יחס אות לרעש של נתונים הוא אחד השיקולים החשובים ביותר בביצוע מדידות עקיפה של קרני רנטגן ממיקרו-קריסטלים. קו הקרן VMXm מספק סביבה עם רעש נמוך ומיקרואורגניזם לניסויים כאלה. כאן, אנו מתארים שיטות הכנה לדוגמה עבור microcrystals הרכבה וקירור עבור VMXm וקווי קרן קריסטלוגרפיה מיקרומוקולריים אחרים.
הרכבה של מיקרוקריסטלים (<10 מיקרומטר) עבור קריו-קריסטלוגרפיה אחת קריסטל מציג אתגר לא טריוויאלי. שיפורים באיכות הנתונים נצפו עבור microcrystals עם התפתחות של אופטיקה קו קרן, יציבות קרן וגודל קרן משתנה התמקדות מתת מיקרון, כגון בקו הקרן VMXm במקור אור יהלום1. שיפורים נוספים באיכות הנתונים יקבלו באמצעות שיפורים בסביבה מדגם והכנת מדגם. מיקרוקריסטלים מטבעם יוצרים עקיפה חלשה יותר, ולכן שיפור האות לרעש הוא המפתח לאיסוף נתוני עקיפה איכותיים של קרני רנטגן ויגיע בעיקר מהפחתות ברעשי הרקע. מקורות עיקריים של רעשי רקע רנטגן בניסוי עקיפה הם מהאינטראקציה שלהם עם נתיב האוויר לפני ואחרי הדגימה, פתרון התגבשות עודף המקיף את המדגם, נוכחות של קרח גבישי ופיזור מכל מכשור קו קרן אחר או חלונות רנטגן. קו הקרן VMXm כולל מכשור ופרוטוקול הכנה לדוגמה כדי להפחית את כל מקורות הרעש האלה.
ראשית, סביבת דגימה בריק ב- VMXm מסירה את נתיב האוויר בין מקור רנטגן לדגימה. לאחר מכן, פרוטוקולי הכנה לדוגמה עבור קריסטלוגרפיה macromolecular ב- VMXm להשתמש במספר תהליכים וכלים המותאמים CryoTEM. אלה כוללים רשתות נחושת עם סרטי תמיכה בפחמן חורי, סופג אוטומטי ורובוטיקה קירור צוללת עושה שימוש באתאן נוזלי. כלים אלה מאפשרים הכנת מאות מיקרו-קריסטלים ברשת קריומטם אחת עם נוזל מינימלי סביב על תמיכה ברעש נמוך. הם גם למזער את היווצרות של קרח גבישי מכל נוזל שנותר סביב הגבישים.
אנו מציגים את התהליך להכנת והערכה של איכות מיקרוקריסטלים חלבון מסיס באמצעות אור גלוי סורק מיקרוסקופיית אלקטרונים לפני הרכבה הדגימות על קו הקרן VMXm לניסויי עקיפה קרני רנטגן. אנו גם נספק דוגמאות של דגימות באיכות טובה, כמו גם אלה הדורשים אופטימיזציה נוספת ואסטרטגיות לעשות זאת.
מחסום מרכזי לקביעת מבנים ברזולוציה גבוהה של מולקולות ביולוגיות על ידי קריסטלוגרפיה מקרומולקולרית (MX) נשאר הייצור של גבישים מפוזרים היטב בגודל נוח. ישנן אסטרטגיות רבות להשגת מטרה זו מעיצוב מבנה גן חלבון רקומביננטי דרך חיפושי מטריצה דלילה גדולים אחר קוקטיילים כימיים שעשויים ליצור גבישים ראשוניים2. עבור האחרון, זה לעתים קרובות המקרה כי קריסטלוגרף יצטרך לייעל כל להיטים ראשוניים כדי להשיג גבישים עם איכות עקיפה מספיק וגודל עבור מחקרים קביעת מבנה3. למרות אפשרויות אלה, ייתכן שמולקולות מטרה מסוימות לעולם לא ייצרו גדולים (>10 מיקרומטר), גבישים מנטרלים היטב וכתוצאה מכך הקריסטלוגרף חייב להתמיד עם המיקרו-קריסטלים שלהם והאתגרים שדגימות כאלה מציבות. אלה כוללים הרכבה מתאימה והגנה על הקריו, ניהול עקיפה חלשה יותר מטבעה ורגישות מוגברת לקרינה. מיקרוקריסטלים נוצרים מפחות תאים ומולקולות יחידה מאשר גבישים גדולים יותר וככזה, עקיפה אינה מוגברת באותה מידה לעומת גבישים גדולים יותר, וכתוצאה מכך עוצמות עקיפה חלשות מטבען. חשוב כי אות הרקע אינו להסוות השתקפויות אלה, במיוחד ברזולוציה גבוהה יותר שבו עוצמות השתקפות חלשות ניתן לאבד4. בנוסף, microcrystals רגישים יותר לנזקי קרינה ולמרות רישום עקיפה בטמפרטורות חנקן נוזלי5, ייתכן שלא ניתן יהיה לאסוף נתונים מלאים מגביש אחד, מה שהופך את הצורך לאסוף נתונים ממספר גדול מאוד של גבישים כדי לייצר ערכת נתונים מלאה אחת6.
