Summary

מודל מערכת אוטונומית טרנסלמינארית לאפנולציה של לחץ תוך עיני ותוך גולגולתי במקטעים האחוריים של התורם האנושי

Published: April 24, 2020
doi:

Summary

אנו מתארים ומפרטים את השימוש במערכת האוטונומית הטרנסלמינרית. מערכת זו משתמשת במגזר האחורי האנושי כדי לווסת באופן עצמאי את הלחץ בתוך המקטע (תוך עיני) וסביב עצב הראייה (תוך גולגולתי) כדי ליצור שיפוע לחץ טרנסלמינארי המחקה תכונות של נוירופתיה אופטית גלאוקומטית.

Abstract

קיים צורך בלתי ממומש עדכני במודל אנושי פרה-אקליני חדש שיכול להתמקד באטיולוגיה של מחלות אקס ויו באמצעות לחץ תוך גולגולתי (ICP) ולחץ תוך עיני (IOP) שיכול לזהות פרדיגמות פתוגניות שונות הקשורות לפתוגנזה הגלאוקומה. מודלים של תרבות איברים של פרגור פלח חיצוני של Ex vivo נוצלו בעבר בהצלחה ויישמו טכנולוגיות יעילות לגילוי פתוגנזה גלאוקומה ובדיקת טיפולים. הקרנת תרופות פרה-קלינית ומחקר המבוצע על מערכות איברים אנושיים ex vivo יכול להיות מתורגם יותר למחקר קליני. מאמר זה מתאר בפירוט את הדור והתפעול של מודל לחץ טרנסלמינארי אנושי חדש שנקרא המערכת האוטונומית הטרנסלמינרית (TAS). מודל TAS יכול לווסת באופן עצמאי ICP ו- IOP באמצעות מקטעים אחוריים של תורמים אנושיים. המודל מאפשר ללמוד פתוגנזה באופן פרה-אקליני. זה יכול להפחית את השימוש בבעלי חיים במחקר עיניים. בניגוד למודלים ניסיוניים במבחנה, ניתן לשמור גם על מבנה הרקמה של ראש עצב הראייה (ONH), המורכבות והשלמות במודל האקס ויוו TAS.

Introduction

הערכות עולמיות בסקרים האחרונים מצביעות על כך ש – 285 מיליון אנשים חיים עם לקות ראייה, כולל 39 מיליון עיוורים1. בשנת 2010, ארגון הבריאות העולמי תיעד כי שלושה מתוך תשעת הגורמים המובילים הרשומים לעיוורון מתרחשים בחלק האחורי של העין1. מחלות עיניים מגזר אחורי כוללות את הרשתית, choroid, עצב הראייה2. הרשתית ועצב הראייה הם הרחבות מערכת העצבים המרכזית (CNS) של המוח. האקסונים של תאי הגנגליון ברשתית (RGC) חשופים לנזק מכיוון שהם יוצאים מהעין דרך ראש עצב הראייה (ONH) כדי ליצור את עצב הראייה3. ONH נשאר הנקודה הפגיעה ביותר עבור אקסונים RGC בגלל רשת 3D של קורות רקמת חיבור בשם lamina cribrosa (LC)4. ONH הוא האתר הראשוני של עלבון אקסונים RGC בגלאוקומה5,6,7, ושינויים ביטוי גנים בתוך ONH נחקרו בדגמי יתר לחץ דם עיניים וגלאוקומה8,9,10. האקסונים של RGC רגישים ב- ONH בשל הפרשי לחץ בין התא התוך עיני, הנקרא לחץ תוך עיני (IOP), ובתוך המרחב התת-עכבישי perioptic החיצוני, הנקרא לחץ תוך גולגולתי (ICP)11. אזור LC מפריד בין שני האזורים, שמירה על הפרשי לחץ נורמליים, עם IOP הנע בין 10-21 מ”מ כ”ג ו- ICP מ 5-15 מ”מHg12. הפרש הלחץ דרך הלמינה בין שני התאים נקרא שיפוע הלחץ הטרנסלמינארי (TLPG)13. גורם סיכון מרכזי לגלאוקומה הוא IOP14 גבוה.

