Summary

Undersökning av Xenobiotika metabolism i Salix alba blad via masspektrometri imaging

Published: June 15, 2020
doi:

Summary

Denna metod använder masspektrometri imaging (MSI) för att förstå metaboliska processer i S. alba blad när de utsätts för xenobiotika. Metoden möjliggör rumslig lokalisering av föreningar av intresse och deras förväntade metaboliter inom specifika, intakta vävnader.

Abstract

Metoden som presenteras använder masspektrometri imaging (MSI) för att fastställa den metaboliska profilen av S. alba blad när de utsätts för xenobiotika. Med hjälp av ett icke-riktat tillvägagångssätt identifieras växtmetaboliter och xenobiotika av intresse och lokaliseras i växtvävnader för att avslöja specifika distributionsmönster. Sedan, i silico förutsägelse av potentiella metaboliter (dvs kataboliter och konjugat) från de identifierade xenobiotika utförs. När en xenobiotisk metabolit finns i vävnaden registreras den typ av enzym som är involverad i dess förändring av växten. Dessa resultat användes för att beskriva olika typer av biologiska reaktioner som förekommer i S. alba blad som svar på xenobiotiska ackumulering i bladen. Metaboliterna förutspåddes i två generationer, vilket gör det möjligt att dokumentation av successiva biologiska reaktioner omvandla xenobiotika i bladvävnaderna.

Introduction

Xenobiotika är utbredd över hela världen på grund av mänskliga aktiviteter. Några av dessa föreningar är vattenlösliga och absorberas av jord1, och kommer in i livsmedelskedjan när de ackumuleras iväxtvävnader 2,3,4. Växterna äts av insekter och växtätare, som är rov för andra organismer. Intaget av vissa xenobiotika och deras inverkan på en växts hälsa har beskrivits5,6,7,8, men först nyligen på envävnadsnivå 9. Därför är det fortfarande oklart var eller hur metabolismen av xenobiotika förekommer, eller om specifika växtmetaboliter är korrelerade till xenobiotisk ackumulering i specifikavävnader 10. Dessutom har de flesta forskning förbisett metabolismen av xenobiotika och deras metaboliter i växter, så lite är känt om dessa reaktioner i växtvävnader.

Här föreslås en metod för att undersöka enzymatiska reaktioner i biologiska prover som kan kopplas till vävnadslokalisering av substrat och produkter av reaktionerna. Metoden kan rita den fullständiga metaboliska profilen för ett biologiskt prov i ett experiment, eftersom analysen inte är riktad och kan undersökas med hjälp av anpassade listor över analyter av intresse. Det finns en lista över kandidater som spåras i den ursprungliga datauppsättningen. Om en eller flera analyter av intresse noteras i provet kan den specifika vävnadslokaliseringen ge viktig information om de relaterade biologiska processerna. De analyter som är av intresse kan sedan modifieras i silico med hjälp av relevanta biologiska lagar för att söka efter möjliga produkter/metaboliter. Listan över erhållna metaboliter används sedan för att analysera de ursprungliga uppgifterna genom att identifiera de enzymer som är inblandade och lokalisera reaktionerna i vävnaderna, vilket hjälper till att förstå de förekommande metaboliska processerna. Ingen annan metod ger information om de typer av reaktioner som förekommer i de biologiska proverna, lokaliseringen av intresseföreningarna och deras relaterade metaboliter. Denna metod kan användas på alla typer av biologiskt material när färska och intakta vävnader finns tillgängliga och de föreningar som är av intresse kan joniseras. Det föreslagna protokollet publicerades i Villette et al.12 och beskrivs här för användning av forskarsamhället.

Protocol

1. Provberedning Ta det biologiska provet och håll det antingen friskt och intakt (t.ex. tvinga det inte till ett rör) eller frys det. Det föreslagna protokollet gäller alla typer av fasta biologiska prover (dvs. växtvävnader, animaliska eller mänskliga vävnader) för att lokalisera föreningar i specifika vävnader. Kyl ner en kryomicrotome till -20 °C. Håll provhållaren och bladet vid samma temperatur. Om det behövs bäddar du in objektet i M1-inbäddningsmediet för att bevar…

Representative Results

Detta protokoll tillämpades på färska blad som provtagits från ett S. alba träd utsätts för xenobiotika i miljön. Processen visas i figur 1. Det första steget är att förbereda tunna skivor av det intresseprov som finns. Växtprover är ofta svårare att skära än djurprover, eftersom vävnaderna är heterogena och kan innehålla vatten och/eller luft. Denna svårighet hanteras med hjälp av inbäddningsmedium, som bildar ett homogent block runt provet. Matrisdepositionen…

Discussion

Den kritiska delen av detta protokoll är provberedningen: provet måste vara mjukt och intakt. Skärning är den svåraste delen, eftersom provets temperatur och tjocklek kan variera beroende på vilken typ av prov som studeras. Djurvävnader är vanligtvis homogena och lättare att skära. Växtprover innehåller ofta olika strukturer och är därför svårare att hålla intakta eftersom bladet stöter på mjuka, hårda eller tomma kärlvävnader. Det rekommenderas starkt att använda färska vävnader när du arbetar …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Charles Pineau, Mélanie Lagarrigue och Régis Lavigne för deras tips och tricks gällande provberedning för MALDI-avbildning av växtprover.

