Aquí presentamos un protocolo para la identificación rápida de proteínas producidas por bacterias patógenas secuenciadas genómicamente utilizando espectrometría de masas en tándem MALDI-TOF-TOF y análisis proteómico de arriba hacia abajo con software desarrollado internamente. Los iones proteicos metaestables se fragmentan debido al efecto del ácido aspártico y esta especificidad se explota para la identificación de proteínas.
Este protocolo identifica las proteínas de inmunidad de las enzimas bactericidas: colicina E3 y bacteriocina, producidas por una cepa patógena de Escherichia coli mediante inducción antibiótica, e identificadas por espectrometría de masas en tándem MALDI-TOF-TOF y análisis proteómico de arriba hacia abajo con software desarrollado internamente. La proteína de inmunidad de la colicina E3 (Im3) y la proteína de inmunidad de la bacteriocina (Im-Bac) se identificaron a partir de iones prominentes de fragmentos de tipo b y / o y generados por la escisión de la columna vertebral polipeptídica (PBC) en el lado C-terminal del ácido aspártico, el ácido glutámico y los residuos de asparagina por el mecanismo de fragmentación del efecto del ácido aspártico. El software escanea rápidamente secuencias de proteínas in silico derivadas de la secuenciación del genoma completo de la cepa bacteriana. El software también elimina iterativamente los residuos de aminoácidos de una secuencia de proteínas en caso de que la secuencia de proteínas maduras se trunca. Una sola secuencia de proteínas poseía iones de masa y fragmento consistentes con los detectados para cada proteína de inmunidad. La secuencia candidata se inspeccionó manualmente para confirmar que se podían asignar todos los iones de fragmento detectados. La metionina N-terminal de Im3 fue eliminada post-traslacionalmente, mientras que Im-Bac tenía la secuencia completa. Además, encontramos que solo dos o tres iones de fragmentos no complementarios formados por PBC son necesarios para identificar la secuencia de proteínas correcta. Finalmente, se identificó un promotor (caja SOS) aguas arriba de los genes antibacterianos y de inmunidad en un genoma plásmido de la cepa bacteriana.
El análisis e identificación de proteínas no digeridas por espectrometría de masas se conoce como el análisis proteómico de arribahacia abajo 1,2,3,4. Ahora es una técnica establecida que utiliza ionización por electrospray (ESI)5 y analizadores de masa de alta resolución6,y técnicas sofisticadas de disociación, por ejemplo, disociación por transferencia de electrones (ETD), disociación por captura de electrones (ECD)7,fotodesociación ultravioleta (UV-PD)8,etc.
La otra técnica de ionización suave es la desorción/ionización láser asistida por matriz (MALDI)9,10,11 que se ha utilizado menos ampliamente para el análisis de arriba hacia abajo, en parte porque está acoplada principalmente a analizadores de masa de tiempo de vuelo (TOF), que tienen una resolución limitada en comparación con otros analizadores de masas. A pesar de estas limitaciones, los instrumentos MALDI-TOF y MALDI-TOF-TOF han sido explotados para el análisis rápido de arriba hacia abajo de proteínas puras y mezclas fraccionadas y no fraccionadas de proteínas. Para la identificación de proteínas puras, la desintegración en la fuente (ISD) es una técnica particularmente útil porque permite el análisis de espectrometría de masas (MS) de iones de fragmentos de ISD, así como la espectrometría de masas en tándem (MS / MS) de fragmentos de iones de proteínas que proporcionan fragmentos específicos de secuencia a menudo de los N- y C-termini de la proteína objetivo, análogo a la secuenciación de Edman12,13 . Un inconveniente del enfoque ISD es que, como en la secuenciación de Edman, la muestra debe contener solo una proteína. El único requerimiento de proteína se debe a la necesidad de una atribución inequívoca de iones fragmento a un ion precursor. Si dos o más proteínas están presentes en una muestra, puede ser difícil asignar qué iones fragmento pertenecen a qué iones precursores.
La atribución de iones de fragmentos/iones precursores se puede abordar utilizando MALDI-TOF-TOF-MS/MS. Al igual que con cualquier experimento clásico de MS / MS, los iones precursores se seleccionan en masa / se aíslan antes de la fragmentación, y los iones de fragmento detectados se pueden atribuir a un ion precursor específico. Sin embargo, las técnicas de disociación disponibles para este enfoque se limitan principalmente a la disociación inducida por colisión de alta energía (HE-CID)14 o a la desintegración posterior a la fuente (PSD)15,16. HE-CID y PSD son más eficaces en la fragmentación de péptidos y proteínas pequeñas, y la cobertura de la secuencia puede, en algunos casos, ser limitada. Además, la DSP da como resultado una escisión de la columna vertebral polipeptídica (PBC) principalmente en el lado C-terminal de los residuos de ácido aspártico y glutámico por un fenómeno llamado efecto del ácido aspártico17,18,19,20.
MALDI-TOF-MS también ha encontrado una aplicación de nicho en la identificación taxonómica de microorganismos: bacterias21,hongos22y virus23. Por ejemplo, los espectros de EM se utilizan para identificar bacterias desconocidas en comparación con una biblioteca de referencia de espectros de EM de bacterias conocidas utilizando algoritmos de reconocimiento de patrones para la comparación. Este enfoque ha demostrado ser muy exitoso debido a su velocidad y simplicidad, aunque requiere un cultivo nocturno del aislado. Los iones proteicos detectados por este enfoque (generalmente por debajo de 20 kDa) comprenden una huella dactilar MS que permite la resolución taxonómica a nivel de género y especie y, en algunos casos, en la subespecie24 y el nivel de cepa25,26. Sin embargo, sigue siendo necesario no solo clasificar taxonómicamente los microorganismos potencialmente patógenos, sino también identificar factores específicos de virulencia, toxinas y factores de resistencia a los antimicrobianos (AMR). Para lograr esto, la masa de péptidos, proteínas o moléculas pequeñas se mide por EM y posteriormente se aísla y fragmenta por EM / EM.