IOP מוגבר מגביר את העומס בתוך ומרחב אזור למינאר6,15,16. תצפיות ניסיוניות במודלים של בני אדם ובעלי חיים מציגות את ה- ONH כאתר הראשוני של נזק אקסוני17,18. הפרדיגמה הביומכנית של מתח ומתח הקשורים ל- IOP הגורמים לנזק גלאוקומה ב- ONH משפיעה גם על הפתופיזיולוגיה של גלאוקומה19,20,21. למרות שבבני אדם שינויים הנגרמים על ידי לחץ פוגעים באופן מכני ב- RGC axons22, מכרסמים חסרי לוחות קולגן בתוך הלמינה יכולים גם לפתח גלאוקומה7,23. בנוסף, IOP גבוה נשאר גורם הסיכון הבולט ביותר בחולי גלאוקומה בזווית פתוחה ראשונית, בעוד חולי גלאוקומה מתח נורמלי לפתח נוירופתיה אופטית גלאוקומה גם ללא IOP גבוה. יתר על כן, ישנם גם תת קבוצה של חולים יתר לחץ דם עינית שאינם מראים נזק עצבי הראייה. כמו כן הוצע כי לחץ נוזל השדרתי (CSFp) עשוי לשחק תפקיד פתוגנזה גלאוקומה. הראיות מצביעות על כך ICP הוא הוריד ~ 5 מ”מ כ”ג בחולי גלאוקומה בהשוואה לאנשים רגילים, ובכך גורם ללחץ טרנסלמינארי מוגבר ולשחק תפקיד מכריע במחלה24,25. בעבר, הוכח במודל כלבים, כי על ידי שליטה בשינויי IOP ו- CSFp, יכולות להיות תזוזות גדולות של הדיסק האופטי26. העלאת CSFp בעיני חזירים הראתה גם זן עיקרי מוגבר בתוך אזור LC ורקמה עצבית רטרולמינארית. עומס מוגבר על RGCs ואזור LC תורם לחסימת תחבורה אקסונית ואובדן RGCs27. ניוון פרוגרסיבי של RGCs קושר לאובדן תמיכה טרופית28,29, גירוי של תהליכים דלקתיים/ויסות חיסוני30,31, ומשפיעים אפופטוטיים29,32,33,34,35. בנוסף, פגיעה אקסונית (איור 3) גורמת להשפעות מזיקות על ה-RGCs וגורמת לכשל רגנרטיבי36,37,38,39. למרות ההשפעות של IOP נחקרו היטב, מחקר מינימלי בוצע על שינויים חריגים בלחץ טרנסלמינארי. רוב הטיפולים לגלאוקומה מתמקדים בייצוב IOP. עם זאת, למרות שהורדת IOP מאטה את התקדמות המחלה, היא אינה הופכת אובדן שדה ראייה ומונעת אובדן מוחלט של RGCs. הבנת שינויים נוירודגנרטיביים הקשורים ללחץ בגלאוקומה תהיה חיונית למניעת מוות של RGC.

הראיות הנוכחיות מצביעות על כך אפנון לחץ translaminar עקב שינויים מכניים, ביולוגיים, או פיזיולוגיים שונים בחולים הסובלים מליקויי ראייה טראומטיים או ניווניות יכול לגרום לאובדן ראייה משמעותי. נכון לעכשיו, לא קיים מודל פלח דם פרה-אקליני אמיתי שיכול לאפשר את המחקר של נזק ביומכני גלאוקומה בתוך ONH האנושי ex vivo. תצפית וטיפול בחלק האחורי של העין הוא אתגר עצום ברפואת עיניים27. ישנם מחסומים פיזיים וביולוגיים כדי למקד את העין האחורית, כולל שיעורי חיסול גבוהים, מחסום רשתית הדם, ותגובות חיסוניות פוטנציאליות40. רוב בדיקות היעילות והבטיחות למטרות סמים חדשניות מושגות תוך שימוש במודלים של תאי במבחנה ובדגמים של בעלי חיים ב-vivo41. האנטומיה העין מורכבת, ובמחקרי במבחנה אינם מחקים במדויק את המחסומים האנטומיים והפיזיולוגיים המוצגים על ידי מערכות מודל רקמות. למרות שמודלים של בעלי חיים הם הכרח למחקרים פרמקוקינטיים, הפיזיולוגיה העיןית של העין האחורית האנושית עשויה להשתנות בין מינים שונים של בעלי חיים, כולל אנטומיה תאית של הרשתית, vasculature, ו ONH41,42.

