Summary

Wide-felt enkelt-photon optisk optagelse i hjernen skiver ved hjælp af spændings følsom Dye

Published: June 20, 2019
doi:

Summary

Vi introducerer en reproducerbar og stabil optisk optagelsesmetode til hjerne skiver ved hjælp af spændings følsom farve. Artiklen beskriver spændings følsom farvning af farvestoffer og registrering af optiske signaler ved hjælp af konventionelle hippocampale skive præparater.

Abstract

Wide-felt enkelt photon spændings følsomt farvestof (VSD) billeddannelse af hjernen skive præparater er et nyttigt redskab til at vurdere den funktionelle konnektivitet i neurale kredsløb. På grund af den fraktioneret ændring i lys signalet, har det været vanskeligt at bruge denne metode som en kvantitativ analyse. Denne artikel beskriver specielle optik-og skive håndteringssystemer, som gør denne teknik stabil og pålidelig. Den nuværende artikel demonstrerer udsnittet håndtering, farvning, og optagelse af VSD-farvede hippocampus skiver i detaljer. Systemet opretholder fysiologiske forhold i lang tid, med god farvning, og forhindrer mekaniske bevægelser af udsnittet under optagelserne. Desuden gør det muligt farvning af skiver med en lille mængde af farvestoffet. Optikken opnår høj numerisk blænde ved lav forstørrelse, hvilket gør det muligt at optage VSD-signalet ved den maksimale billedhastighed på 10 kHz, med 100 pixel x 100-pixel rumlig opløsning. På grund af den høje billedhastighed og rumlige opløsning, tillader denne teknik anvendelse af efter optagelses filtre, der giver et tilstrækkeligt signal-støjforhold til at vurdere ændringerne i neurale kredsløb.

Introduction

Wide-felt enkelt photon spændings følsom farvestof (VSD) Imaging af bulk-farvede hjernen skive præparater er blevet et nyttigt kvantitativt redskab til at vurdere dynamikken i neurale kredsløb1,2,3,4 . Efter analysen af ændringerne i optiske egenskaber på grund af membran excitation5,6,7, VSD Imaging blev først beskrevet i begyndelsen af 1970 ‘ erne af Cohen og andre6,8, 9.; Det er en passende metode til at overvåge hjernens funktioner i realtid, da farvestoffet direkte sonerer membranens potentielle ændringer (dvs. det primære signal fra neuronerne).

De tidligste Vsd’er besad de ønskværdige egenskaber til at forstå hjernen systemet, såsom en hurtig tid-konstant til at følge den hurtige kinetik af neuronal membran potentielle hændelser, og linearitet med ændringen i membran potentiale9, 10 stk. , 11 af , 12 ud af , 13 ud af , 14 ud af , 15. svarende til andre Imaging eksperimenter, denne teknik kræver en bred vifte af specifikke tunings, såsom kameraer, optik, software, og skive fysiologi, for at opnå de ønskede resultater. På grund af disse tekniske faldgruber, de forventede fordele under den indledende indsats ikke nødvendigvis materialiserer for de fleste af de laboratorier, der ikke specialiserer sig i denne teknik.

Den primale årsag til de tekniske vanskeligheder var den lave følsomhed af VSD mod membranen potentiel ændring, når den anvendes til bulk farvning af skive præparater. Størrelsen af det optiske signal (dvs. fraktioneret ændring i fluorescens) er normalt 10-4-10-3 af kontrol (F0) signal under fysiologiske forhold. Tidsskalaen for membran potentiel ændring i en neuron er ca. millisekunder til få hundreder af millisekunder. For at måle ændringer i membran potentialet af Neuron, skal kameraet, der anvendes til optagelsen være i stand til at erhverve billeder med høj hastighed (10 kHz til 100 Hz). Den lave følsomhed af VSD og den hastighed, der kræves for at følge det neurale signal kræver en stor mængde lys, der skal indsamles på kameraet ved en høj hastighed, med et højt signal-støj-forhold (S/N)2,16.

Den optik af optagelsen systemet er også et afgørende element for at sikre indsamling af tilstrækkelig lys og til at forbedre S/N. Den forstørrelse opnået ved optikken er ofte alt for lav, såsom 1X til 10X, at visualisere en lokal funktionel neurale kredsløb. For eksempel, at visualisere dynamikken i hippocampus kredsløb, en forstørrelse på ca. 5 ville være egnet. En sådan lav forstørrelse har lav fluorescens effektivitet; Derfor ville avanceret optik være gavnlig for en sådan optagelse.

