ここに提示される、血管および他の管状構造のティッシュ工学のために適した中空足場の1ステップの製造のための簡単な使用、コア/シェル、三次元バイオプリンティングの組み立てである。
コア/シェルフィラメントの3次元(3D)印刷により、液体コアとの界面で架橋された安定したシェルを持つチャネル構造を直接製作できます。後者は、中空チューブの後に残って、ポスト印刷を削除されます。添加物製造技術(ここで説明したような、天然細胞外マトリックス[ECM]を構造的かつ生化学的に模倣するテーラーメイド[bio]インクと同様に)を統合することは、高度な組織工学に向けた重要なステップです。ただし、明確に定義された構造の正確な製造には、使用中の材料用に最適化されたカスタマイズされた製造戦略が必要です。したがって、カスタマイズ可能で使いやすく、幅広い材料やアプリケーションと互換性のあるセットアップから始めるのが賢明です。この仕事は、明確に定義された、アルギネートベースの足場材料製剤でテストされた木質杭構造のコア/シェル印刷を探索するために、ルアー互換性を持つ製造しやすいコア/シェルノズルを提示します。
間違いなく、組織工学(TE)の究極の目的は、人体1、2、3の傷ついた部分を再生または置換するために使用することができるインビトロで機能組織または器官を産生することである。組織工学(TE)の現在の研究は、分野の個々の側面(足場材料、製造手順、細胞源など)に焦点を当てています。4、5、ならびに生体内の基本的な側面を模倣する組織および器官の単純なインビトロモデルを開発する。このようなモデルは、薬物スクリーニングや毒性研究などの多くの用途に既に有用であり、特に従来の2D細胞培養が天然組織の動的応答を模倣できない場合には6、7、 8,9.インビトロモデルの三次元モデルは、通常、細胞10、物理化学的手がかり11、および生体活性分子12、13を組み合わせて構築される。脱細胞組織または生物学的または生体適合性材料14、15、16、17、18からデノボを構築。
足場は、生体内組織19を代表する設計組織の機能性を可能にするために、複雑な3Dマイクロアーキテクチャとネイティブ組織の階層構造を要約することが重要である。TE の著しい技術進歩にもかかわらず、生理学的に関連する人工組織構造の開発は依然として課題です。厚い組織(>200 μmの厚さ)は、酸素および栄養拡散20などの制限のために特に問題がある。より大きな組織構造に向けた進歩がなされた。しかし、酸素や栄養素を輸送し、廃棄物除去を促進するためには、血管に細胞の高い近接性が必要です。組織の血管化(または組織構造内の相互接続された3D血管ネットワークの製造)は、細胞の生存率を維持し、体外的に設計された組織の機能を促進する上で重要な役割を果たします。長期実験におけるモデル21,22.さらに、必要な分解能、構造的完全性、および同時生体適合性は、まだ23を達成していない。
いくつかのTEアプローチは、血管のような構造を構築し、インビトロでの血管化を容易にする試みで提案されている。いくつかの例は、微小血管ネットワーク24を生成するために自己集めする内皮細胞(また、線維芽細胞などの他の細胞と共培養)、血管前駆細胞および内皮細胞を促進するペリサイトの使用を含む成長21,25,血管形成を誘発する血管新生成長因子の送達 20,26, 血管層20の制御を可能にする細胞シート技術を用いて、血管新生を促進する非常に多孔質の足場構造27.前述のアプローチは血管新生誘導に焦点を当てており、一般的にかなりの量の追加成長因子(例えば、VEGF)と形成する時間を必要とする。しかし、最大の欠点は、血管パターンに対する再現性が限られ、空間的に制限された空間制御であり、通常、必ずしも灌流を容易にしないとは限らない組織構造内のランダムな血管系分布をもたらす。
添加剤製造(AM、3Dバイオプリンティングなど)は、TEに適した足場を作るために、生物学的または生体適合性の材料を使用した3D構造の製造にますます関与しています。いくつかのAMアプローチが並行して使用され、開発されている(例えば、インクジェットおよびマイクロエクスションベースの方法、異なるタイプのリソグラフィ技術)。.個々の技術は、特定の長所と短所28を示し、様々な修飾(例えば、マイクロパターニング、誘発血管新生など)が、大きく、複雑で安定した血管の程度を増加させる理由であるネットワークは22、29、30を製造することができる。
これらの中で、押出バイオプリンティングは、特に互換性のある材料の広い範囲(一般的に細胞に優しいプロセス28、31、32)だけでなく、例外的な汎用性のために、最も一般的に使用される方法ですアプリケーションの用語(例えば、埋め込みおよび犠牲印刷23、33、中空構造34、35等の製造)。現在の研究に取り組む主な課題は、2Dから3D構造への移動、高い空間分解能を持つ中空管の密集したネットワークの形成、細胞培養における流体流れの間の全体的な機械的完全性と形状忠実性などです。条件30.
