光活性化可能なニューロフィラメントタンパク質を発現するトランスジェニックマウス由来の末梢神経の単一ミリン化軸索におけるニューロフィラメントの軸索輸送を解析する蛍光光活性化法について説明する。
ニューロフィラメントタンパク質ポリマーは、軸索輸送の遅い成分の軸索に沿って、平均速度が0.35~3.5mm/日で移動します。最近まで、この動きの研究は、放射性同位体パルス標識を使用してのみ可能でした, これは、日の時間分解能とミリメートルの空間分解能と神経全体の軸索輸送の分析を可能にします.より高い時間的および空間的分解能を有するインサイチュにおけるニューロフィラメント輸送を研究するために、ニューロンにおける光活性化可能なGFPでタグ付けされたニューロフィラメントタンパク質Mを発現するhThy1-paGFP-NFMトランスジェニックマウスを開発した。ここでは、これらのマウス ex vivoから脛骨神経の単一のミリン化軸索における神経フィラメント輸送を解析するための蛍光光活性化パルスエスケープおよびパルス拡散法について説明する。単離された神経セグメントは、酸素化生理食類を灌流することにより顕微鏡ステージ上に維持され、ディスク共焦点蛍光顕微鏡を紡糸することによって画像化される。バイオレットライトは短軸窓で蛍光を活性化するために使用されます。活性化領域と横回し領域の蛍光は時間の経過とともに分析され、分およびミクロンのオーダーで時間的および空間的解像度を伴うニューロフィラメント輸送の研究が可能になる。数学的モデリングは、結果データから速度、方向バイアス、一時停止行動を含むニューロフィラメント輸送の運動パラメータを抽出するために使用できます。パルスエスケープ法およびパルス拡散法は、他の神経におけるニューロフィラメント輸送を可視化するためにも適応することができる。追加のトランスジェニックマウスの開発により、これらの方法は、軸索中の他の細胞骨格および細胞質タンパク質の軸索輸送を画像化し、分析するためにも使用することができる。
ニューロフィラメントの軸索輸送は、1970年代にラジオアイソトピックパルス標識1によって初めて実証された。このアプローチは 、インビボでのニューロフィラメント輸送に関する豊富な情報を生み出したが、空間的および時間的解像度が比較的低く、通常はミリメートルと最高の日の順序で2.また、ラジオアイソトピックパルス標識は、単一の時間経過を生成するために複数の動物の注入と犠牲を必要とする間接的なアプローチです。1990年代に蛍光タンパク質の発見と蛍光顕微鏡の進歩により、その後、培養ニューロン内のニューロフィラメント輸送を数秒または数分の時間スケールで直接画像化し、マイクロメートル以下の空間分解能を用いて、動きのメカニズムに関するより大きな洞察を得るようになりました3。これらの研究は、軸索中のニューロフィラメントポリマーが微小管運動タンパク質によって推進される微小管トラックに沿って前向きおよび逆行方向の両方で迅速かつ断続的に移動することを明らかにした。しかし、ニューロフィラメントは直径わずか10nmの回折限定構造であり、通常は数十ナノメートルの間だけ隣人と離れている。したがって、ポリマーは、移動ポリマーが隣人から解決できるように、まばらに分布した神経フィラメントを含む培養ニューロン内でのみ追跡することができる4。したがって、現在では、ミエリン軸索のような豊富なニューロフィラメントポリマーを含む軸索中の単一の神経フィラメントを追跡することは不可能である。
蛍光顕微鏡を用いた神経フィラメント豊富軸索におけるニューロフィラメントの軸索輸送を解析するために、培養神経細胞,4,5における神経フィラメントの長期休止挙動を研究するために開発した蛍光光活性化パルスエスケープ法を用いた。4光活性化可能な蛍光ニューロフィラメント融合タンパク質でタグ付けされたニューロフィラメントは、軸索の短いセグメントで活性化され、その後、活性化領域からのそれらのフィラメントの出発速度は、時間の経過に伴う蛍光の減衰を測定することによって定量化されます。このアプローチの利点は、個々のニューロフィラメントポリマーの動きを追跡することなく、数分または数時間の時間スケールで適用することができるニューロフィラメント輸送の集団レベルの分析であるということです。例えば、この方法を用いて、ミエリン化培養6におけるニューロフィラメント輸送の運動を分析した。
最近、ヒトニューロン特異的Thy1プロモーター7の制御下にあるニューロンにおいて、paGFPタグ付きニューロフィラメントタンパク質M(paGFP-NFM)の低レベルを発現するhThy1-paGFP-NFMトランスジェニックマウスの開発について説明した。このマウスは蛍光顕微鏡を用いたその場所でのニューロフィラメント輸送の分析を可能にする。本稿では、2つのアプローチを用いて、これらのマウスから脛骨神経のミエリン軸索におけるニューロフィラメント輸送を分析するための実験的アプローチについて述べた。これらのアプローチの最初は、上記のパルスエスケープ方式です。この方法は、ニューロフィラメントの一時停止挙動に関する情報を生成することができるが、フィラメントが活性化領域を出発する方向に盲目であり、したがって正味方向および輸送速度8の測定を可能にしない。第2のアプローチは、活性化領域からの蛍光の損失だけでなく、蛍光フィラメントが前向きおよび逆行方向の両方で活性化領域を出発する際に蛍光が移動する2つの側面窓における蛍光の一過性増加を分析する新しいパルス拡散法である。どちらのアプローチでも、測定窓における蛍光変化の数学的分析とモデリングを用いて、平均速度、正味方向性および一時停止行動などのニューロフィラメント輸送のパラメータを得ることができる。 図 3 は、これら 2 つのアプローチを示しています。
このプロトコルは、神経の解剖および調製、paGFP蛍光の活性化および画像化、およびImageJ9のFIJI配布パッケージを用いて取得した画像からのニューロフィラメント輸送の定量を示す。それは長い(数cm)であり、分岐しないので、私たちは脛骨神経を使用します。しかし、原理的にpaGFP-NFMを発現する神経は、軸索を損傷することなく解剖し脱整えることができる場合、この技術で使用するのに適している。