השימוש בבעלי חיים דורש תקנות אתיות אינטנסיביות ומפורטות, מחויבות פיננסית גבוהה ושחזור יעיל43. לאחרונה, הנחיות רבות אחרות התפתחו לשימוש אתי בבעלי חיים במחקר ניסיוני44,45,46. חלופה לניסויים בבעלי חיים היא שימוש במודלים של עיניים אנושיות ex vivo כדי לחקור פתוגנזה מחלות וניתוח פוטנציאלי של תרופות להגנה על נזק ONH. רקמה אנושית לאחר המוות היא משאב בעל ערך לחקר פרדיגמות מחלות אנושיות, במיוחד במקרה של מחלות ניווניות אנושיות, מכיוון שזיהוי תרופות פוטנציאליות שפותחו במודלים של בעלי חיים דורש את הצורך להיות מתורגם לבני אדם47. רקמת התורם האנושי ex vivo כבר בשימוש נרחב לחקר הפרעות אנושיות47,48,49, ומערכות תרבות איברים מגזרי קדם אנושי סיפקו בעבר מודל ex vivo ייחודי לחקור את הפתופיזיולוגיה של IOP50,51,52.

כדי לחקור לחץ טרנסלמינארי הקשור ל- IOP ו- ICP בעיני האדם, עיצבנו ופיתחנו בהצלחה מערכת אוטונומית טרנסלמינארית דו-תאית (TAS) שיכולה לווסת באופן עצמאי את IOP ו- ICP באמצעות מקטעים אחוריים מעיני תורם אנושי. זהו המודל האנושי ex vivo הראשון לחקור לחץ טרנסלמינאר ולנצל את ההשפעות הביומכניות של TLPG על ONH.

מודל זה של Ex vivo אנושי TAS יכול לשמש כדי לגלות ולסווג שינויים תאיים ותפקודיים המתרחשים עקב העלאה כרונית של IOP או ICP. בדוח זה, אנו מפרטים את הפרוטוקול שלב אחר שלב של ניתוח, הגדרה וניטור של מודל המקטע האחורי האנושי של TAS. הפרוטוקול יאפשר לחוקרים אחרים לשחזר ביעילות את מודל הקטע האחורי האנושי החדש הזה של ex vivo כדי לחקור פתוגנזה של מחלות ביומכניות.

Protocol

העיניים הושגו על פי הוראות הצהרת הלסינקי למחקר הנוגע לרקמת אדם. הערה: עיניים מבנקים עיניים מכובדים (למשל, מכון עיניים אריות להשתלה, מחקר, טמפה FL) נקצרו בתוך 6-12 שעות של מוות סרום תורם נבדק עבור הפטיטיס B, הפטיטיס C, ווירוס כשל חיסוני אנושי 1 ו -2. ברגע שהם התקבלו, העיניים נותחו והוק…

Representative Results

תכנון ויצירה של המערכת האוטונומית הטרנסלמינריתדיפרנציאל לחץ טרנסלמינארי הוא מנגנון מפתח פוטנציאלי בפתוגנזה של מחלות שונות, כולל גלאוקומה. השימושים במודל המתואר כוללים, אך אינם מוגבלים, את המחקר של גלאוקומה (IOP גבוה, אולי ירידה ICP), פגיעה מוחית טראומטית (ICP גבוה), וחשיפה ארוכת טוו…

Discussion

רקמות אנושיות לאחר המוות הן משאב בעל ערך מיוחד לחקר מחלות ניווניות אנושיות מכיוון שזיהוי תרופות פוטנציאליות שפותחו במודלים של בעלי חיים צריך להיות מתורגם לבני אדם47. ההשפעות של העלאת IOP אנושית מבוססות היטב, אבל מחקר מינימלי בוצע על שינויים חריגים בלחץ TRANSLAMINAR ONH. למרות שקיימים ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המימון לפרויקט זה היה באמצעות כספים לפי שיקול דעתה של ד”ר קולין מ. מקדואל. עבודה זו נתמכה בחלקה על ידי מענק בלתי מוגבל ממחקר למניעת עיוורון, Inc. למחלקת UW מדיסון לרפואת עיניים ומדעי הראייה. אנו מודים לד”ר אבוט פ. קלארק ווימינג מאו על הסיוע הטכני שלהם במודל תרבות האיברים. אנו מודים למכון העיניים של האריות להשתלה ומחקר (טמפה, FL) על מתן עיני התורם האנושי.