説得可能な組織への最も簡単なアプローチは、コンストラクト内のチャネルの相互接続されたネットワークの製造です。組織足場内にこのようなパーフューズ可能なチャネルを作ることは、廃棄物を除去しながらすぐに栄養と酸素の拡散を可能にするので、前述の問題の多くを解決することが期待されます。したがって、構築物内の壊死領域の潜在的な形成は回避される36.このようなチャネルは、さらに内皮細胞(IC)で播種され、3D組織モデル37における人工血管として機能してもよい。最も基本的な意味では、容器は中空チャネル、ICの柔らかい層、および堅い貝で構成することができる。最近では、押出のための共軸針を利用したコア/シェル方形の2つの異なる材料の3D押出は、38、39、40、41の製作を可能にするように、多くの関心を得ています。中空の管。
従来のマイクロエクスルーション3D印刷と同様に、コア/シェル印刷は、同軸ノズル(例えば、同じ軸上に異なる直径を持つ2本の針を同じ軸に位置合わせし、より広い針が狭い針を囲む)で行われます。したがって、2つの材料は、中央フィラメントまたは「内側」コアとして、第2は「外側」シェル41として、同時に押し出すことができる。現在までに、共軸バイオプリンティングは、固体42、コア/シェル43、および中空ストランド40、44を有する構造を製造するために利用されてきた。しかし、使用される材料は、印刷された構造体の最適な細胞の生存率と機械的な堅牢性の両方のために最適化されていません。前述のように、この技術は、より硬いものが柔らかいものをサポートする異なる機械的特性を持つバイオマテリアルを組み合わせる可能性を提供します。さらに重要なのは、足場材料(例えば、アルギン酸塩、カルボキシメチルセルロース)がシェルとして押し出され、架橋剤で構成されるコア(例えば、塩化カルシウム)が内側の毛細管から分配され、その後、印刷後にすすり出される場合、単一のステップ45で連続的な中空管を作製することができる。
このことを念頭に置いて、血管構造および他の管状組織の工学のための明確で、説得可能な足場を造るために、簡単で反復可能なワンステップ法が開発された。費用対効果の高い技術を開発するには、製造は理想的には単一ステップのプロセスでなければなりません。したがって、コア/シェルのセットアップを3Dバイオプリンタに適応し、統合しました。基本的な設計は、より大きな直径の第2のノズルが置かれる注入の間に変形を避けるために金属から成っている中央ノズルから成っている。このような共軸ノズルのセットアップは、押し出されたヒドロゲルチャネルの2つの流れの共押出および即時架橋を可能にする。これにより、多層中空フィラメントの直接製造が可能となり、その後の塩化カルシウム(CaCl2)濃度の高いクロスリンクにより、外部からのより永続的な安定化が保証されます。
したがって、この方法は、中空ヒドロゲルフィラメントが3D構造の機械的完全性をサポートする足場として機能し、同時に提供する内蔵マイクロチャネルとして機能する足場とマイクロチャネルの同時印刷を可能にします。細胞増殖のための栄養素。このプロトコルは、内蔵チャネルを持つヒドロゲル3D構造が中空フィラメントを生成するために架橋を制御することによって製造されるカスタムメイドのコ軸ノズルの使用に基づいて、コア/シェル3Dバイオプリンティング戦略の詳細な手順を提供し、細胞培養中に説得可能なままである。
この作品で使用される3D印刷セットアップは、バノヴィッチとVihar46によって前述したように構成され、3つの主要なコンポーネントに分けることができます:A)X、Y、およびZ方向で50 μmの位置決め精度を持つ3軸CNC機械セットアップ。B)2つの押出機、使い捨て、1.2 μLボクセル分解能の5 mLルアーロックシリンジに適合。とC)エレクトロニクスとソフトウェアを制御します。
コア/シェル印刷を容易にするために、押出機(一次押出機、コアを印刷)の1つに取り付けることができ、G27鈍い端針と互換性のある適切なノズルが開発されました。また、2番目の押出機(シェルを印刷)に接続するためのluerロック互換性を持っています。最初のプロトタイプは、鈍い端のG27針(内径= 210 μm、外径= 410 μm)をG21針(内径=510μm、外径=820μm)またはG20円錐先端(内径=600μm)に挿入して製作し、次に二次nを挿入した。シェル材料を供給するために横にeedle。しかし、針シャフトのわずかな曲げのために、内側と外側の針の同心円位置を有するノズル先端を作り出すことはできない。