Desuden er Skive fysiologi også afgørende. Da billedbehandlings analysen kræver, at skiverne skal være intakte, er det nødvendigt med omhyggelig skive håndtering17. Desuden er de foranstaltninger, der er truffet for at opretholde udsnittets levedygtighed i længere tid, vigtige18.

Den nuværende artikel beskriver protokollen til forberedelse af skiver, VSD farvning, og målinger. Artiklen skitserer også forbedringerne til Vsd’er, billedenhed, og optik, og andre yderligere raffinementer til det eksperimentelle system, der har aktiveret denne metode, der skal anvendes som en ligetil, kraftfuld, og kvantitativ analyse til visualisering af ændring af hjernens funktioner19,20,21,22,23,24,25. Teknikken kan også anvendes i vid udstrækning til langsigtede potensering i1-området af hippocampale skiver 1. Desuden er denne teknik også nyttig i optisk optagelse af membran potentialer i en enkelt nerve celle26.

Protocol

Alle dyreforsøg blev udført i henhold til protokoller godkendt af Udvalget for dyrepasning og-brug på Tokushima Bunri Universitet. Følgende protokol til skive forberedelse er næsten en standardprocedure27 , men ændringerne har været protokollerne af farvning og optagelse med VSD. 1. forberedelse før eksperimentets dag Forbered bestanden A (tabel 1), lager B (tabel 2) og lager C (tabel 3) opløsninger o…

Representative Results

Figur 5 viser det repræsentative optiske signal ved elektrisk stimulering af Schaffer-sikkerheden i område carbid af en mus hippocampus skive. De fortløbende billeder i figur 5a viser det optiske signal, før der blev anvendt rumlige og tidsmæssige filtre, mens figur 5b viser de samme data efter påføring af et 5 x 5 x 5 kubik filter (en Gaussisk kerne konvolution, 5 x 5 rumlig-og 5 til tidsmæs…

Discussion

Udsnittet fysiologi er afgørende for at indsamle det rigtige signal. Brugen af ring membranfilter systemet i denne protokol sikrer, at udsnittet forbliver sundt og un-forvrænget under hele proceduren2,16,17. Andre systemer kan bruges til at bevare skive fysiologi under optagelsen, men udsnittet bør ikke blive deformeret på noget tidspunkt, da billeddiagnostik behøver alle dele af udsnittet for at være sundt. Ring-membranfi…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

TT modtog JSPS KAKENHI-tilskuddet (JP16H06532, JP16K21743, JP16H06524, JP16K0038 og JP15K00413) fra MEXT og tilskud fra ministeriet for sundhed, arbejde og velfærd (MHLW-Kagaku-ippan-H27 [15570760] og H30 [18062156]). Vi vil gerne takke Editage (www.editage.jp) for engelsk sprog redigering.

Materials

High speed image acquisition system Brainvision co. Ltd. MiCAM – Ultima Imaging system
High speed image acquisition system Brainvision co. Ltd. MiCAM 02 Imaging system
Macroscepe for wide field imaging Brainvision co. Ltd. THT macroscope macroscope
High powere LED illumination system with photo-diodode stablilizer Brainvision co. Ltd. LEX-2G LED illumination
Image acquisition software Brainvision co. Ltd. BV-ana image acquisition software
Multifunctional electric stimulator Brainvision co. Ltd. ESTM-8 Stimulus isolator+AD/DA converter
Slicer Leica VT-1200S slicer
Slicer Leica VT-1000 slicer
Blade for slicer Feather Safety Razor Co., Ltd. #99027 carbon steel razor blade
Membrane filter for slice support Merk Millipore Ltd., MA, USA Omnipore, JHWP01300, 0.45 µm pores, membrane filter/ 0.45 13
Numerical analysis software Wavemetrics Inc., OR, USA IgorPro analysing software
Stimulation isolator WPI Inc. A395 Stimulus isolator
AD/DA converter Instrutech ITC-18 AD/DA converter
Voltage sensitive dye Di-4-ANEPPS Invitrogen, Thermo-Fisher Scientific, Waltham, MA, USA catalog number: D-1199 VSD: Di-4-ANEPPS
poloxamer Invitrogen, Thermo-Fisher Scientific, Waltham, MA, USA Pluronic F-127 P30000MP poloxamer / Pluronic F-127 (20% solution in DMSO)
polyethoxylated castor oil Sigma-Aldrich Cremophor EL C5135 polyethoxylated castor oil