Materials

#122, 1-1/8" Inside x 1-5/16" Outside Diam, Viton O-Ring, 3/32" Thick,
755 Durometer 50 Pack
Amazon B07DRGPPZJ
114 Buna-N O-Ring, 70A Durometer, Black, 5/8" ID, 13/16" OD, 3/32" Width (Pack of 100) Amazon B000FMYRHK
30 mL Syringes without Needle Vitality Medical 302832
3-Way Stopcock, 2 Female Luer Locks, Swivel Male Luer Lock, Vented Cap QOSINA 2C6201
4-40 X 1/2 PH PAN MS SS/CHROME & appropriate sized phillips screwdriver Brikksen Stainless Steel Fastners PPMSSSCH4C.5  
ANPROLENE 16 LARGE AMPULE Fisher Scientific NC9085343  
Betadine Purdue PUR1815001EACH  
Corning 100 x 20mm tissue-culture treated culture dishes Sigma-Aldrich CLS430167-100EA  
Corning L-glutamine Solution Fisher Scientific MT25005CI
Covidien 3033 Curity Gauze Sponge, 4" x 4", 12-Ply, Sterile, 1200/CS Med Plus Medical Supply COV-3033-CS
Dressing Forceps Delicate Curved (serrated) Katena K5-4010
Dumont #5 – Fine Forceps F.S.T. 11254-20
Eye Scissors Standard Curved Katena K4-7410
Falcon 150 x 15mm Plain Sterile Disposable Petri Dishes Capitol Scientific 351058
Fisherbrand 4 oz. Specimen Containers Fisher Scientific 16-320-730
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-54
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-55
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-58
HyClone Dulbecco's Modified Eagles Medium Fisher Scientific SH3024302
HyClone Penicillin Streptomycin 100X Solution Fisher Scientific SV30010
Hydrophilic Filter with Female Luer Lock Inlet, Male Luer Slip Outlet, Blue and Clear Qosina 28217
Hydrostatic pressure transducers, DELTRAN ® II, Catalog # DPT-200 with a 3CC/HR flow rate AD instruments DPT-200
JG15-0.5HPX 15 Gauge 0.5" NT Premium Series Dispensing Tip 50/Box Jenson Global JG15-0.5HPX 15
Keyence B2‐X710 microscope Keyence B2-X710
LabChart 8 AD instruments LabChart 8
Leica ST5020 Multi-stainer Leica ST5020
Non-Vented Universal Luer Lock Cap, White QOSINA 65811
Octal Bridge Amp (Model # FE228) AD instruments FE228
Pharmco Products ETHYL ALCOHOL, 200 PROOF Fisher Scientific NC1675398
Phosphate Buffered Solution (PBS) Sigma-Aldrich D8537-500ML
PowerLab 8/35 (Model # PL3508) AD instruments PL3508
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI ThermoFisher P36935
Push-to-Connect Tube Fitting for Air and Water Straight Adapter, 1/8" Tube OD x 1/8 NPT Male McMAster-Carr 7880T113
Push-to-Connect Tube Fitting with Universal Thread for Air and Water, Adapter, 1/8" Tube OD x 1/8 Pipe McMAster-Carr 51235K101
Saint-Gobain Tygon S3 E-3603 Flexible Tubing 500 ft. Fisher Scientific 14-171-268
Superblock T20 Fisher Scientific PI37536
Surgical Scissors – Sharp-Blunt F.S.T. 14001-14
Tissue Forceps Delicate 1×2 Teeth Curved Katena K5-4110
Translaminar Autonomous System (TAS) University of North Texas Health Science Center N/A
USA Size 030 O-ring Buna-N, B1000, 70 Durometer, Black, Buna-N
(NBR, Nitrile, Buna)
Marco Rubber & Plastics B1000-030