この問題を解決するために、次の基準を満たす新しいノズル設計が考案されました:1)3軸CNCミルを使用して製造することができ、2)様々な材料(PEEKや金属などの高性能プラスチック)から作ることができる、3)ルアロック互換性を有しています。シェル材料を適用するための4)は、G27鈍い端針に互換性があり、先端を中心軸に位置合わせするために2つの位置に保持します。ノズルプロトタイプの回路図を図 1 に示します。
ノズル設計
開発されたコア/シェルノズルを使用して、2押出機Vitaprintシステムに統合され、中空、管状足場は、単一ステッププロセスで製造されました。準備された足場のほとんどを通して管壁の均等な厚さを達成するために、針は外側の押出リングの軸の上に中央に置かれる必要がある。標準的なゲージの針は、多くの場合、軸からわずかな、まだ有意な偏心を示します。したがって、ノズル本体は、針を2箇所に保持するように設計され、一番上(ハブを固定)、最終コア/シェルチャンバーの前に1回(カニューレ自体を固定する)、軸方向の位置合わせを補正します。軸線形の精度は、固定点間の距離に伴って増加します。しかし、針の長さと利用可能なノズルチャンバーの容積との間のトレードオフがあります。セットアップの機能をさらに改善するために、ノズルの特定の変更を実装することができます:A)安定性を向上させたノズルマウント、B)針の互換性の広い範囲のための追加のノズル、C)針のための正確な調整機構ノズルの位置決め、およびD)は、その場の材料準備のための追加の入力およびマイクロ流体装置を統合する。
ヒドロゲル最適化
最適な ALG:CMC 比を決定するために、いくつかの材料反復を評価しました。一般に、両方の成分の3重量.%を超える濃度を有するコア/シェル印刷は、連続的なヒドロゲル流を可能にしなかったり、ノズルの詰まりをもたらしたため、不可能とレンダリングされた。具体的には、3重量%を超えるALG濃度が過度に粘度を増加させ、ノズル詰まりをもたらし、ALG濃度の低下とCMC(>3 wt.%)濃度の上昇により、架橋時間が遅くなり、十分な供給ができなかった。足場の構造サポート。コア/シェル印刷は、より少ない粘性製剤で可能でした。しかし、押し出されたゲル粘度は、長期的な形状忠実性を維持するのに十分でなければなりません。最終的に、1:1 ALG:CMC比は、Maver etal.49による以前の研究を確認する最も適した選択であることが証明された。NFCの追加により、コア/シェルプリント足場の印刷性と構造剛性が大幅に向上しましたが、材料の架橋特性に大きな影響を与えはありませんでした。
特定の細胞タイプと実験的なセットアップに最適化されたカスタムアプリケーションは、組成と架橋機構が異なる適切に調整された足場材料を必要とします。本研究で説明する方法は、Ca2+イオンを使用してイオン上でイオン化されたアルギン酸セルロース混合ポリマー溶液に基づいている。アルギネート自体は、(1,4)連結β-d-マンロネート(M)およびα-l-グルロン酸(G)残基のブロックの線形ポリマーであり、Ca2+およびSr2+、Br2+、Mgなどの他の解元陽イオン結合によって可逆的にイオン的に架橋することができる2+.それにもかかわらず、アルギン酸塩の架橋のために最も広く使用されているイオンは、CaCl 2の形でCa2+のままである。Ca2+は、CaSO4または CaCO3の形式でも使用できます。しかし、CaCl2に対するCaSO4の低溶解度は、ゲル化が遅くなることを意味する。 CaCO3は弱く、一貫性のない機械的特性をもたらす可能性があるさらに遅いゲル化時間を生み出します。
通常、ゲル化時間が長いほど均質な構成が生成されますが、コア/シェル印刷などの特定のアプリケーションでは、高速ゲル化率50が必要です。Mg2+イオンもゲル化を誘発します。しかし、その架橋効率はCa2+と比較して約5x-10x低く、2-3 hの架橋時間を持つ。さらに、マグネシウムイオンはグルロン単位に対してより選択的であり、したがって架橋はALG51の化学組成により依存する。この場合、中空構造が崩壊する前に連続的な中空チャネル形成を確保するためには、高速ゲル化速度が不可欠です。CaCl2は中空フィラメントの直接堆積のために重要である最も速いゲル化率を生み出す。100mMCaCl2を利用し、ノズル内のゲル固化を引き起こさずに中空フィラメントの連続形成を十分に安定化させた。
足場の印刷と後処理