הזמינות הגוברת של לייזרים אלקטרונים ללא קרני רנטגן (XFELs) והאבולוציה של שיטות קריסטלוגרפיה סדרתיות (SFX)7 סיפקו נתיבים לאיסוף נתונים ממיקרו-קריסטלים קטנים יותר. עם זאת, אלה שיטות מסירת מדגם מותאמות, הדורשות כמות משמעותית של חומרה ומומחיות תוכנה, שבהן הניסויים מוגבלים לטמפרטורת החדר ובדרך כלל צריכת הדגימה גבוהה (מאות מיקרוליטרים) ועדיין עשויות לדרוש מיטוב נוסף8. ככזה, פרויקטים שבהם ניתן לבצע רק כמות מוגבלת של מיקרו-קריסטלים אינם מתאימים ל- SFX.
בינתיים, טכנולוגיית קו הקרן סינכרוטרון בעשורים האחרונים התקדמה לייצר קורות קטנות ויציבות יותר9 עם זוהר שאיפשר איסוף נתונים מגבישים קטנים יותר10,11. קווי קרן מיקרופוקוס כגון FMX ב- NSLS-II ו- I24 במקור אור היהלום הצליחו לקבוע מבנים חדשניים מגבישים עם ממדים מרביים של ~ 3 מיקרומטר12 ולהדגים את היכולת לאסוף נתונים שמיש מגבישים קטנים עוד יותר בגודל ~ 1 מיקרומטר13. קו הקרן חייב להיות מוגדר במדויק, עם אופטיקה מצוינת ברזולוציה גבוהה על ציר צפייה, כדור מינימלי של בלבול לסיבוב מדגם וציר סיבוב מיושר בדיוק כי הוא בקנה אחד עם קרן הרנטגן. חשוב להתאים באופן הדוק את פרופיל קרן הרנטגן לנפח הגביש ולהבטיח שהקריסטל מיושר במדויק בקרן הרנטגן – אתגר עבור גבישים <5 מיקרומטר14. עמידה בתנאי ניסוי אלה בקו הקרן חיונית להקלטת הנתונים האיכותיים ביותר ממיקרו-קריסטלים.
ההיבט הנותר ואולי החשוב ביותר של איסוף נתונים ממיקרו-קריסטלים הוא הצגת הגביש לקרן הרנטגן. מיקרוקריסטלים הותקנו לעתים קרובות על תושבות דגימת מיקרומש, המיוצרות מפולימיד, חומר פיזור קרני רנטגן נמוך עם פתחים קטנים כמו 10 מיקרומטר15,16. רשת הפולימיד מותקנת על סיכה סטנדרטית המוגדרת לבסיס SPINE מגנטי, מה שהופך אותה לתואמת לרוב קווי הקרן MX17. הר הרשת משמש לדגי גבישים מסירת ההתגבשות לעתים קרובות בעקבות אותו הליך כמו הרכבה על גבישי 100 מיקרומטר באמצעות הרכבה בסגנון לולאה סטנדרטית. בעוד הגבישים עשויים להיות מופצים על פני הרשת, חיסרון מרכזי הוא כי נפח גדול יחסית של נוזל יכול להיות נישא על ידי הרשת ואת הסיכה בעת הקציר (איור 1C,D). נפח זה של נוזל, שיכול להיות גדול פי כמה מהגבישים עצמם, יתרום לרעשי רקע כאשר הוא מואר בצילומי רנטגן. פיזור רקע זה יכול להיות אפילו חזק יותר אם הנוזל יוצר קרח גבישי במהלך קירור הבזק, ומפחית את יחס האות לרעש של עוצמות חלשות כבר ברזולוציות של עקיפה של קרח. לכן, זה המפתח כי נוזל עודף מוסר מן המדגם, כדי להבטיח כי כל האותות האפשריים ניתן להקליט. אתגר זה הוא אפילו גדול יותר במקרה של גבישי חלבון ממברנה שנוצר בתוך שלב מעוקב השומנים (LCP), שבו LCP מייצר פיזור רקע חזק והוא גם קשה להסיר מסביב גבישים 18.