Referências

  1. Pascolini, D., Mariotti, S. P. Global estimates of visual impairment: 2010. The British Journal of Ophthalmology. 96 (5), 614-618 (2012).
  2. Bastawrous, A., et al. Posterior segment eye disease in sub-Saharan Africa: review of recent population-based studies. Tropical Medicine & International Health. 19 (5), 600-609 (2014).
  3. Morgan, J. E. Circulation and axonal transport in the optic nerve. Eye. 18 (11), 1089-1095 (2004).
  4. Burgoyne, C. F. A biomechanical paradigm for axonal insult within the optic nerve head in aging and glaucoma. Experimental Eye Research. 93 (2), 120-132 (2011).
  5. Quigley, H. A., Addicks, E. M. Chronic experimental glaucoma in primates. II. Effect of extended intraocular pressure elevation on optic nerve head and axonal transport. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 19 (2), 137-152 (1980).
  6. Quigley, H. A., Addicks, E. M., Green, W. R., Maumenee, A. E. Optic nerve damage in human glaucoma. II. The site of injury and susceptibility to damage. Archives of Ophthalmology. 99 (4), 635-649 (1981).
  7. Howell, G. R., et al. Axons of retinal ganglion cells are insulted in the optic nerve early in DBA/2J glaucoma. The Journal of Cell Biology. 179 (7), 1523-1537 (2007).
  8. Johnson, E. C., Jia, L., Cepurna, W. O., Doser, T. A., Morrison, J. C. Global changes in optic nerve head gene expression after exposure to elevated intraocular pressure in a rat glaucoma model. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 48 (7), 3161-3177 (2007).
  9. Howell, G. R., et al. Molecular clustering identifies complement and endothelin induction as early events in a mouse model of glaucoma. Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1429-1444 (2011).
  10. Qu, J., Jakobs, T. C. The Time Course of Gene Expression during Reactive Gliosis in the Optic Nerve. PloS one. 8 (6), 67094 (2013).
  11. Berdahl, J. P., Fautsch, M. P., Stinnett, S. S., Allingham, R. R. Intracranial pressure in primary open angle glaucoma, normal tension glaucoma, and ocular hypertension: a case-control study. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 49 (12), 5412-5418 (2008).
  12. Berdahl, J. P., Allingham, R. R. Intracranial pressure and glaucoma. Current Opinion in Ophthalmology. 21 (2), 106-111 (2010).
  13. Morgan, W. H., et al. The correlation between cerebrospinal fluid pressure and retrolaminar tissue pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 39 (8), 1419-1428 (1998).
  14. Leske, M. C., Connell, A. M., Wu, S. Y., Hyman, L. G., Schachat, A. P. Risk factors for open-angle glaucoma. The Barbados Eye Study. Archives of Ophthalmology. 113 (7), 918-924 (1995).
  15. Quigley, H. A., Green, W. R. The histology of human glaucoma cupping and optic nerve damage: clinicopathologic correlation in 21 eyes. Ophthalmology. 86 (10), 1803-1830 (1979).
  16. Burgoyne, C. F., Downs, J. C., Bellezza, A. J., Hart, R. T. Three-dimensional reconstruction of normal and early glaucoma monkey optic nerve head connective tissues. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 45 (12), 4388-4399 (2004).
  17. Diekmann, H., Fischer, D. Glaucoma and optic nerve repair. Cell and Tissue Research. 353 (2), 327-337 (2013).
  18. Nickells, R. W., Howell, G. R., Soto, I., John, S. W. Under pressure: cellular and molecular responses during glaucoma, a common neurodegeneration with axonopathy. Annual Review of Neuroscience. 35, 153-179 (2012).
  19. Burgoyne, C. F., Downs, J. C. Premise and prediction-how optic nerve head biomechanics underlies the susceptibility and clinical behavior of the aged optic nerve head. Journal of Glaucoma. 17 (4), 318-328 (2008).
  20. Sigal, I. A., Ethier, C. R. Biomechanics of the optic nerve head. Experimental Eye Research. 88 (4), 799-807 (2009).
  21. Sigal, I. A., Flanagan, J. G., Tertinegg, I., Ethier, C. R. Modeling individual-specific human optic nerve head biomechanics. Part I: IOP-induced deformations and influence of geometry. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 8 (2), 85-98 (2009).