Las bacterias patógenas a menudo transportan piezas circulares de ADN llamadas plásmidos. Los plásmidos, junto con los profagos, son un vector importante de transferencia horizontal de genes entre bacterias y son responsables de la rápida propagación de la resistencia a los antimicrobianos y otros factores de virulencia a través de las bacterias. Los plásmidos también pueden portar genes antibacterianos (AB), por ejemplo, colicina y bacteriocina. Cuando estos genes se expresan y las proteínas se secretan, actúan para desactivar la maquinaria de traducción de proteínas de las bacterias vecinas que ocupan el mismo nicho ambiental27. Sin embargo, estas enzimas bactericidas también pueden representar un riesgo para el huésped que las produjo. En consecuencia, un gen es co-expresado por el huésped que inhibe específicamente la función de una enzima AB y se conoce como su proteína de inmunidad (Im).
Los antibióticos dañinos para el ADN como la mitomicina-C y la ciprofloxacina se utilizan a menudo para inducir la respuesta SOS en la E. coli productora de toxina Shiga (STEC) cuyo gen de la toxina Shiga(stx) se encuentra dentro de un genoma de profagos presente en el genoma bacteriano28. Hemos utilizado previamente la inducción antibiótica, MALDI-TOF-TOF-MS/MS, y el análisis proteómico de arriba hacia abajo para detectar e identificar tipos y subtipos stx producidos por las cepas STEC29,30,31,32. En el trabajo anterior, la cepa RM7788 de STEC O113:H21 se cultizó durante la noche en medios de agar suplementados con mitomicina-C. Sin embargo, en lugar de detectar la subunidad B anticipada de Stx2a en m/z ~7816, se detectó un ion proteico diferente en m/z ~7839 y se identificó como una proteína hipotética codificada por plásmidos de función desconocida33. En el trabajo actual, identificamos dos proteínas AB-Im codificadas en plásmidos producidas por esta cepa utilizando inducción de antibióticos, MALDI-TOF-TOF-MS / MS, y análisis proteómico de arriba hacia abajo utilizando un software independiente desarrollado para procesar y escanear secuencias de proteínas in silico derivadas de la secuenciación del genoma completo (WGS). Además, se incorporó al software la posibilidad de modificaciones posteriores a la traducción (PTM) que impliquen truncamiento de secuencia. Las proteínas de inmunidad se identificaron utilizando este software a partir de la masa medida del ion proteína madura y los iones de fragmento específicos de secuencia de PBC causados por el efecto del ácido aspártico y detectados por MS / MS-PSD. Finalmente, se identificó un promotor aguas arriba de los genes AB/Im en un genoma de plásmido que puede explicar la expresión de estos genes cuando esta cepa está expuesta a un antibiótico dañino para el ADN. Partes de este trabajo se presentaron en la Reunión y Exposición Virtual de otoño de 2020 de la National American Chemical Society (17-20 de agosto de 2020)34.
Consideraciones sobre el protocolo
Las principales fortalezas del protocolo actual son su velocidad, simplicidad de preparación de muestras y uso de un instrumento que es relativamente fácil de operar, entrenar y mantener. Aunque el análisis proteómico de abajo hacia arriba y de arriba hacia abajo por cromatografía líquida-ESI-HR-MS es omnipresente y muy superior en muchos aspectos al de arriba hacia abajo por MALDI-TOF-TOF, requieren más tiempo, mano de obra y experiencia. La complejidad de lo…
The authors have nothing to disclose.
El software Protein Biomarker Seeker está disponible gratuitamente (sin costo) poniéndose en contacto con Clifton K. Fagerquist en clifton.fagerquist@usda.gov. Deseamos agradecer el apoyo a esta investigación por parte de ARS, USDA, cris grant: 2030-42000-051-00-D.
4000 Series Explorer software | AB Sciex | Version 3.5.3 | |
4800 Plus MALDI TOF/TOF Analyzer | AB Sciex | ||
Acetonitrile Optima LC/MS grade | Fisher Chemical | A996-1 | |
BSL-2 biohazard cabinet | The Baker Company | SG403A-HE | |
Cytochrome-C | Sigma | C2867-10MG | |
Data Explorer software | AB Sciex | Version 4.9 | |
Focus Protein Reduction-Alkylation kit | G-Biosciences | 786-231 | |
GPMAW software | Lighthouse Data | Version 10.0 | |
Incubator | VWR | 9120973 | |
LB Agar | Invitrogen | 22700-025 | |
Luria Broth | Invitrogen | 12795-027 | |
Lysozyme | Sigma | L4919-1G | |
Microcentrifuge Tubes, 2 mL, screw-cap, O-ring | Fisher Scientific | 02-681-343 | |
MiniSpin Plus Centrifuge | Eppendorf | 22620207 | |
Mitomycin-C (from streptomyces) | Sigma-Aldrich | M0440-5MG | |
Myoglobin | Sigma | M5696-100MG | |
Shaker MaxQ 420HP Model 420 | Thermo Scientific | Model 420 | |
Sinapinic acid | Thermo Scientific | 1861580 | |
Sterile 1 uL loops | Fisher Scientific | 22-363-595 | |
Thioredoxin (E. coli, recombinant) | Sigma | T0910-1MG | |
Trifluoroacetic acid | Sigma-Aldrich | 299537-100G | |
Water Optima LC/MS grade | Fisher Chemical | W6-4 |