Referências

  1. Tominaga, Y., Taketoshi, M., Tominaga, T. Overall Assay of Neuronal Signal Propagation Pattern With Long-Term Potentiation (LTP) in Hippocampal Slices From the CA1 Area With Fast Voltage-Sensitive Dye Imaging. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 389 (2018).
  2. Tominaga, T., Kajiwara, R., Tominaga, Y. VSD Imaging Method of Ex Vivo Brain Preparation. Journal of Neuroscience and Neuroengineering. 2 (3), 211-219 (2013).
  3. Homma, R., et al. Wide-field and two-photon imaging of brain activity with voltage- and calcium-sensitive dyes. Methods Mol Biol. 364 (1529), 2453-2467 (2009).
  4. Grinvald, A., Hildesheim, R. VSDI: a new era in functional imaging of cortical dynamics. Nature Reviews Neuroscience. 5 (11), 874-885 (2004).
  5. Tasaki, I., Watanabe, A., Sandlin, R., Carnay, L. Changes in fluorescence, turbidity, and birefringence associated with nerve excitation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 61 (3), 883-888 (1968).
  6. Cohen, L., Keynes, R., Hille, B. Light Scattering and Birefringence Changes during Nerve Activity. Nature. 218 (5140), 438-441 (1968).
  7. Hill, D., Keynes, R. Opacity changes in stimulated nerve. The Journal of Physiology. 108 (3), 278-281 (1949).
  8. Waggoner, A., Salzberg, B., Davila, H., Cohen, L. A Large Change in Axon Fluorescence that Provides a Promising Method for Measuring Membrane Potential. Nature New Biology. 241 (109), 159 (1973).
  9. Salzberg, B., Davila, H., Cohen, L. Optical Recording of Impulses in Individual Neurones of an Invertebrate Central Nervous System. Nature. 246 (5434), (1973).
  10. Cohen, L., lzberg, B., Grinvald, A. Optical Methods for Monitoring Neuron Activity. Annual Review of Neuroscience. 1 (1), 171-182 (1978).
  11. Ross, W. N., Salzberg, B. M., Cohen, L. B., Davila, H. V. A large change in dye absorption during the action potential. Biophysical Journal. 14 (12), 983-986 (1974).
  12. Loew, L. M., Cohen, L. B., Salzberg, B. M., Obaid, A. L., Bezanilla, F. Charge-shift probes of membrane potential. Characterization of aminostyrylpyridinium dyes on the squid giant axon. Biophysical Journal. 47 (1), 71-77 (1985).
  13. Loew, L. M., et al. A naphthyl analog of the aminostyryl pyridinium class of potentiometric membrane dyes shows consistent sensitivity in a variety of tissue, cell, and model membrane preparations. The Journal of Membrane Biology. 130 (1), 1-10 (1992).
  14. Mullah, S., et al. Evaluation of Voltage-Sensitive Fluorescence Dyes for Monitoring Neuronal Activity in the Embryonic Central Nervous System. The Journal of Membrane Biology. 246 (9), 679-688 (2013).
  15. Momose-Sato, Y., Sato, K., Arai, Y., Yazawa, I., Mochida, H., Kamino, K. Evaluation of Voltage-Sensitive Dyes for Long-Term Recording of Neural Activity in the Hippocampus. Journal of Membrane Biology. 172 (2), 145-157 (1999).
  16. Tominaga, T., Tominaga, Y., Yamada, H., Matsumoto, G., Ichikawa, M. Quantification of optical signals with electrophysiological signals in neural activities of Di-4-ANEPPS stained rat hippocampal slices. Journal of Neuroscience Methods. 102 (1), 11-23 (2000).
  17. Tominaga, T., Ichikawa, M. Experimental apparatus for sliced specimen of biological tissue and specimen holder. US Patent. , (2002).
  18. Buskila, Y., Breen, P. P., Tapson, J., van Schaik, A., Barton, M., Morley, J. W. Extending the viability of acute brain slices. Scientific Reports. 4 (1), srep05309 (2015).
