Summary

Cartographie génétique des différences de thermotolérance entre les espèces de levure saccharomyces via Genome-Wide Reciprocal Hemizygosity Analysis

Published: August 12, 2019
doi:

Summary

L’hémizygosité réciproque par le séquençage (RH-seq) est une nouvelle méthode puissante pour cartographier la base génétique d’une différence de trait entre les espèces. Les piscines d’hémizygotes sont générées par la mutagénèse transposon et leur condition physique est suivie par la croissance concurrentielle utilisant le séquençage de haut-tout. L’analyse des données obtenues identifie les gènes sous-jacents au trait.

Abstract

Un objectif central de la génétique moderne est de comprendre comment et pourquoi les organismes à l’état sauvage diffèrent dans le phénotype. Jusqu’à présent, le champ a progressé en grande partie sur la force des méthodes de liaison et de cartographie d’association, qui tracent la relation entre les variantes de séquence d’ADN et le phénotype à travers la progéniture recombinante des accouplements entre les individus d’une espèce. Ces approches, bien que puissantes, ne sont pas bien adaptées pour caractéristiquer les différences entre les espèces isolées sur le plan de la reproduction. Nous décrivons ici une nouvelle méthode pour la dissection à l’échelle du génome de la variation naturelle des caractères qui peut être facilement appliquée à des espèces incompatibles. Notre stratégie, RH-seq, est une mise en œuvre à l’échelle du génome du test de l’hémizygote réciproque. Nous l’avons exploitée pour identifier les gènes responsables de la croissance frappante à haute température de la levure Saccharomyces cerevisiae par rapport à son espèce sœur S. paradoxus. RH-seq utilise la mutagénèse transposon pour créer un pool d’hémizygotes réciproques, qui sont ensuite suivis par une compétition à haute température par le séquençage à haut débit. Notre flux de travail RH-seq tel qu’il est présenté ici fournit un moyen rigoureux et impartial de disséquer les caractères anciens et complexes dans le clade de levure en herbe, avec la mise en garde que le séquençage profond à forte intensité de ressources est nécessaire pour assurer une couverture génomique pour la cartographie génétique. Comme les coûts de séquençage baissent, cette approche est très prometteuse pour une utilisation future à travers les eucaryotes.

Introduction

Depuis l’aube du champ, il a été un objectif premier en génétique de comprendre la base mécaniste de la variation entre les individus sauvages. Comme nous cartographions les loci sous-jacents à un trait d’intérêt, les gènes émergents peuvent être d’une utilisation immédiate comme cibles pour le diagnostic et les médicaments, et peuvent faire la lumière sur les principes de l’évolution. La norme de l’industrie à cette fin est de tester une relation entre le génotype et le phénotype à travers une population par le biais de liaison ou d’association1. Aussi puissantes que soient ces approches, elles ont une limitation clé : elles reposent sur de grands panneaux de descendance recombinante provenant de croisements entre individus interfertiles. Ils ne sont d’aucune utilité dans l’étude des espèces qui ne peuvent pas s’accoupler pour former la progéniture en premier lieu. En tant que tel, le champ a eu peu de capacité pour la dissection impartiale des différences de trait entre les espèces isolées sur le volet reproducteur2.

Dans ce travail, nous rapportons les fondements techniques d’une nouvelle méthode, RH-seq3, pour des études à l’échelle du génome de la base génétique de la variation des caractères entre les espèces. Cette approche est une version massivement parallèle du test de l’hémizygote réciproque4,5, qui a d’abord été conçu comme un moyen d’évaluer les effets phénotypiques des différences alléliques entre deux milieux génétiquement distincts à un locus particulier (figure 1A). Dans ce schéma, les deux individus divergents sont d’abord accouplés pour former un hybride, dont la moitié du génome provient de chacun des parents respectifs. Dans cet arrière-plan, plusieurs souches sont générées, chacune contenant une copie interrompue ou supprimée de l’allèle du locus de chaque parent. Ces souches sont hémizygotes puisqu’elles restent diploïdes partout dans le génome, sauf au lieu d’intérêt, où elles sont considérées comme haploïdes, et sont qualifiées de réciproques puisque chacun n’a pas l’allèle d’un seul parent, son allèle restant étant dérivé de la autre parent. En comparant les phénotypes de ces souches réciproques d’hémizygote, on peut conclure si les variantes de séquence séquencédes d’ADN au locus manipulé contribuent au trait d’intérêt, puisque les variantes au locus sont la seule différence génétique entre les souches hemizygote. De cette façon, il est possible de lier les différences génétiques entre les espèces à une différence phénotypique entre elles dans une configuration expérimentale bien contrôlée. Jusqu’à présent, les applications de ce test ont été dans un cadre candidat-gène, c’est-à-dire, les cas dans lesquels l’hypothèse est déjà en main que la variation naturelle à un locus candidat pourrait avoir un impact sur un trait.

