Summary

Ballistisk märkning av pyramidal neuroner i hjärnan skivor och i primär cell kultur

Published: April 02, 2020
doi:

Summary

Vi presenterar ett protokoll för att märka och analysera pyramidala nervceller, som är avgörande för att utvärdera potentiella morfologiska förändringar i nervceller och dendritiska ryggar som kan ligga till grund för neurokemiska och beteendemässiga avvikelser.

Abstract

Det har rapporterats att storleken och formen på dendritiska taggar är relaterad till deras strukturella plasticitet. För att identifiera den morfologiska strukturen av pyramidala nervceller och dendritiska taggar, en ballistisk märkning teknik kan utnyttjas. I det nuvarande protokollet, pyramidala nervceller är märkta med DilC18(3) färgämne och analyseras med neuronal återuppbyggnad programvara för att bedöma neuronal morfologi och dendritiska taggar. För att undersöka neuronal struktur, dendritiska förgrening analys och Sholl analys utförs, så att forskare att dra slutsatser om dendritiska förgrening komplexitet och neuronal arbor komplexitet, respektive. Utvärderingen av dendritiska taggar utförs med hjälp av en automatisk assisterad klassificering algoritm integrerad i återuppbyggnaden programvara, som klassificerar ryggar i fyra kategorier (dvs tunn, svamp, stubby, filopodia). Dessutom väljs ytterligare tre parametrar (dvs. längd, huvuddiameter och volym) också för att bedöma förändringar i dendritisk ryggrad morfologi. För att validera potentialen för bred tillämpning av ballistiska märkning teknik, pyramidala nervceller från in vitro cell kultur var framgångsrikt märkt. Sammantaget är ballistisk märkningsmetoden unik och användbar för att visualisera nervceller i olika hjärnregioner hos råttor, vilket i kombination med sofistikerad rekonstruktionsprogramvara gör det möjligt för forskare att belysa de möjliga mekanismerna bakom neurokognitiv dysfunktion.

Introduction

År 2000 beskrev Gan et al. en snabb märkningsteknik för enskilda nervceller och glia i nervsystemet som kombinerade olika lipofila färgämnen, vilket möjliggör samtidig märkning av många hjärnceller med olika färger1,2. På senare tid, en ballistisk märkning teknik beskrevs av Seabold et al.3 som introducerade fluorescerande färgämnen (Dil) i nervceller i hjärnan skivor. En mångsidig färgning teknik, ballistiska märkning uppskattas för sin förmåga att utnyttjas i flera djurarter och över ett brett spektrum av åldrar. Dessutom kan det kombineras med immunstainning för att identifiera subpopulationer av hjärnceller3. Jämfört med traditionella tekniker (t.ex. Golgi-Cox silver impregnering, microinjection)4, ballistiska märkning ger en möjlighet att tydligare skilja morfologiska egenskaper, inklusive dendritiska taggar, en funktion som är avgörande för att dra slutsatser om neuronal komplexitet och synaptisk anslutning5.

Excitatoriska pyramidala nervceller kännetecknas av en enda, stor apical dendrit, flera kortare basala dendriter, och tusentals dendritiska taggar6. Pyramidala nervceller finns i flera hjärnan regioner relaterade till högre ordning kognitiv bearbetning, inklusive prefrontala cortex (PFC) och hippocampus. I PFC, pyramidala nervceller observeras i lager II/III och lager V, med varje uppvisar unika morfologi. Specifikt, pyramidala nervceller i lager II / III av PFC har en kortare apikal dendrit och mindre förgrening än pyramidala nervceller i lager V6. Inom hippocampus, pyramidala nervceller finns i både CA1 och CA3 regioner, med varje visar distinkta morfologier. Specifikt, pyramidala nervceller i CA1 regionen uppvisar en mer distinkt apikal dendrit, med förgrening inträffar längre från soma, i förhållande till CA3 regionen6.