Materials

Cover slips Bruker Daltonics 267942
Cryomicrotome Thermo Scientific
Excel Microsoft corporation
flexImaging Bruker Daltonics
ftmsControl Bruker Daltonics
GTX primescan GX Microscopes
HCCA MALDI matrix Bruker Daltonics 8201344
ImagePrep Bruker Daltonics
ITO-coated slides Bruker Daltonics 237001
M1-embedding matrix ThermoScientific 1310
Metabolite Predict Bruker Daltonics
Metaboscape Bruker Daltonics
Methanol Fisher Chemicals No specific reference needed
MX 35 Ultra blades Thermo Scientific 15835682
Plastic molds No specific reference needed
SCiLS Lab Bruker Daltonics
SolariX XR 7Tesla Bruker Daltonics The method proposed is not limited to this instrument
Spray sheets for ImagePrep Bruker Daltonics 8261614
TFA Sigma Aldrich No specific reference needed

Referências

  1. Zhang, D., Gersberg, R. M., Ng, W. J., Tan, S. K. Removal of pharmaceuticals and personal care products in aquatic plant-based systems: A review. Environmental Pollution. 184, 620-639 (2014).
  2. Adeel, M., Song, X., Wang, Y., Francis, D., Yang, Y. Environmental impact of estrogens on human, animal and plant life: A critical review. Environment International. 99, 107-119 (2017).
  3. Prosser, R. S., Sibley, P. K. Human health risk assessment of pharmaceuticals and personal care products in plant tissue due to biosolids and manure amendments, and wastewater irrigation. Environment International. 75, 223-233 (2015).
  4. Wang, J., et al. Application of biochar to soils may result in plant contamination and human cancer risk due to exposure of polycyclic aromatic hydrocarbons. Environment International. 121, 169-177 (2018).
  5. Marsik, P., et al. Metabolism of ibuprofen in higher plants: A model Arabidopsis thaliana cell suspension culture system. Environmental Pollution. 220, 383-392 (2017).
  6. He, Y., et al. Metabolism of ibuprofen by Phragmites australis: uptake and phytodegradation. Environmental Science and Technology. 51 (8), 4576-4584 (2017).
  7. Huber, C., Bartha, B., Harpaintner, R., Schröder, P. Metabolism of acetaminophen (paracetamol) in plants-two independent pathways result in the formation of a glutathione and a glucose conjugate. Environmental Science and Pollution Research. 16 (2), 206-213 (2009).
  8. Thomas, F., Cébron, A. Short-term rhizosphere effect on available carbon sources, phenanthrene degradation, and active microbiome in an aged-contaminated industrial soil. Frontiers in Microbiology. 7, 1-15 (2016).
  9. Villette, C., et al. In situ localization of micropollutants and associated stress response in Populus nigra leaves. Environment International. 126, 523-532 (2019).
  10. Sandermann, H. Plant metabolism of organic xenobiotics. Status and prospects of the ‘Green Liver’ concept. Plant Biotechnology and In Vitro Biology in the 21st Century. , 321-328 (1999).
  11. Sula, B., Deveci, E., Özevren, H., Ekinci, C., Elbey, B. Immunohistochemical and histopathological changes in the skin of rats after administration of lead acetate. International Journal of Morphology. 34 (3), 918-922 (2016).
  12. Villette, C., Maurer, L., Wanko, A., Heintz, D. Xenobiotics metabolization in Salix alba leaves uncovered by mass spectrometry imaging. Metabolomics. 15, 122 (2019).
  13. Khatib-Shahidi, S., Andersson, M., Herman, J. L., Gillespie, T. A., Caprioli, R. M. Direct Molecular Analysis of Whole-Body Animal Tissue Sections by Imaging MALDI Mass Spectrometry. Analytical Chemistry. 78 (18), 6448-6456 (2006).
check_url/pt/61011?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Villette, C., Maurer, L., Heintz, D. Investigation of Xenobiotics Metabolism In Salix alba Leaves via Mass Spectrometry Imaging. J. Vis. Exp. (160), e61011, doi:10.3791/61011 (2020).

View Video