קו הקרן החדש של מיקרופוקוס קריסטלוגרפי (VMXm) ב-Diamond Light Source מספק את התנאים שבהם ניתן לאסוף נתונים מגבישים שגודלם עשוי להיות קטן ממיקרון. קו הקרןתוכנןלספק פרופיל קרן בגודל 0.3 מיקרומטר x 0.5 מיקרומטר (VxH) 1 , גוניומטר עם כדור של בלבול לא יותר מ 60 ננומטר וסביבת מדגם vacuo. תכונות עיצוב אלה של תחנת הקצה VMXm למזער את הדור של רעש רנטגן רקע על ידי מנגנון קו הקרן במהלך איסוף נתונים עם המקור הגדול ביותר שנותר של רקע שנוצר על ידי מדגם14.
שיטות הכנה ספציפיות לדוגמה המיועדות לקו הקרן VMXm מספקות הזדמנות להפחית רקע זה ולשפר עוד יותר את האות לרעש של נתוני עקיפה, תוך מקסום איכות הנתונים שניתן לרשום ממיקרו-קריסטלים המודדים <10 מיקרומטר. רבות מהדרישות המתוארות כאן לעקיפת רקע נמוך ממיקרו-קריסטלים נפוצות גם במיקרוסקופיית אלקטרונים שידור קריוגנית (cryoTEM)19 וחקיפת אלקטרונים מיקרוקריסטליים (microED)20. כתוצאה מכך, רבים מהכלים שכבר פותחו להכנת דגימות cryoTEM מתאימים, עם כמה התאמות, להכנת מיקרוקריסטלים. בהכנת דגימות עבור cryoTEM חלקיק יחיד, החלקיקים הנחקרים מוטבעים בשכבות דקות מאוד (בדרך כלל <100 ננומטר) של קרח זגוכי, כך שאלקטרונים מסוגלים לשדר דרך המדגם. השכבה האחודה הדקה מושגת על ידי פירוק נוזל עודף ו- vitrification של המדגם מושגת על ידי קירור מהיר של המדגם (~ 104 K s-1)21 באמצעות צלילה לתוך אתאן נוזלי המוחזק ~ 93 K22. לעומת זאת, חנקן נוזלי, כפי המשמש באופן שגרתי להכנת מדגם MX, הוא קריוגן יעיל פחות מאשר אתאן ויש לו נטייה גדולה יותר להיווצרות קרח גבישי בתוך מדגם21. היווצרות של קרח גבישי, אשר יכול לבזות עקיפה וליצור רעשי רקע, הוא בדרך כלל מקל באמצעות שימוש של תרכובות מגן קריו23. פולימרים במשקל מולקולרי נמוך כגון פולי-אתילן גליקול (PEG) 400 ומתיל-2,4-פנטנדיול (MPD), סוכרים, שמנים או מלחים רוויים ניתן להוסיף אליקואט של פתרון התגבשות בריכוזים נמוכים24– אין פתרון ‘גודל אחד מתאים לכולם’ לבחירת קריו-הגנה המתאימה ביותר וזה דורש לעתים קרובותאופטימיזציה 25 . הגביש גם עובר מניפולציות מרובות במהלך תהליך הקציר וההגנה מפני הקפאה אשר עלול לגרום נזק לקריסטל, ההזדמנות להשתמש באתאן נוזלי מאפשרת את השמטת צעד זה ומסייעת להגן על שלמות הגביש.
בעוד אתאן נוזלי הוא קריוגן יעיל עבור microcrystals (<10 מיקרומטר) בשל הרזון של המדגם, ישנן שיטות חלופיות למניעת היווצרות קרח גבישי, במיוחד בגבישים גדולים יותר, כולל הפחתת תכולת המים של הגביש על ידי שימוש בסביבה לחה מבוקרת היטב26, או באמצעות פתילת נוזל עודף הרחק הלולאה ואת פני השטח של הגביש27 עם זאת, אלה שוב דורשים מניפולציה גדולה יותר של המדגם., השימוש בכתמים אוטומטיים ומקפיא לצלול עם אתאן נוזלי, כמו cryoTEM, יחד להסיר פתרון התגבשות עודף ולספק אמצעי להבהב microcrystals מגניב באופן מבוקר תוך ניסיון למזער את המניפולציה.