  22. Morgan, J. E., Jeffery, G., Foss, A. J. Axon deviation in the human lamina cribrosa. The British Journal of Ophthalmology. 82 (6), 680-683 (1998).
  23. Danias, J., et al. Quantitative analysis of retinal ganglion cell (RGC) loss in aging DBA/2NNia glaucomatous mice: comparison with RGC loss in aging C57/BL6 mice. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 44 (12), 5151-5162 (2003).
  24. Berdahl, J. P., Allingham, R. R., Johnson, D. H. Cerebrospinal fluid pressure is decreased in primary open-angle glaucoma. Ophthalmology. 115 (5), 763-768 (2008).
  25. Fleischman, D., Allingham, R. R. The role of cerebrospinal fluid pressure in glaucoma and other ophthalmic diseases: A review. Saudi Journal of Ophthalmology. 27 (2), 97-106 (2013).
  26. Morgan, W. H., et al. Optic disc movement with variations in intraocular and cerebrospinal fluid pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 43 (10), 3236-3242 (2002).
  27. Feola, A. J., et al. Deformation of the Lamina Cribrosa and Optic Nerve Due to Changes in Cerebrospinal Fluid Pressure. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (4), 2070-2078 (2017).
  28. Koeberle, P. D., Bahr, M. Growth and guidance cues for regenerating axons: where have they gone. Journal of Neurobiology. 59 (1), 162-180 (2004).
  29. Kermer, P., Klocker, N., Bahr, M. Neuronal death after brain injury. Models, mechanisms, and therapeutic strategies in vivo. Cell and Tissue Research. 298 (3), 383-395 (1999).
  30. Koeberle, P. D., Gauldie, J., Ball, A. K. Effects of adenoviral-mediated gene transfer of interleukin-10, interleukin-4, and transforming growth factor-beta on the survival of axotomized retinal ganglion cells. Neurociência. 125 (4), 903-920 (2004).
  31. Kipnis, J., et al. Neuronal survival after CNS insult is determined by a genetically encoded autoimmune response. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 21 (13), 4564-4571 (2001).
  32. Isenmann, S., Wahl, C., Krajewski, S., Reed, J. C., Bahr, M. Up-regulation of Bax protein in degenerating retinal ganglion cells precedes apoptotic cell death after optic nerve lesion in the rat. The European Journal of Neuroscience. 9 (8), 1763-1772 (1997).
  33. Kermer, P., et al. Caspase-9: involvement in secondary death of axotomized rat retinal ganglion cells in vivo. Brain research. Molecular Brain Research. 85 (1-2), 144-150 (2000).
  34. Kermer, P., Klocker, N., Labes, M., Bahr, M. Inhibition of CPP32-like proteases rescues axotomized retinal ganglion cells from secondary cell death in vivo. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 18 (12), 4656-4662 (1998).
  35. Kikuchi, M., Tenneti, L., Lipton, S. A. Role of p38 mitogen-activated protein kinase in axotomy-induced apoptosis of rat retinal ganglion cells. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 20 (13), 5037-5044 (2000).
  36. Barron, K. D., Dentinger, M. P., Krohel, G., Easton, S. K., Mankes, R. Qualitative and quantitative ultrastructural observations on retinal ganglion cell layer of rat after intraorbital optic nerve crush. Journal of Neurocytology. 15 (3), 345-362 (1986).
  37. Misantone, L. J., Gershenbaum, M., Murray, M. Viability of retinal ganglion cells after optic nerve crush in adult rats. Journal of Neurocytology. 13 (3), 449-465 (1984).
  38. Bahr, M. Live or let die – retinal ganglion cell death and survival during development and in the lesioned adult CNS. Trends in Neurosciences. 23 (10), 483-490 (2000).
  39. Klocker, N., Zerfowski, M., Gellrich, N. C., Bahr, M. Morphological and functional analysis of an incomplete CNS fiber tract lesion: graded crush of the rat optic nerve. Journal of Neuroscience Methods. 110 (12), 147-153 (2001).
  40. Del Amo, E. M., et al. Pharmacokinetic aspects of retinal drug delivery. Progress in Retinal and Eye Research. 57, 134-185 (2017).