  19. Tanemura, K., et al. Neurodegeneration with Tau Accumulation in a Transgenic Mouse Expressing V337M Human Tau. Journal of Neuroscience. 22 (1), 133-141 (2002).
  20. Tominaga, Y., Ichikawa, M., Tominaga, T. Membrane potential response profiles of CA1 pyramidal cells probed with voltage-sensitive dye optical imaging in rat hippocampal slices reveal the impact of GABAA-mediated feed-forward inhibition in signal propagation. Neuroscience Research. 64 (2), 152-161 (2009).
  21. Suh, J., Rivest, A. J., Nakashiba, T., Tominaga, T., Tonegawa, S. Entorhinal Cortex Layer III Input to the Hippocampus Is Crucial for Temporal Association Memory. Science. 334 (6061), 1415-1420 (2011).
  22. Juliandi, B., et al. Reduced Adult Hippocampal Neurogenesis and Cognitive Impairments following Prenatal Treatment of the Antiepileptic Drug Valproic Acid. Stem cell reports. 5 (6), 1-14 (2016).
  23. Stepan, J., Dine, J., Eder, M. Functional optical probing of the hippocampal trisynaptic circuit in vitro: network dynamics, filter properties, and polysynaptic induction of CA1 LTP. Frontiers in Neuroscience. 9, 160 (2015).
  24. Tominaga, Y., Taketoshi, M., Tominaga, T. Overall Assay of Neuronal Signal Propagation Pattern With Long-Term Potentiation (LTP) in Hippocampal Slices From the CA1 Area With Fast Voltage-Sensitive Dye Imaging. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 389 (2018).
  25. Kajiwara, R., Tominaga, Y., Tominaga, T. Network Plasticity Involved in the Spread of Neural Activity Within the Rhinal Cortices as Revealed by Voltage-Sensitive Dye Imaging in Mouse Brain Slices. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 20 (2019).
  26. Popovic, M., Gao, X., Zecevic, D. Voltage-sensitive dye recording from axons, dendrites and dendritic spines of individual neurons in brain slices. Journal of visualized experiments. , (2012).
  27. Sakmann, B., Stuart, G. . Single-Channel Recording. , (1995).
  28. Tominaga, T., Tominaga, Y., Ichikawa, M. Optical imaging of long-lasting depolarization on burst stimulation in area CA1 of rat hippocampal slices. Journal of neurophysiology. 88 (3), 1523-1532 (2002).
  29. Mennerick, S., et al. Diverse Voltage-Sensitive Dyes Modulate GABAAReceptor Function. The Journal of Neuroscience. 30 (8), 2871-2879 (2010).
  30. Canitano, R., Pallagrosi, M. Autism Spectrum Disorders and Schizophrenia Spectrum Disorders: Excitation/Inhibition Imbalance and Developmental Trajectories. Frontiers in Psychiatry. 8, 69 (2017).
  31. Anticevic, A., Murray, J. D. Rebalancing Altered Computations: Considering the Role of Neural Excitation and Inhibition Balance Across the Psychiatric Spectrum. Biological Psychiatry. 81 (10), 816-817 (2017).
  32. Busche, M., Konnerth, A. Impairments of neural circuit function in Alzheimer’s disease. Phil. Trans. R. Soc. B. 371 (1700), 20150429 (2016).
  33. Knöpfel, T. Genetically encoded optical indicators for the analysis of neuronal circuits. Nature Reviews Neuroscience. 13 (10), 687 (2012).
  34. Knöpfel, T. Expanding the toolbox for remote control of neuronal circuits. Nature Methods. 5 (4), 293 (2008).
  35. Tominaga, T., Tominaga, Y. A new nonscanning confocal microscopy module for functional voltage-sensitive dye and Ca2+ imaging of neuronal circuit activity. Journal of Neurophysiology. 110 (2), 553-561 (2013).

Play Video

Citar este artigo
Tominaga, Y., Taketoshi, M., Maeda, N., Tominaga, T. Wide-field Single-photon Optical Recording in Brain Slices Using Voltage-sensitive Dye. J. Vis. Exp. (148), e59692, doi:10.3791/59692 (2019).

View Video