כאן, אנו מציגים פרוטוקול שניתן להשתמש בו לא רק על ידי שני המשתמשים בקו הקרן VMXm ובקווי קרן מיקרופוקוס אחרים כדי לאסוף נתוני עקיפה גבוהים של אותות לרעש, אלא עשויים גם להיות שימושיים למי שמכין דגימות קריסטל חלבון מסיסות וממברנה מבוססת דטרגנט לניסויים במיקרו-ED. בעוד כל המתקנים כדי להכין ולהעריך דגימות זמינים ב- VMXm, מעבדות ביולוגיה מבנית רבות מצוידות יותר ויותר להכנת מדגם cryoTEM. כתוצאה מכך, אנו מדמיינים כי משתמשים מסוימים עשויים לרצות להשתמש במתקנים שלהם כדי להכין את הדגימות שלהם עבור beamtime ב- VMXm.
פרוטוקול זה מדגים כיצד כלים מהכנת מדגם cryoTEM יכולים לשמש להכנת מיקרוקריסטלים לניסויי עקיפה של קרני רנטגן בקווי קרן מיקרופוקוס. מכשור קו קרן סטנדרטי מרוכז סביב מדגם רכוב על סיכה ובעוד נעשו מאמצים לספק תמיכה לדוגמה על תושבות אלה עבור microcrystals, הם לעתים קרובות מאתגר לטעון עם מדגם תוך הקפדה כי האות הגבוה ביותר לרעש מושגת (איור 1C,D). רבות מהדגימות הללו עשויות גם לדרוש אופטימיזציה של תנאי ההגנה מפני הקפאה כדי להבטיח את המדגם הוא הזגום. שיטת הקפאת הצלילה מספקת דרך חוזרת להסיר נוזלים עודפים ולקרר את המדגם בקריוגן יעיל(איור 1A,B). בעוד שהרשת יכולה להיות מותקנת על קו קרן סטנדרטי עם הרכבה על פינים על פינצטה, מחזיקי דגימת VMXm תוכננו במיוחד כדי לקבל רשתות ולהחזיק אותם מתחת לטמפרטורת המעבר מזכוכית בסביבת ואקום באמצעות קירור מוליך. הסביבה לדוגמה של VMXm מאפשרת איסוף נתוני רקע נמוך, כאשר המדגם הוא המקור הנותר של הרקע, ומספק מיקרואורגניזמים שניתן להשתמש בו כדי להתאים גבישים עם ממדים פחות מ 10 מיקרומטר. שיטת הכנת מדגם זו יכולה לשמש גם להכנת nanocrystals עבור עקיפה אלקטרונים שבו יש גם דרישה נוזל עודף מעט מאוד מדגם הזגוגית בשל חדירה חלשה של אלקטרונים. בעוד רשתות cryoTEM שבריריות, אלה מנוסים בקציר של גבישים בלולאות יסתגלו במהירות לטיפול ברשתות. עם כמות קטנה של ניסיון, כמה רשתות יאבדו במהלך שלבי הכתם, ההקפאה והעמסה של הפרוטוקול. עם זאת, שלבי האופטימיזציה חיוניים להצלחה זו והכנה זהירה יפחיתו את הסיכויים לאבד גבישים או להפחית את שלמות הגביש.
רשתות CryoTEM מספקות הרכב יחיד גדול יחסית שיכול להכיל מאות רבות של גבישים, ובכך לשפר את התפוקה שבה ניתן רק לתעד טריז קטן של נתוני עקיפה. רשת אחת עשויה גם לספק מספיק גבישים כדי לקבוע את מבנה החלבון, במיוחד בגבישים של סימטריה גבוהה. כאשר רק טיפת התגבשות אחת או שתיים בודדות יצרו מיקרוקריסטלים, ניסיון כתמים של מצב התגבשות לבד יכול לעזור להבטיח כי כאשר microcrystals הם blotted, הזמנים המשמשים קרובים ככל האפשר לאלה הדרושים כדי ליצור דגימות באיכות טובה ראשונית. תומכי סרט הפחמן אינם נראים לצילומי רנטגן וזמינים עם מרווח חורים שונה, אשר ניתן להשתמש בהם כדי להתאים למורפולוגיה מסוימת. בדרך כלל אנו משתמשים בסרטי תמיכה עם 2 חורי מיקרומטר בריווח של 2 מיקרומטר, אך חורים קטנים יותר עם מרווח גדול יותר עשויים להתאים יותר לגבישים הקטנים מ- 2 מיקרומטר. סרטי תמיכה אחרים כגון אלה עם חורי 1 מיקרומטר עם מרווח של 4 מיקרומטר, כמו גם סרטי תמיכה עם חורים בצורת שונה זמינים, כל אלה ישפיעו על זמן הכתם. רשת רשת מרובעת בגודל של 200 (200 ריבועים לאינץ’) מספקת גם מספיק מקום (~ 100 מיקרומטר) בין מוטות רשת הנחושת, כך שקרן הרנטגן אינה מקיימת אינטראקציה חזקה עם הנחושת תוך מתן תמיכה מבנית מספקת לסרט הפחמן העמוס בגבישים. השימוש באתאן נוזלי שולל את הצורך cryoprotectants, אשר בתורו מפחית את הדרישה על נפח המדגם כי היה בשימוש באופטימיזציה של תנאים cryoprotectant.