1)3Dバイオプリンターを含むすべての溶液および材料が印刷前に適切に殺菌されることを含め、プロセスのこの部分で次の手順を考慮する必要があります。2)ヒドロゲルを調製する場合、連続印刷には材料の均質性が重要です。不純物や気泡の導入は、ノズルを詰まらせたり、押し出しを妨害したりする可能性があるため、避ける必要があります。3)シリンジは、ルアーロック機構を介してコア/シェルノズルに正しく接続し、図2A、Bに見られるように押出機マウントに正しく挿入する必要があります。4)複雑な構造を印刷する前に、コア/シェルノズル内の余分な気泡をクリアし、連続的なヒドロゲルの流れを確保するために、ゲルと架橋液の小さな部分を事前に押し出すことをお勧めします。これは、再現性を向上させるためにgコードに直接組み込むことができます。5)足場自体の印刷が開始される前に均質な中空フィラメントの敷設を確保するために足場を囲むスカートを追加することが有用です。
さらに、6)印刷フィラメントと基板との接着性を向上させるために、良好な接着性を持つ平らな表面(すなわち、ガラススライドまたはペトリ皿)を使用することをお勧めします。7)押出ノズルは、ヒドロゲルの中断のない流れを可能にするために基板と直接接触してはなりません。初期距離は印刷の品質に大きな影響を与えますが、押し出されたフィラメントの厚さは初期設定の近似性が高くなります。8)gコードの開始印刷の高さは、個々のニーズに応じて調整する必要があります。印刷パラメータを最適化した後、スキャフォールド g コードを Planet CNC ソフトウェアにインポートし、プロトコルで説明されているように印刷プロセスを開始する必要があります。9)最適な足場を印刷する意図でヒドロゲルの流れを制御し、最適化するために、製剤組成物と印刷パラメータの両方を変更する必要があります(すなわち、印刷速度、押出圧、印刷温度、基板間の距離と押し出しノズル、層の高さ、足場のサイズなど)。
一般に、より高い粘度を持つ製剤を印刷するには、より高い流量が必要です。前述のように、即時の化学的架橋に適したすべてのヒドロゲル製剤は、中空チューブのワンステップ製造を可能にし、記載されたコア/シェルセットアップで使用してもよい。印刷および架橋メカニズムは、それに応じて最適化する必要があります。印刷後、すべての足場は5 wt.%CaCl2溶液との二次架橋によって後処理され、ALG-CMC成分の完全な架橋を保証し、少なくとも30分間UV光の下で両側から殺菌した。足場を架橋液で完全に巻き込み、架橋プロセスを完了するのに十分な長さのためにインキュベートする必要があります。後処理は、あらかじめ考慮する必要がある材料と架橋機構によって異なります。後処理後、足場を基板から慎重に除去し、細胞培養培地に移し、細胞播種前に少なくとも24時間制御された雰囲気でインキュベートする必要があります。無色の媒体を使用すると、足場への注入中の細胞懸濁液の可視性を向上させます。
ライブ/デッドアッセイ
生きた/死んだ溶液は、漂白しやすい蛍光色素が含まれているため、アッセイを行う前に直接準備し、アッセイを行う前に暗闇の中に保管する必要があります。所望のインキュベーション時間の後、細胞培養培養培養培養物は足場を取り囲んで慎重に廃棄し、PBSですすいでください。理想的には、同じエントリポイントを細胞の播種に使用し、その後に生/死済みアッセイを足場に注入する必要があります。
結果の重要性
ALGとCMCの両方は、既にインビトロで血管新生を促進するために使用されています。ECM模倣機能、物理的な架橋、および生体適合性に基づいて、ALGは一般的に血管新生成長因子(例えば、bFGF、HGF、VEGF164、およびAng-1*)52の送達および制御放出のためのコンポーネントとして採用されている。、53、54。さらに、ゼラチンと組み合わせて、CMCは、生理学的条件下での急速な架橋能力に起因する血管内皮細胞の封入にも用いられている55。NFCは、足場の機械的安定性と形状忠実度をさらに高めるために添加されました。目的は、血管を強化することではなく、コア/シェルの方法で印刷された、機能可能な中空のALG-CMC足場を生産する可能性を実証することではなく、添付性と増殖を促進することを強調する必要があります。ヒューヴェックALG-CMC混合物を使用する選択は、中空チャネルのコア/シェル印刷を可能にする一般的に使用され、簡単にアクセス可能で、生体適合性の基材の所見に基づいていました。他の多くの材料は、血管新生を高めるためのより実行可能なオプションである可能性があります。しかし、一部は、このアプローチで重要である迅速なゲル化/架橋を容易にしないため、コア/シェル印刷には適していません。
The authors have nothing to disclose.
