Summary

Efectos ecotoxicológicos de los microplásticos en el desarrollo de embriones de aves por eclosión sin cáscara de huevo

Published: August 14, 2021
doi:

Summary

Este trabajo introduce un método de eclosión sin utilizar una cáscara de huevo para estudios toxicológicos de contaminantes de partículas como los microplásticos.

Abstract

Los microplásticos son un tipo de contaminante global emergente que representa una gran amenaza para la salud de los animales debido a su absorción y translocación en los tejidos y órganos de los animales. Se conocen los efectos ecotoxicológicos de los microplásticos en el desarrollo de embriones de aves. El huevo de ave es un sistema completo de desarrollo y nutrición, y todo el desarrollo del embrión se produce en la cáscara de huevo. Por lo tanto, un registro directo del desarrollo de embriones de aves bajo el estrés de contaminantes como los microplásticos está altamente limitado por la cáscara de huevo opaca en la eclosión tradicional. En este estudio, los efectos de los microplásticos sobre el desarrollo de embriones de codorniz fueron monitoreados visualmente por eclosión sin cáscara de huevo. Los pasos principales incluyen la limpieza y desinfección de los huevos fertilizados, la incubación antes de la exposición, la incubación a corto plazo después de la exposición y la extracción de la muestra. Los resultados muestran que en comparación con el grupo de control, el peso húmedo y la longitud corporal del grupo expuesto a los microplásticos mostraron una diferencia estadística y la proporción hepática de todo el grupo expuesto aumentó significativamente. Además, se evaluaron los factores externos que afectan la incubación: temperatura, humedad, ángulo de rotación de huevos y otras condiciones. Este método experimental proporciona información valiosa sobre la ecotoxicología de los microplásticos y una nueva forma de estudiar los efectos adversos de los contaminantes en el desarrollo de embriones.

Introduction

La producción de residuos plásticos fue de aproximadamente 6300 Mt en 2015, una décima parte de los cuales se recicló, y el resto se quemó o enterró bajo tierra. Se estima que alrededor de 12.000 Mt de residuos plásticos estarán enterrados bajo tierra para 20501. Con la atención de la comunidad internacional a los residuos plásticos, Thompson propuso por primera vez el concepto de microplásticos en 20042. Los microplásticos (MPs) se refieren a plásticos de partículas pequeñas con un diámetro de partícula inferior a 5 mm. En la actualidad, los investigadores han detectado la presencia ubicua de diputados en la costa de varios continentes, las islas atlánticas, los lagos interiores, el Ártico y los hábitats de aguas profundas3,4,5,6,7. Por lo tanto, más investigadores han comenzado a estudiar los peligros ambientales de los diputados.

Los organismos podrían ingerir diputados en el medio ambiente. Se encontraron MPs en el tracto digestivo de 233 organismos marinos en todo el mundo (incluyendo 100% especies de tortugas, 36% especies de focas, 59% especies de ballenas, 59% especies de aves marinas, 92 tipos de peces marinos y 6 tipos de invertebrados)8. Además, los diputados pueden bloquear el sistema digestivo de los organismos, acumularse y migrar en sus bobies9. Se ha encontrado que los MPs pueden ser transferidos a través de la cadena alimentaria, y su ingesta difiere con los cambios de hábitat, etapa de crecimiento, hábitos de alimentación y fuentes de alimento10. Algunos investigadores informaron de la existencia de diputados en los excrementos de las aves marinas11, lo que significa que las aves marinas actúan como portadoras de los diputados. Además, la ingestión de MPs puede afectar la salud de algunos organismos. Por ejemplo, los diputados pueden enredarse en el tracto gastrointestinal, aumentando así la mortalidad de los cetáceos12.

Los diputados por sí solos tienen efectos tóxicos sobre los organismos, así como efectos tóxicos conjuntos sobre los organismos con otros contaminantes. La ingestión de concentraciones de desechos plásticos relacionadas con el medio ambiente puede perturbar la función del sistema endocrino de los peces adultos13. El tamaño de los microplásticos es uno de los factores importantes que afectan su absorción y acumulación por parte de los organismos14,15. Los plásticos de pequeño tamaño, especialmente los plásticos de tamaño nanosize, son propensos a la interacción con células y organismos con alta toxicidad16,17,18,19. Aunque los efectos nocivos de los microplásticos de tamaño de nanopartícula en los organismos superan el nivel de investigación actual, la detección y cuantificación de microplásticos con tamaños inferiores a varios micrómetros, especialmente los submicrón/nanoplásticos en el medio ambiente, sigue siendo un gran desafío. Además, los nanoplásticos también tienen algunos efectos sobre los embriones. El poliestireno puede dañar el desarrollo de embriones de erizo de mar mediante la regulación de perfiles proteicos ygénicos 20.

