子宫电穿孔的双倍允许瞄准空间和时间分离的细胞群。该技术可用于在正常条件下使用荧光蛋白可视化这些细胞群之间的相互作用,而且在功能实验后也可用于干扰感兴趣的基因。
在子宫电穿孔是一种体内DNA转移技术,广泛用于研究哺乳动物皮质成基的分子和细胞机制。此过程利用大脑心室,允许引入感兴趣的DNA,并使用一对电极引导遗传物质进入心室内衬的细胞,神经干细胞。这种方法允许研究人员标记所需的细胞和/或操作这些细胞中感兴趣的基因的表达。它有多种应用,包括针对神经元迁移、系系跟踪和斧头路径查找的测定。这种方法的一个重要特点是它的时间和区域控制,允许规避与胚胎杀伤性或缺乏特定的CRE驱动小鼠相关的潜在问题。这项技术的另一个相关方面是,它有助于减少涉及产生新的小鼠线的经济和时间限制,这在研究不同发育年龄时起源于大脑遥远区域的细胞类型之间的相互作用方面变得尤为重要。在这里,我们描述了一个双电镀策略,能够瞄准空间和时间分离的细胞群。通过这种方法,我们可以用选定的荧光蛋白标记不同位置的不同亚型细胞,以可视化它们,和/或者我们可以在适当的时候操纵这些不同细胞表达感兴趣的基因。这一策略增强了子宫电穿孔的潜力,并提供了一个强大的工具,用于研究迁移以建立密切接触的时空和空间分离的细胞群的行为,以及通过xxon投影进行远程相互作用,从而降低时间和经济成本。
大脑皮层是一个非常复杂和复杂的组织结构。为了实现这种程度的组织,皮质投影神经元经历复杂的发育过程,需要其时间生成,迁移到皮质板的最终目的地,以及建立短和远程连接11,2。2长期以来,研究皮质成因的经典方法基于对感兴趣的基因的敲除或敲模模型的使用。然而,这种策略,特别是使用有条件的挖空小鼠,既费时又昂贵,有时在存在遗传冗余或缺乏具体的CRE驱动因素等方面提出了其他问题。试图解决这些问题的方法之一,现在被广泛用于研究皮质发育的方法之一是在子宫电穿孔33,4。4在子宫电穿孔是一种用于体细胞转变的技术,允许在体内瞄准神经干细胞及其后代。该方法可用于通过表达荧光蛋白55、66来标记细胞,用于体内基因操作(即功能测定的增益或丧失)7、8、9,8,用于在体外分离7电质皮质和培养细胞98,8、10。此外,在电体电穿孔中,允许对目标区域进行时间和区域控制。该技术具有多种应用,已广泛应用于研究神经元迁移、干细胞分裂、神经元连通性等学科88、9、11、12。9,11,12
目前的手稿描述了在子宫电穿孔中使用一种称为双质电穿孔的电穿孔变体,用于分析不同时间和空间起源的大脑皮层细胞的相互作用。这些研究在使用鼠型时完成极其复杂,因为它们需要组合使用几种转基因系。本文中描述的协议的一些应用包括研究相邻细胞之间的紧密相互作用,以及通过远程投影研究远程细胞之间的相互作用。该方法要求在子宫电穿孔手术中进行两次独立的手术,在时间和空间上分离,以针对感兴趣的不同细胞群。这种方法的优点是有可能利用野生动物操纵一种或两种神经元的基因功能。此外,这些功能实验可以结合细胞质或膜标记荧光蛋白的表达相结合,以可视化靶细胞(包括树突和斧头)的精细形态,并分析与对照组相比细胞相互作用的可能差异(即仅标记荧光蛋白的细胞)。
此处划定的协议侧重于研究新皮质内的细胞相互作用,但这一策略也可用于研究与可用于子宫电穿孔的外皮质区域的相互作用,如亚皮质或丘脑13、14,14或其他结构中的细胞-细胞相互作用,如小脑15。不同区域的瞄准基于电极的方向和注入DNA的心室(横向、第三或第四)。通过此处描述的策略,我们可以标记大量细胞,这对于评估功能实验中连接/内伸的一般变化非常有用。然而,为了研究连接性的变化,人们可以使用子宫电穿孔的修改版本来获得更稀疏的标签和识别单细胞16。总之,双电镀是一种通用方法,它允许瞄准时空分离的细胞群,并在控制条件下或与功能实验相结合,详细研究它们的相互作用,大大降低了时间和经济成本。
研究大脑皮层等细胞密度高的区域体内细胞相互作用是一项复杂的任务。传统方法,包括使用抗体来标记神经衰弱是不适合的,因为缺乏针对不同细胞群的特定标记。使用转基因鼠模型(特定细胞类型表示荧光蛋白)有助于可视化神经元过程,但这取决于此类模型的可用性。当试图想象两种特定细胞类型之间在感兴趣的基因扰动时相互作用的可能差异时,这项任务就更加复杂了,因为它涉及使用?…
The authors have nothing to disclose.