著者らは、スロベニア研究機関(助成番号:P3-0036、I0-0029)と科学教育スポーツ省(助成番号:5442-1/2018/59)から受け取ったこのプロジェクトの財政的支援を認めたいと思います。
Alginic acid sodium salt | Sigma-Aldrich (Germany) | 180947 | powder; Mw ~80,000 |
ATTC HUV-EC-C [HUVEC] | LGC Standards (UK) | ATCC-CRL-1730 | Endothelial Cell Growth Supplement (ECGS) and unidentified factors from bovine pituitary, hypothalamus or whole brain extracts are mitogenic for this line; the cells have a life expectancy of 50 to 60 population doublings. |
Axiovert 40 inverted optical microscope | Carl Zeiss Microscopy GmbH (Germany) | three contrastingtechniques in one objective – e.g. brightfield,phase contrast and PlasDIC | |
Calcium chloride | Sigma-Aldrich (Germany) | C1016 | anhydrou; granular; ≤7.0 mm; ≥93.0% |
Cellulose nanofibrils suspension (NFC, 3% (w/v)) | The Process Development Center, University of Maine (Maine, USA) | nominal fiber width of 50 nm; lengths of up to several hundred microns | |
ELGA Purelab water purification system | Veolia Water Technologies (UK) | ||
EVOS FL Cell Imaging System | ThermoFisher Scientific Inc. (Germany) | AMF4300 | a fully integrated, digital, inverted imaging system for four-color fluorescence and transmitted-light applications |
Gibco Advanced Dulbecco’s modified Eagle’s medium (Advance DMEM) | ThermoFisher Scientific Inc. (Germany) | 12491015 | high glucose; no glutamine; phenol red |
Gibco Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) | ThermoFisher Scientific Inc. (Germany) | 21063029 | high glucose; L-glutamine; HEPES; no phenol red |
Gibco Fetal Bovine Serum (FBS), qualified | ThermoFisher Scientific Inc. (Germany) | 10270106 | FBS origin: Brazil; 5 % (w/v) FBS |
Hypodermic Sterican needle | B. Braun Melsungen AG (Germany) | 9180117 | 0.40 x 25mm, 27G x 1'' |
L-glutamine | Sigma-Aldrich (Germany) | G3126 | ReagentPlus®, ≥99% (HPLC) |
Live/Dead Cell Double Staining Kit | Sigma-Aldrich (Germany) | 4511 | contains calcein-AM and propidium iodide (PI) solutions; suitable for fluorescence |
Nunc EasYFlask cell culture flasks | ThermoFisher Scientific Inc. (Germany) | 156367 | Nunclon Delta certified for monolayer formation, cloning efficiency, non-cytotoxic, non-pyrogenic, and sterility; filter caps; culture area of 25 cm2 |
Omnifix syringe | B. Braun Melsungen AG (Germany) | 4617053V | 5 mL Luer Lock |
Penicillin G sodium salt | Sigma-Aldrich (Germany) | P3032 | powder; BioReagent; suitable for cell culture |
Phosphate buffered saline | Sigma-Aldrich (Germany) | P4417 | tablet; one tablet dissolved in 200 mL of deionized water yields 0.01 M phosphate buffer, 0.0027 M potassium chloride and 0.137 M sodium chloride, pH 7.4, at 25 °C |
Sodium carboxymethyl cellulose | Sigma-Aldrich (Germany) | 419338 | powder; average Mw ~700,000 |
Streptomycin sulfate salt | Sigma-Aldrich (Germany) | S9137 | powder; BioReagent; suitable for cell culture |
Ultra-pure water | Veolia Water Technologies (UK) | 18.2 mΩ cm at 25⁰C | |
VitaPrint 3D bio-printer | IRNAS (Slovenia) |