Para explorar el impacto potencial de los MPs en los organismos, realizamos este estudio. Debido a la similitud entre los embriones de aves y los embriones humanos, generalmente se utilizan en la investigación de biología del desarrollo21, incluyendo angiogénesis y antiangiogénesis, ingeniería de tejidos, implantes de biomateriales y tumores cerebrales22,23,24. Los embriones de aves tienen las ventajas de bajo costo, un ciclo de cultivo corto y fácil operación25,26. Por lo tanto, elegimos embriones de codorniz con un ciclo de crecimiento corto como el animal de experimentación en este estudio. Simultáneamente, podemos observar directamente los cambios morfológicos de los embriones de codorniz expuestos a los MPs durante la etapa de desarrollo embrionario utilizando una tecnología de eclosión sin cáscara de huevo. Los materiales experimentales utilizados fueron el polipropileno (PP) y el poliestireno (PS). Debido a que el PP y la PS27 representan la mayor proporción de tipos de polímeros obtenidos en sedimentos y cuerpos de agua en todo el mundo, los tipos de polímeros más comunes extraídos de organismos marinos capturados son el etileno y el propileno28. Este protocolo experimental describe todo el proceso de evaluación visual de los efectos toxicológicos de las MPs sobre los embriones de codorniz expuestos a MPs. Podemos ampliar fácilmente este método para examinar la toxicidad de otros contaminantes para el desarrollo embrionario de otros animales ovíparos.

Protocol

1. Preparación antes de la exposición Seleccione los huevos de codorniz fertilizados nacidos el mismo día para la prueba de exposición. Seleccione huevos de codorniz con pesos similares. Cada huevo de codorniz fertilizado es de aproximadamente 10-12 g. Limpie completamente todos los huevos de codorniz fertilizados de las heces externas y otros desechos. Esterilizar cada huevo de codorniz fertilizado pre-eclosionado y los huevos a utilizar (Elegir huevos con forma de cáscara si…

Representative Results

Para el análisis de los datos experimentales, se comparó el peso húmedo, la longitud corporal, la longitud del esternón y el cambio del índice hepatosomático entre el grupo control y los 6 grupos experimentales, midiendo y reflejando el crecimiento y desarrollo de los embriones de codorniz desde una perspectiva macro. Detectamos seis embriones normales de la codorniz en cada grupo. Cada embrión alcanzó la etapa requerida de Hamburger y Hamilton (HH). En la Figura 1…

Discussion

Este trabajo proporciona un esquema experimental eficaz para evaluar el desarrollo de embriones de codorniz mediante la detección de los índices básicos de desarrollo. Sin embargo, todavía hay algunas limitaciones a este experimento.

En primer lugar, la mortalidad de los embriones de codorniz en la última etapa de la eclosión es mayor debido a la eclosión sin cáscara. Hay factores artificialmente incontrolables como la destrucción de la proporción normal de proteínas en el proceso …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por proyectos clave de investigación y desarrollo en la Región Autónoma de Xinjiang Uygur (2017B03014, 2017B03014-1, 2017B03014-2, 2017B03014-3).

Materials

 Multi sample tissue grinder Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd. Tissuelyser-24 Grind large-sized plastics into small-sized ones at low temperature
Electronic balance OHAUS corporation PR Series Precision Used for weighing
Fertilized quail eggs Guangzhou Cangmu Agricultural Development Co., Ltd. Quail eggs for hatching without shell
Fluorescent polypropylene particles Foshan Juliang Optical Material Co., Ltd. Types of plastics selected for the experiment
Incubator Shandong, Bangda Incubation Equipment Co., Ltd. 264 pc Provide a place for embryo growth and development
Nanometer-scale polystyrene microspheres Xi’an Ruixi Biological Technology Co., Ltd. 100 nm, 200 nm, 500 nm Types of plastics selected for the experiment
Steel ruler Deli Group 20 cm Used to measure  length
Vertical heating pressure steam sterilizer Shanghai Shenan Medical Instrument Factory LDZM-80KCS-II Sterilize the experimental articles