הפרמטרים העיקריים שיש למטב במהלך התהליך הם זמני הכתם ודילול המדגם. זמני הכתמים צריכים להיות ארוכים מספיק כדי לצפות בהשפעה ‘קופצת’ על פני כל הרשת לפני הקפאת הצלילה. סופג מעל יכול לגרום להתייבשות של הגבישים, עם זאת, שליטה על הלחות בתוך תא המדגם משמש כדי למזער את האפקט הזה. אמנם הוא הציע כי לחות יחסית של 90% בשימוש, כמה דגימות עשוי להפיק תועלת אופטימיזציה של הלחות. הלחות עשויה להשפיע על יעילות הכתם של נייר סופג אשר יכול לאט להיות רווי במים. בנוסף, בקרת לחות בתוך תא המדגם יכול לשמש כדי לשפר את איכות עקיפה של גבישים30. מומלץ לבצע שינויים קטנים (<5%) בלחות לפני בדיקת תקינות עקיפה כדי להבטיח שאיכות עקיפה לא תיפגע.
אופטימיזציה של דגימות לא יקרות יכולה להתבצע באמצעות מיקרוסקופ אור במקום SEM. למרות הרסני, זה שימושי להערכת צפיפות הגבישים על פני הרשת ולאפשר קבלת החלטות אם מדגם צריך להיות מדולל או מרוכז כדי לפזר טוב יותר גבישים על פני הרשת. שלב זה הוא שימושי ביותר כאשר יש מספר רב של גבישים זמינים במיוחד דגימות מרוכזות מאוד. יש להימנע מהתנגשות של גבישים (איור 3),שכן אמנם אין בעיה משמעותית אם שני גבישים מוארים בו זמנית במהלך איסוף הנתונים6,אך סביר להניח שיהיה נפח גדול יותר של נוזל המקיף את הגוש, ובכך להפחית את האות לרעש(איור 5). בעוד שניתן לצפות בהפרזות גדולות של נוזל ברחבי העולם על פני הרשת באמצעות מיקרוסקופ אור, הערכת נפח הנוזל המקיף את microcrystals ואת נוכחותו של קרח גבישי יכול להיעשות רק באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים מצויד מערכת העברת ואקום קריוגני שלב. לפעמים, לאחר יישום הגבישים לרשת ולפני סופג מתרחשת, גבישים בפתרונות צמיגות נמוכה עשויים להתיישב לאורך קצה אחד של הרשת. גילינו שהוספת ריכוז סופי של 50% של אתילן גליקול יכולה להאט את תנועת הגבישים דרך הטיפה, להבטיח חלוקה טובה יותר של מיקרוקריסטלים ברחבי הרשת, כמו גם לספק שליטה רבה יותר על הכתמים על ידי הגדלת זמן ההכתמה (איור 3D).
כמה פתרונות התגבשות המכילים סוכני מזרז צמיג כגון PEGs במשקל מולקולרי גבוה יכול להוכיח מאתגר כתם, הדורש יותר ויותר פעמים סופגות ארוכות (>10 s). במקרים כאלה, זה יכול להיות מועיל כדי להפחית את נפח הנוזל המופקד על הגב של הרשת, כמו גם את נפח של הגביש המכיל פתרון לצד סרט התמיכה של הרשת. אסטרטגיות כגון שימוש 2 שכבות של נייר סופג או סיבי זכוכית עשוי גם לסייע blotting במקרים קשים אלה31.