Dans ce qui suit, nous énoncons le protocole pour un écran d’hémizygosity réciproque à l’échelle du génome, en utilisant la levure comme un système modèle. Notre méthode crée un complément génomique de mutants hemizygote, en générant des hybrides F1 viables et stériles entre les espèces et en les soumettant à la mutagénèse transposon. Nous regroupez les hémizygotes, mesurons leurs phénotypes dans des analyses basées sur le séquençage et testons les différences de fréquence entre les clones de la piscine portant les allèles des deux parents d’un gène donné. Le résultat est un catalogue de loci à laquelle les variantes entre les espèces influencent le trait d’intérêt. Nous mettons en œuvre le flux de travail RH-seq pour élucider la base génétique des différences de thermotolérance entre deux espèces de levures en herbe, Saccharomyces cerevisiae et S. paradoxus, qui a divergé il y a 5 millions d’années6.

Protocol

1. Préparation du plasmide contenant du piggyBac pour la transformation Streak out à des colonies simples de la souche E. coli hébergeant plasmide pJR487 sur une plaque d’agar LB carbenicillin. Incuber pendant 1 nuit à 37 oC ou jusqu’à l’apparition de colonies uniques.REMARQUE: Une description de la façon dont plasmid pJR487 a été cloné peut être trouvé dans notre travail précédent3. Inoculer 1 L de LB et de carbenicilline à 100 g/mL avec une seule co…

Representative Results

Nous avons accouplé S. cerevisiae et S. paradoxus pour former un hybride stérile, que nous avons soumis à la mutagénèse transposon. Chaque clone mutagénaire était un hémizygote, un hybride diploïde dans lequel un allèle d’un gène est perturbé (Figure 1A, Figure 2). Nous avons rivalisé les hemizygotes les uns contre les autres par la croissance à 39 oC et, dans une expérience distincte comme un contrôle, à 28 oC…

Discussion

Les avantages de RH-seq par rapport aux méthodes statistiques-génétiques précédentes sont plusieurs fois. Contrairement à l’analyse des liens et des associations, RH-seq offre une résolution de cartographie monogène; en tant que tel, il sera probablement d’une utilité significative, même dans les études de la variation des traits entre les individus d’une espèce donnée, ainsi que des différences interspécifiques. En outre, les tentatives précédentes à l’analyse réciproque de l’hémizygosité à l’éche…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions J. Roop, R. Hackley, I. Grigoriev, A. Arkin et J. Skerker pour leur contribution à l’étude originale, F. AlZaben, A. Flury, G. Geiselman, J. Hong, J. Kim, M. Maurer et L. Oltrogge pour l’assistance technique, D. Savage pour sa générosité avec la microscopie et B. Blackman, S. Coradetti, A. Flamholz, V. Guacci, D. Koshland, C. Nelson et A. Sasikumar pour les discussions; nous remercions également J. Dueber (Department of Bioengineering, UC Berkeley) pour le plasmide PiggyBac. Ces travaux ont été soutenus par R01 GM120430-A1 et par le projet de séquençage communautaire 1460 à RBB au U.S. Department of Energy Joint Genome Institute, un bureau du DOE de l’installation des utilisateurs des sciences. Les travaux menés par ce dernier ont été appuyés par le Bureau des sciences du département de l’Énergie des États-Unis en vertu du contrat no. DE-AC02-05CH11231.