後処理時に、主にフラットフィールド補正、画像アライメント、漂白剤補正の間に誤差が導入される可能性が大きいため、パルスエスケープおよびパルス拡散実験の分析には注意が必要です。フラットフィールド補正は、照明の不均一性を補正するために必要であり、その結果、中心から周辺までの視野全体の強度が低下します。不均一性の程度は波長依存であり、したがって、常に実験デ?…
The authors have nothing to disclose.
著者らはポーラ・モンスマに対する共焦点顕微鏡と脛骨神経解剖の指導と支援、内田敦子博士、クロエ・デュガー博士、サナ・チャハンデ博士にマウスの畜産の支援を感謝したいと考えています。この研究の一部は、国立科学財団がIOS1656784をA.Bに助成金を提供することによって支援されました。 IOS1656765からP.J.、国立衛生補助金R01 NS038526、P30 NS104177、S10 OD010383からA.B.N.P.B.へのIOS1656765は、オハイオ州立大学学長の博士研究員プログラムのフェローシップによって支えられました。
14 x 22 Rectangle Gasket 0.1mm | Bioptechs | 1907-1422-100 | inner gasket |
2-deoxy-D-glucose | Sigma | D6134 | |
30mm Round Gasket w/ Holes | Bioptechs | 1907-08-750 | outer gasket |
35 x 10mm dish | Thermo Fisher | 153066 | dissection dishes |
40mm round coverslips | Bioptechs | 40-1313-0319 | |
60mL syringe – Luer-lock tip | BD | 309653 | |
Andor Revolution WD spinning-disk confocal system | Andor | outfitted with Perfect Focus and FRAPPA systems | |
Calcium chloride | Fisher | C79 | |
Coverslips | Fisher | 12-541-B | for fluorescein slide |
D-(+)-glucose solution | Sigma | G8769 | |
Dissecting pins | Fine Science Tools | 26001-70 | |
Dissection forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | fine tipped forceps |
Dissection microscope | Zeiss | 47 50 03 | |
Dissection pan with wax | Ginsberg Scientific | 568859 | |
Dissection scissors | Fine Science Tools | 14061-09 | initial dissection scissors |
FCS2 perfusion chamber | Bioptechs | 060319-2-03 | |
Fluorescein sodium | Fluka | 46960 | |
Inline solution heater | Warner Instruments | SH27-B | |
Laminectomy forceps | Fine Science Tools | 11223-20 | initial dissection forceps |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | |
Microaqueduct slide | Bioptechs | 130119-5 | |
Microscope slides | Fisher | 12-544-3 | for fluorescein slide |
Microscope stage insert | Applied Scientific Instrumentation | I-3017 | |
Objective heater system | Okolab | Oko Touch with objective collar | |
Objective oil – type A | Nikon | discontinued | |
Plan Apo VC 100x 1.40 NA objective | Nikon | MRD01901 | |
Potassium chloride | Fisher | P217 | |
Potassium phosphate | Sigma-Aldrich | P0662 | |
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S6297 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S7653 | |
Sodium iodoacetate | Sigma-Aldrich | I2512 | |
Syringe pump | Sage Instruments | Model 355 | |
Tubing adapter – female | Small Parts Inc. | 1005109 | |
Tubing adapter – male | Small Parts Inc. | 1005012 | |
Tygon tubing | Bioptechs | 1/16" ID, 1/32" wall thickness | |
Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15018-10 | fine scissors |