Dendritiska taggar på pyramidala nervceller i både PFC och hippocampus är den primära platsen för excitatoriska synapser7. Morfologiska egenskaper hos dendritiska taggar, som klassiskt kännetecknas i tre primära kategorier (dvs. tunn, stubbig eller svamp8), har varit relaterade till storleken på excitatoriska synaps9. Tunna taggar, som kännetecknas av en lång, tunn hals, små bulbous huvud, och mindre postsynaptiska densiteter, är mer instabila och utveckla svagare anslutningar. Svampryggar, som har ett större dendritiskt ryggradshuvud, är dock erkända för att bilda starkare synaptiska anslutningar, en effekt som härrör från deras större storlek. I skarp kontrast, stubby taggar saknar en ryggrad hals, uppvisar en ungefär lika huvud och hals volymförhållande8. Inom hippocampus, grenade taggar kan också observeras, där ryggraden har flera huvuden som kommer ut från samma dendritiska ryggraden hals10. Därför kan morfologiska förändringar av dendritiska taggar återspegla funktionalitet och strukturell kapacitet. Dessutom har studier visat att storleken och formen på dendritiska taggar relaterar till deras strukturella plasticitet, vilket leder till tanken att små taggar är involverade i lärande och uppmärksamhet, medan större, mer stabila taggar, är involverade i långsiktiga processer, inklusive minne11. Dessutom kan fördelningen av dendritiska taggar längs dendriten associeras med synaptisk anslutning5,12.

Således har den nuvarande metodologiska papper tre mål: 1) Presentera vårt protokoll för ballistiska märkning, som har utnyttjats med en framgång (dvs. nervceller som uppfyller urvalskriterier och lämpliga för analys) av 83,3%5,12,13 och över flera regioner i hjärnan (dvs. PFC, nucleus accumbens, hippocampus); 2) Visa generaliserbarhet av tekniken och dess tillämpning på nervceller odlas in vitro; 3) Detalj den metod som används i neuronal återuppbyggnad programvara och slutsatser som kan dras från sådana data.

Protocol

Alla djur protokoll granskades och godkändes av Animal Care and Use Committee vid University of South Carolina (federal försäkran nummer: D16-00028). 1. Beredning av DiI/Volframpärla slangar Lös 100 mg polyvinylpyrrolidon (PVP) med 10 ml ddH2O. Vortex PVP-lösningen lätt. Fyll slangen med PVP-lösningen (se Tabell över material)och låt den stå i 20 minuter. Sedan, utvisa PVP-lösningen genom den andra änden av slangen med en 10 ml sprut…

Representative Results

I figur 2Aidentifierades de typiska pyramidala nervcellerna i hippocampus regionen i råttahjärnans sektioner av ballistiska märkningsteknik, som kännetecknas av en stor apical dendrite och flera mindre basala dendriter runt soma. Figur 2B visar neuronal återuppbyggnad kvantitativ analys programvara efter soma upptäcktes, dendritiska grenar spårades och ryggar upptäcktes. Därefter analyserades data med hjälp av neuronal återuppbyggnad kvantitativ analy…

Discussion

I detta protokoll beskriver vi en mångsidig märkningsteknik för nervceller från både råttahjärna och de som odlas in vitro. Dessutom rapporterar vi metoden för att utnyttja neuronal återuppbyggnad programvara och neuronal återuppbyggnad kvantitativ analys programvara för att bedöma neuronal morfologi och dendritiska taggar. Bedömning av neuronal morfologi och dendritiska ryggar ger en möjlighet att bestämma förändringar i dendritiska förgrening komplexitet, neuronal arbor komplexitet, dendritiska ryggra…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete finansierades av NIH bidrag HD043680, MH106392, DA013137 och NS100624.

Materials

20Gx25mm PrecisionGlide needle BD 305175
24-well cell culture plate Costar 3562
35 mm Glass Bottom Dishes MatTek Corporation P35G-1.5-20-C
Antibiotic-Antimycotic solution Cellgro 30004CI 100X
B-27 supplement Life Technologies 17504-044 50X
Barrel liner BIO-RAD 165-2417
Borax Sigma B9876
Boric acid Sigma B0252
Cartridge holder BIO-RAD 165-2426
Confocal imaging software Nikon EZ-C1 version 3.81b
Confocal microscope Nikon TE-2000E
Cover glass VWR 637-137
DilC18(3) Fisher Scientific D282
DMEM/F12 medium Life Technologies 10565-018
Dumont #5 Forceps World Precision Instruments 14095
Dumont #7 Forceps World Precision Instruments 14097
F344 rat (Harlan Laboratories, Indianapolis, IN)
Glucose VWR 101174Y
GlutaMax Life Technologies 35050-061 100X
HBSS Sigma H4641 10X
Helios diffusion screens BIO-RAD 165-2475
Helios gene gun kit BIO-RAD 165-2411
Helios gene gun system BIO-RAD 165-2431
Helium hose assembly BIO-RAD 165-2412
Iris Forceps World Precision Instruments 15914
Iris Scissors World Precision Instruments 500216
Methylene chloride Fisher Scientific D150-1
Neurobasal medium Life Technologies 21103-049
Neurolucida 360 software mbf bioscience dendritic spine analysis
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127-500G
Paraformaldehyde Sigma P6148
Poly-L-Lysine Sigma P9155
Polyvinylpyrrolidone Fisher Scientific 5295
ProLong Gold antifade reagent Fisher Scientific P36930 mounting medium
Rat brain matrix, 300 – 600g, Coronal, 0.5mm Ted Pella 15047
Sevoflurane Merritt Veterinary Supply 347075
Sodium Bicarbonate Life Technologies 25080
SuperFrost Plus Slides Fisher Scientific 12-550-154%
Syringe kit BIO-RAD 165-2421
Tefzel tubing BIO-RAD 165-2441
Trypsin-EDTA Life Technologies 15400-054
Tubing cutter BIO-RAD 165-2422
Tubing Prep station BIO-RAD 165-2418
Tungsten M-25 Microcarrier 1.7 µm BIO-RAD 165-2269
Vannas Scissors World Precision Instruments 500086