作者感谢克里斯蒂娜·安德烈斯·卡内尔和瓦伦西亚大学动物护理设施的成员提供技术援助。我们还要感谢伊莎贝尔·法里亚斯和萨克拉门托·费伦的试剂,并与我们分享他们的设备。I.M.W由瓦伦西亚大学(GJIDI/2018/A/221)的加兰迪亚·尤韦尼尔合同供资,D.dA.D由伊斯兰大学(国际大学)部长资助。”FPI-PRE2018-086150″。C.Gil-Sanz 持有西班牙法语省法语省(MICINN) 的拉蒙和卡哈尔赠款(RYC-2015-19058)。这项工作资助了RYC-2015-19058和SAF2017-82880-R(MICINN)。
Ampicillin sodium salt | Sigma-Aldrich | A9518-25G | |
Aspirator tube | Sigma-Aldrich | A5177-5EA | |
Baby-mixter hemostat (perfusion) | Fine Science Tools (FST) | 13013-14 | |
Borosilicate glass capillary | WPI | 1B100-6 | |
Buprenorphine (BUPREX 0,3 mg/ml) | Rb Pharmaceuticals Limited | 921425 | |
CAG-BFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-EGFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-mCherry plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-mtdTomato-2A-nGFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
Confocal microscope | Olympus | FV10i | |
Cotton Swabs | BFHCVDF | ||
Cyanoacrylate glue | B. Braun Surgical | 1050044 | |
Dissecting scope | Zeiss | stemi 305 | |
Dumont Forceps #5 Fine Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11254-20 | |
ECM830 Square Wave Electroporator | BTX | 45-0052 | |
Electric Razor | Oster | 76998 | |
Endotoxin-free TE buffer | QIAGEN | 1018499 | |
Ethanol wipes | BFHCVDF | ||
Extra Fine Graefe Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11150-10 | |
Eye ointment | Alcon | 682542.6 | |
Fast Green dye | Sigma-Aldrich | F7252-5G | |
Fine Scissors | Fine Science Tools (FST) | 14069-09 | |
Fluorescence LEDs | CoolLED | pE-300-W | |
Genopure Plasmid Maxi Kit | Roche | 3143422001 | |
Halsted-Mosquito Hemostats (suture) | Fine Science Tools (FST) | 91308-12 | |
Heating Pad | UFESA | AL5514 | |
Inverted epifluorescence microscope | Nikon | Eclipse TE2000-S | |
Iodine wipes | Lorsoul | ||
Isofluorane vaporizer | Flow-Meter | A15B5001 | |
Isoflurane | Karizoo | 586259 | |
Ketamine (Anastemine) | Fatro Ibérica SL | 583889-2 | |
Kimtech precision wipes | Kimberly-Clark | 7252 | |
LB (Lennox) Agar GEN | Labkem | AGLB-00P-500 | |
LB (Lennox) broth GEN | Labkem | LBBR-00P-500 | |
Low-melting point agarose | Fisher Scientific | BP165-25 | |
Medetomidine (Sedator) | Dechra | 573749.2 | |
Microscope coverslips | Menel-Gläser | 15747592 | |
Microscope Slides | Labbox | SLIB-F10-050 | |
Mounting medium | Electron Microscopy Sciences | 17984-25 | |
Mutiwell plates (24) | SPL Life Sciences | 32024 | |
Mutiwell plates (48) | SPL Life Sciences | 32048 | |
NaCl (for saline solution) | Fisher Scientific | 10112640 | |
Needle 25 G (BD Microlance 3) | Becton, Dickinson and Company | 300600 | |
Orbital incubator S150 | Stuart Scientific | 5133 | |
P Selecta Incubator | J. P. Selecta, s.a. | 0485472 | |
Paraformaldehyde | PanReac AppliedChem | A3813 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma -Aldrich | P4333 | |
Peristaltic perfusion pump | Cole-Parmer | EW-07522-30 | |
Platinum Tweezertrode, 5 mm Diameter | Btx | 45-0489 | |
Reflex Skin Closure System – 7mm Clips, box of 100 | AgnThos | 203-1000 | |
Reflex Skin Closure System – Clip Applyer, 7mm | AgnThos | 204-1000 | |
Ring Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11103-09 | |
Sodium azide | PanReac AppliedChem | 122712-1608 | |
Surgical absorbent pad (steryle) | HK Surgical | PD-M | |
Suture (Surgicryl PGA 6-0) | SMI Suture Materials | BYD11071512 | |
Syringe 1ml (BD plastipak) | Becton, Dickinson and Company | 303172 | |
Tissue Culture Dish 100 x 20 mm | Falcon | 353003 | |
Vertical Micropipette Puller | Sutter Instrument Co | P-30 | |
Vertical microscope | Nikon | Eclipse Ni | |
Vibratome | Leica | VT1200S |