yüksek verimli, uzunlamasına ölçülmesine izin veren yeni bir araç oluşturur.
Tek hücrelerde kalsiyum akını ve HIV-1 üretken enfeksiyonu arasındaki ilişkiyi incelemek için tanımlanan metodoloji, diğer agonistlere veya ilgi çekici antagonistlere yanıt olarak hücre içi kalsiyum kinetiğini incelemek için uyarlanabilir. Hücrelerin görüntüleme için hazırlanması basittir, minimum zaman yoğundur ve reaktifler yaygın olarak kullanılan üreticilerin uygun kitlerinde mevcuttur. Fluo-4 bazlı kalsiyum ölçümü literatürde iyi tanımlanmıştır ve HIV-1 bu platformda çalışmak i…
The authors have nothing to disclose.
Dr. Benjamin Chen ile yaptığımız bilimsel tartışmalar için minnettarız. Bu çalışma K08AI120806 (THS), R01DA052255 (THS ve KB) ve R21AI152833 (THS ve KB) tarafından finanse edildi.
Beacon Optofluidic System | Berkeley Lights | ||
Fetal Bovine Serum | Gibco | ||
FIJI | Open-source software | PMID: 22743772, 22930834 | |
Fluo-4 Calcium Imaging Kit | Thermo Fisher | F10489 | |
HIV-1 NLCINL4-3 | Laboratory of Benjamin Chen | PMID: 28148796 | |
Hyclone Pennecillin Streptomycin solution | GE Healthcare Life sciences | SV30010 | |
MT-4 cells | NIH AIDS Reagent | ARP-120 | |
OptoSelect 3500 chip | Berkeley Lights | ||
Pipettor Tips | Denville Scientific | P3020-CPS | |
Prism 9.0.0 | GraphPad | ||
RPMI-1640 Medium | Sigma-Aldrich | R8758 | |
Serological Pipettes | Fisher Brand | 13-678-11E | |
Tissue Culture Hood | Various models | ||
T75 flasks | Corning | 3073 |