Referências

  1. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, W. T., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Multicolor “DiOlistic” labeling of the nervous system using lipophilic dye combinations. Neuron. 27, 219-225 (2000).
  2. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Ballistic delivery of dyes for structural and functional studies of the nervous system. Cold Spring Harbor Protocol. 2009 (4), 5202 (2009).
  3. Seabold, G. K., Daunais, J. B., Rau, A., Grant, K. A., Alvarez, V. A. DiOLISTIC labeling of neurons from rodent and non-human primate brain slices. Journal of Visualized Experiments. (41), (2010).
  4. Spacek, J. Dynamics of the Golgi method: a time-lapse study of the early stages of impregnation in single sections. Journal of Neurocytology. 18 (1), 27-38 (1989).
  5. McLaurin, K. A., Li, H., Booze, R. M., Mactutus, C. F. Disruption of Timing: NeuroHIV Progression in the Post-cART Era. Science Reports. 9 (1), 827 (2019).
  6. Spruston, N. Pyramidal neurons: dendritic structure and synaptic integration. Nature Reviews Neurosciences. 9 (3), 206-221 (2008).
  7. Megias, M., Emri, Z., Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal CA1 pyramidal cells. Neurociência. 102, 527-540 (2001).
  8. Peters, A., Kaiserman-Abramof, I. R. The small pyramidal neuron of the rat cerebral cortex. The perikaryon, dendrites and spines. American Journal of Anatomy. 127, 321-355 (1970).
  9. Harris, K. M., Sultan, P. Variation in the number, location, and size of synaptic vesicles provides an anatomical basis for the nonuniform probability of release at hippocampal CA1 synapses. Neuropharmacology. 34, 1387-1395 (1995).
  10. Sorra, K. E., Fiala, J. C., Harris, K. M. Critical assessment of the involvement of perforations, spinules, and spine branching in hippocampal synapse formation. Journal of Comparative Neurology. 398, 225-240 (1998).
  11. Mancuso, J. J., Chen, Y., Li, X., Xue, Z., Wong, S. T. C. Methods of dendritic spine detection: from Golgi to high-resolution optical imaging. Neurociência. 251, 129-140 (2012).
  12. McLaurin, K. A., et al. Synaptic connectivity in medium spiny neurons of the nucleus accumbens: A sex-dependent mechanism underlying apathy in the HIV-1 transgenic rat. Frontiers in Behavior Neurosciences. 12, 285 (2018).
  13. Roscoe, R. F., Mactutus, C. F., Booze, R. M. HIV-1 transgenic female rat: synaptodendritic alterations of medium spiny neurons in the nucleus accumbens. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 9 (5), 642-653 (2014).
  14. Li, H., Aksenova, M., Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Booze, R. Quantification of Filamentous Actin (F-actin) Puncta in Rat Cortical Neurons. Journal of Visualized Experiments. (108), e53697 (2016).
  15. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated Three-Dimensional Detection and Shape Classification of Dendritic Spines from Fluorescence Microscopy Images. PLoS ONE. 3 (10), 1371 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Li, H., McLaurin, K. A., Mactutus, C. F., Booze, R. M. Ballistic Labeling of Pyramidal Neurons in Brain Slices and in Primary Cell Culture. J. Vis. Exp. (158), e60989, doi:10.3791/60989 (2020).

View Video