  41. Rousou, C., et al. A technical protocol for an experimental ex vivo model using arterially perfused porcine eyes. Experimental Eye Research. 181, 171-177 (2019).
  42. Vézina, M. . Assessing Ocular Toxicology in Laboratory Animals. , 1-21 (2012).
  43. de Boo, J., Hendriksen, C. Reduction strategies in animal research: a review of scientific approaches at the intra-experimental, supra-experimental and extra-experimental levels. Alternatives to Laboratory Animals. 33 (4), 369-377 (2005).
  44. Kirk, R. G. W. Recovering The Principles of Humane Experimental Technique: The 3Rs and the Human Essence of Animal Research. Science, Technology, & Human Values. 43 (4), 622-648 (2018).
  45. Burden, N., Chapman, K., Sewell, F., Robinson, V. Pioneering better science through the 3Rs: an introduction to the national centre for the replacement, refinement, and reduction of animals in research (NC3Rs). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (2), 198-208 (2015).
  46. Singh, J. The national centre for the replacement, refinement, and reduction of animals in research. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 3 (1), 87-89 (2012).
  47. White, K., et al. Effect of Postmortem Interval and Years in Storage on RNA Quality of Tissue at a Repository of the NIH NeuroBioBank. Biopreservation and Biobanking. 16 (2), 148-157 (2018).
  48. Ervin, J. F., et al. Postmortem delay has minimal effect on brain RNA integrity. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 66 (12), 1093-1099 (2007).
  49. Heinrich, M., Matt, K., Lutz-Bonengel, S., Schmidt, U. Successful RNA extraction from various human postmortem tissues. International Journal of Legal Medicine. 121 (2), 136-142 (2007).
  50. Johnson, D. H., Tschumper, R. C. Human trabecular meshwork organ culture. A new method. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 28 (6), 945-953 (1987).
  51. Gottanka, J., Chan, D., Eichhorn, M., Lutjen-Drecoll, E., Ethier, C. R. Effects of TGF-beta2 in perfused human eyes. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 45 (1), 153-158 (2004).
  52. Pang, I. H., McCartney, M. D., Steely, H. T., Clark, A. F. Human ocular perfusion organ culture: a versatile ex vivo model for glaucoma research. Journal of Glaucoma. 9 (6), 468-479 (2000).
  53. Aryee, M. J., Gutierrez-Pabello, J. A., Kramnik, I., Maiti, T., Quackenbush, J. An improved empirical bayes approach to estimating differential gene expression in microarray time-course data: BETR (Bayesian Estimation of Temporal Regulation). BMC Bioinformatics. 10, 409 (2009).
  54. Feola, A. J., et al. Finite Element Modeling of Factors Influencing Optic Nerve Head Deformation Due to Intracranial Pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 57 (4), 1901-1911 (2016).
  55. Downs, J. C. Optic nerve head biomechanics in aging and disease. Experimental Eye Research. 133, 19-29 (2015).
  56. Downs, J. C., Roberts, M. D., Burgoyne, C. F. Mechanical environment of the optic nerve head in glaucoma. Optometry and Vision Science. 85 (6), 425-435 (2008).
  57. Downs, J. C., et al. Viscoelastic characterization of peripapillary sclera: material properties by quadrant in rabbit and monkey eyes. Journal of Biomechanical Engineering. 125 (1), 124-131 (2003).
  58. Wagner, A. H., et al. Exon-level expression profiling of ocular tissues. Experimental Eye Research. 111, 105-111 (2013).
  59. Pels, E., Beele, H., Claerhout, I. Eye bank issues: II. Preservation techniques: warm versus cold storage. International Ophthalmology. 28 (3), 155-163 (2008).
  60. Reinhard, K., et al. Hypothermia Promotes Survival of Ischemic Retinal Ganglion Cells. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 57 (2), 658-663 (2016).
check_url/pt/61006?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Sharma, T. P., Curry, S. M., Lohawala, H., McDowell, C. Translaminar Autonomous System Model for the Modulation of Intraocular and Intracranial Pressure in Human Donor Posterior Segments. J. Vis. Exp. (158), e61006, doi:10.3791/61006 (2020).

View Video