Materials

1-2 plasmid Gigaprep kits Zymo Research D4204 The number of kits required depends on how efficient your preps are in each kit. This kit comes with 5 individual plasmid prep columns. Run 1 L of saturated E. coli culture through each prep column, as using more than 1 L per column can cause clogging of the prep filter, leading to low yield and poor quality DNA.
10X Tris-EDTA (TE) buffer (100 mM Tris-HCl and 10 mM EDTA) Any N/A Filter sterilize through a 0.22 μm filter before use.
1M LiOAc Any N/A Filter sterilize through a 0.22 μm filter before use.
300 mg/mL Geneticin (G418) Gibco 11811023
52% polyethylene glycol (PEG) 3350 Sigma 1546547 Dissolve in water and filter sterilize through a 0.22 μm filter before use. 1X trafo mix: 228 uL 52% PEG, 36 uL 1M LiOAc, 36 uL 10X TE buffer
Autoclaved LB liquid broth BD Difco 244620 Make LB liquid broth using your powder from any brand, and milliQ water. Autoclave it before use.
Carbenicillin stock in water (100 mg/mL) Any N/A Filter sterilize through a 0.22 μm filter before use.
Complete synthetic agar plates (24.1cm x 24.1cm) with 5-fluoroorotic acid (5-FOA) [0.2% drop-out amino acid mix without uracil or yeast nitrogen base (YNB), 0.005% uracil , 2% D-glucose, 0.67% YNB without amino acids, 0.075% 5-FOA] 5-FOA: Zymo Research, Drop-out mix: US Biological, Uracil: Sigma, D-glucose: Sigm), YNB: Difco 5-FOA: F9001-5, Drop-out mix: D9535, Uracil: U0750, D-glucose: G8270, YNB: DF0919
DMSO Any N/A
E. coli strain carrying pJR487 (CEN-/ARS+ piggyBac-containing plasmid) N/A N/A Request from Brem lab.
Hybrid yeast strain JR507 (S. cerevisiae DBVPG1373 x S. paradoxus Z1, URA-/URA-) N/A N/A Request from Brem lab.
Illumina Hiseq 2500 used for SE-150 reads
Large shaking incubators with variable temperature settings Any N/A
LB + carbenicillin agar plates (100 μg/mL) Agar: BD Difco Agar: 214010 Make LB agar plates as normal and add carbenicillin to 100 μg/mL before drying.
Nanodrop spectrophotometer Thermo Scientific ND-2000
Qubit Fluorimeter Thermo Scientific Q33240
Salmon sperm DNA Invitrogen 15632011
Water bath at 39°C Any N/A
Yeast fungal gDNA prep kit Zymo Research D6005
Yeast peptone dextrose (YPD) liquid media BD Difco Peptone: 211677, Yeast Extract: 212750 Add filter-sterilized D-glucose to 2% after autoclaving.
YPD + G418 agar plates (300 μg/mL) Agar: BD Difco Agar: 214010 Make YPD agar plates as normal and add G418 to 300 μg/mL before drying.
YPD agar plates Agar: BD Difco Agar: 214010

Referências

  1. Flint, J., Mott, R. Finding the molecular basis of quantitative traits: successes and pitfalls. Nature Reviews Genetics. 2, 437-445 (2001).
  2. Allen Orr, H. The genetics of species differences. Trends in Ecology and Evolution. 16, 343-350 (2001).
  3. Weiss, C. V., et al. Genetic dissection of interspecific differences in yeast thermotolerance. Nature Genetics. 50, 1501-1504 (2018).
  4. Stern, D. L. Identification of loci that cause phenotypic variation in diverse species with the reciprocal hemizygosity test. Trends in Genetics. 30, 547-554 (2014).
  5. Steinmetz, L. M., et al. Dissecting the architecture of a quantitative trait locus in yeast. Nature. 416, 326-330 (2002).
  6. Scannell, D. R., et al. The Awesome Power of Yeast Evolutionary Genetics: New Genome Sequences and Strain Resources for the Saccharomyces sensu stricto Genus. G3 (Bethesda). 1, 11-25 (2011).
  7. Wetmore, K. M., et al. Rapid quantification of mutant fitness in diverse bacteria by sequencing randomly bar-coded transposons. MBio. 6, e00306-e00315 (2015).
  8. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biology. 15, 550 (2014).
  9. Wilkening, S., et al. An evaluation of high-throughput approaches to QTL mapping in Saccharomyces cerevisiae. Genética. 196, 853-865 (2014).
  10. Kim, H. S., Huh, J., Riles, L., Reyes, A., Fay, J. C. A noncomplementation screen for quantitative trait alleles in saccharomyces cerevisiae. G3 (Bethesda). 2, 753-760 (2012).
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Citar este artigo
Weiss, C. V., Chuong, J. N., Brem, R. B. Genetic Mapping of Thermotolerance Differences Between Species of Saccharomyces Yeast via Genome-Wide Reciprocal Hemizygosity Analysis. J. Vis. Exp. (150), e59972, doi:10.3791/59972 (2019).

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