Referências

  1. Geyer, R., Jambeck, J. R., Law, K. L. Production, use, and fate of all plastics ever made. Science Advances. 3 (7), 5 (2017).
  2. Thompson, R. C., et al. Lost at sea: Where is all the plastic. Science. 304 (5672), 838-838 (2004).
  3. Barletta, M., Lima, A. R. A., Costa, M. F. Distribution, sources and consequences of nutrients, persistent organic pollutants, metals and microplastics in South American estuaries. Science of the Total Environment. 651, 1199-1218 (2019).
  4. Eriksson, C., Burton, H., Fitch, S., Schulz, M., vanden Hoff, J. Daily accumulation rates of marine debris on sub-Antarctic island beaches. Marine Pollution Bulletin. 66 (1-2), 199-208 (2013).
  5. Zhang, C. F., et al. Microplastics in offshore sediment in the Yellow Sea and East China Sea, China. Environmental Pollution. 244, 827-833 (2019).
  6. Obbard, R. W., et al. Global warming releases microplastic legacy frozen in Arctic Sea ice. Earths Future. 2 (6), 315-320 (2014).
  7. Van Cauwenberghe, L., Vanreusel, A., Mees, J., Janssen, C. R. Microplastic pollution in deep-sea sediments. Environmental Pollution. 182, 495-499 (2013).
  8. Wilcox, C., Van Sebille, E., Hardesty, B. D. Threat of plastic pollution to seabirds is global, pervasive, and increasing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (38), 11899-11904 (2015).
  9. Wright, S. L., Thompson, R. C., Galloway, T. S. The physical impacts of microplastics on marine organisms: A review. Environmental Pollution. 178, 483-492 (2013).
  10. Ferreira, G. V. B., Barletta, M., Lima, A. R. A. Use of estuarine resources by top predator fishes. How do ecological patterns affect rates of contamination by microplastics. Science of the Total Environment. 655, 292-304 (2019).
  11. Provencher, J. F., Vermaire, J. C., Avery-Gomm, S., Braune, B. M., Mallory, M. L. Garbage in guano? Microplastic debris found in faecal precursors of seabirds known to ingest plastics. Science of the Total Environment. 644, 1477-1484 (2018).
  12. Baulch, S., Perry, C. Evaluating the impacts of marine debris on cetaceans. Marine Pollution Bulletin. 80 (1-2), 210-221 (2014).
  13. Rochman, C. M., Kurobe, T., Flores, I., Teh, S. J. Early warning signs of endocrine disruption in adult fish from the ingestion of polyethylene with and without sorbed chemical pollutants from the marine environment. Science of the Total Environment. 493, 656-661 (2014).
  14. Mattsson, K., et al. Brain damage and behavioural disorders in fish induced by plastic nanoparticles delivered through the food chain. Scientific Reports. 7, 7 (2017).
  15. Brown, D. M., Wilson, M. R., MacNee, W., Stone, V., Donaldson, K. Size-dependent proinflammatory effects of ultrafine polystyrene particles: A role for surface area and oxidative stress in the enhanced activity of ultrafines. Toxicology and Applied Pharmacology. 175 (3), 191-199 (2001).
  16. Salvati, A., et al. Experimental and theoretical comparison of intracellular import of polymeric nanoparticles and small molecules: toward models of uptake kinetics. Nanomedicine-Nanotechnology Biology and Medicine. 7 (6), 818-826 (2011).
  17. Frohlich, E., et al. Action of polystyrene nanoparticles of different sizes on lysosomal function and integrity. Particle and Fibre Toxicology. 9, 13 (2012).
  18. Bexiga, M. G., Kelly, C., Dawson, K. A., Simpson, J. C. RNAi-mediated inhibition of apoptosis fails to prevent cationic nanoparticle-induced cell death in cultured cells. Nanomedicine. 9 (11), 1651-1664 (2014).
  19. Lehner, R., Weder, C., Petri-Fink, A., Rothen-Rutishauser, B. Emergence of Nanoplastic in the Environment and Possible Impact on Human Health. Environmental Science, Technology. 53 (4), 1748-1765 (2019).
  20. Pinsino, A., et al. Amino-modified polystyrene nanoparticles affect signalling pathways of the sea urchin (Paracentrotus lividus) embryos. Nanotoxicology. 11 (2), 201-209 (2017).
  21. El-Ghali, N., Rabadi, M., Ezin, A. M., De Bellard, M. E. New Methods for Chicken Embryo Manipulations. Microscopy Research and Technique. 73 (1), 58-66 (2010).
  22. Rashidi, H., Sottile, V. The chick embryo: hatching a model for contemporary biomedical research. Bioessays. 31 (4), 459-465 (2009).
  23. Faez, T., Skachkov, I., Versluis, M., Kooiman, K., de Jong, N. In vivo characterization of ultrasound contrast agents: microbubble spectroscopy in a chicken embryo. Ultrasound in Medicine and Biology. 38 (9), 1608-1617 (2012).
  24. Yamamoto, F. Y., Neto, F. F., Freitas, P. F., Ribeiro, C. A. O., Ortolani-Machado, C. F. Cadmium effects on early development of chick embryos. Environmental Toxicology and Pharmacology. 34 (2), 548-555 (2012).
  25. Li, X. D., et al. Caffeine interferes embryonic development through over-stimulating serotonergic system in chicken embryo. Food and Chemical Toxicology. 50 (6), 1848-1853 (2012).
  26. Lokman, N. A., Elder, A. S. F., Ricciardelli, C., Oehler, M. K. Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an In Vivo Model to Study the Effect of Newly Identified Molecules on Ovarian Cancer Invasion and Metastasis. International Journal of Molecular Sciences. 13 (8), 9959-9970 (2012).
  27. Burns, E. E., Boxall, A. B. A. Microplastics in the aquatic environment: Evidence for or against adverse impacts and major knowledge gaps. Environmental Toxicology and Chemistry. 37 (11), 2776-2796 (2018).
  28. Alejo-Plata, M. D., Herrera-Galindo, E., Cruz-Gonzalez, D. G. Description of buoyant fibers adhering to Argonauta nouryi (Cephalopoda: Argonautidae) collected from the stomach contents of three top predators in the Mexican South Pacific. Marine Pollution Bulletin. 142, 504-509 (2019).

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Citar este artigo
Wang, L., Xue, N., Li, W., Wufuer, R., Zhang, D. Ecotoxicological Effects of Microplastics on Bird Embryo Development by Hatching without Eggshell. J. Vis. Exp. (174), e61696, doi:10.3791/61696 (2021).

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