בעוד צינור זה מתאים גבישי חלבון מסיסים, אלה שנוצרים במדיומים צמיגים מאוד כגון חלבוני ממברנה ב LCP מציגים אתגר אחר שעבורו פרוטוקול זה אינו מתאים. עם זאת, אסטרטגיות מתגבשות להכנת גבישי LCP על רשתות cryoTEM עבור microED הכוללים הפחתת הצמיגות של הדגימות על ידי גרימת שינוי פאזה LCP. הדבר מאפשר להחיל את הדגימות על רשתות באופן דומה לזה המתואר במאמר זה. לבסוף, המדגם יכול להיות כרסום עם קרן יון ממוקדת כדי להסיר עודף חומר שאינו קריסטל32,33,34.
בסך הכל, צינור זה ייקח בדרך כלל 1-2 שעות (כולל זמן התקנת ציוד) לעקוב מן המדגם המגיע VMXm כדי לספק רשתות ממוטבות עם דגימות מפוזרות היטב, vitrified, בהתאם לזמינות מדגם, ריכוז הגבישים ואת הצמיגות של פתרון התגבשות. שיטות אלה כבר הועסקו בהצלחה להכנת microcrystals לניסויי עקיפה קרני רנטגן לחקור נזקי קרינה על microcrystals שבו נפח מינימלי של נוזל סביב המדגם היה חיוני28,35. יש לציין כי הפרוטוקול יכול להיות מיושם על כל דגימות microcrystal מסיס, לא רק כדי לנטרל היטב דגימות שכבר עברו אופטימיזציה. ניסוי התגבשות המייצר חומר microcrystalline באופן מסורתי יהיה יעד לאופטימיזציה במטרה להשיג גבישים גדולים יותר, עם זאת, שיטת הכנת מדגם זו ואת היכולות של VMXm עשוי לאפשר איסוף נתונים נאותים מדגימות כאלה ללא אופטימיזציה נוספת. לחלופין, אם דגימות microcrystalline כאלה diffract בצורה גרועה, הנתונים שנאספו מ- VMXm באמצעות שיטת הכנה מדגם זה עדיין יכול לשמש מדריך שימושי לאופטימיזציה נוספת של תנאי התגבשות. הכלים להכנת רשתות, כולל פריקת זוהר והקפאת צלילה זמינים כעת באופן נרחב במכוני מחקר המצוידים בניסויי cryoTEM ויהיו זמינים למשתמשים רבים המאפשרים להם להכין דגימות לקראת זמן הקרן ב- VMXm.
The authors have nothing to disclose.
המחברים רוצים להודות לג’רמי קיוון, ג’ון גריימס, ג’ף סאטון ודייב סטיוארט, אוניברסיטת STRUBI של אוקספורד ורייצ’ל בולטון, אוניברסיטת סאות’המפטון על שסיפקו באדיבות דוגמאות מיקרוקריסטליות לפיתוח והדגמה של שיטות הכנה לדוגמה עבור קו הקרן VMXm בנוסף לאפשר הזמנת קו הקורה. המחברים גם רוצים להודות ל- iNEXT-Discovery (מספר פרוייקט 871037) על ההזדמנות והתמיכה בפרסום כתב יד זה.
Automated Cryo-EM plunge freezing instrument | Leica or ThermoFisher | Various | |
Benchtop light microscope with light source | Various | Various | |
Blade/Scalpel | Fisher Scientific | Various | |
CryoTEM Copper 200 mesh grids with carbon support film with 2 µm holes | Quantifoil | N1-C16nCu20-50 | |
CryoTEM grid storage boxes | Agar Scientific | AGG3727 | |
ddH2O | n/a | n/a | |
Ethane gas supply | n/a | n/a | |
Ethylene Glycol | Acros Organics | 146750010 | |
Glass microscope slides | FisherBrand | 12383118 | |
Glass petri dish | FisherBrand | 455732 | |
Glow discharging device | Pelco | 91000S | |
Laboratory wrapping film (Parafilm) | Bemis | HS234526B | |
Large and small, fine forceps | Agar Scientific | Various | |
Liquid nitrogen supply | n/a | n/a | |
Pipette tips | Various | Various | |
Pipetting devices | Various | Various | |
Sealing tape for crystallisation plates. | Molecular Dimensions | MD6-01 | |
Small/medium liquid nitrogen dewars | Spearlab | Various | |
Sprung circlip clipping tool | Subangstrom | SCT08 | |
Whatmann No.1 pre-cut filter paper | Leica | 16706440 |