Summary

En menneskelige blod-hjerne Interface Model til at studere barriere overfarter af patogener eller lægemidler og deres interaktioner med hjernen

Published: April 09, 2019
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol om fastsættelse af en i cellulo BBB (blod-hjerne barrieren)-Minibrain polyester porøse membran kultur indsætte system for at evaluere transport af biomolekyler eller infektiøse agenser på tværs af en menneskelig BBB og deres fysiologisk indvirkning på de nærliggende hjerneceller.

Abstract

Den tidlig screening af nervesystemet medicin på en relevant og pålidelig i cellulo BBB model for deres udbredelse og deres interaktion med barrieren og hjernen parenkym er stadig et udækket behov. For at udfylde dette hul, designet vi en 2D i cellulo model, BBB-Minibrain, ved at kombinere en polyester porøse membran kultur Indsæt menneskelige BBB model med en Minibrain dannet af en tri-kultur af human hjernecellerne (neuroner, astrocytter og microglial celler). BBB-Minibrain tillod os at teste transport af en neuroprotektive lægemiddelkandidat (f.eks. Neurovita), gennem BBB, at bestemme den specifikke målretning af dette molekyle til neuroner og vise, at egenskaben neuroprotektive af stoffet blev bevaret efter stoffet havde krydset BBB. Vi har også vist, at BBB-Minibrain udgør en interessant model til at opdage passage af viruspartikler i endothelial celler barriere og overvåge infektion af Minibrain af neuroinvasive viruspartikler. BBB-Minibrain er et pålideligt system, let at håndtere for forsker uddannet i celle kultur teknologi og intelligent af hjernen celler fænotyper efter behandling eller fornærmelse. Sådan interesse i cellulo test ville være dobbelt: Introduktion derisking trin tidligt i stof udvikling på den ene side og reducere brugen af dyreforsøg på den anden side.

Introduction

Hjernen er adskilt fra den systemisk cirkulationen af en ikke-gennemtrængelige struktur, der begrænser udvekslinger mellem hjernen parenkym og blodet, kaldet blod – hjerne barrieren (BBB). For det meste består af cerebral endotelceller, interagerer BBB dynamisk med astrocytter, perivascular mikroglia og neuroner i den nærliggende hjernen parenkym. De tre hovedfunktioner af BBB er oprettelse og vedligeholdelse af Ioniske homøostase for neuronal funktioner, levering af hjernen med næringsstoffer og beskyttelse fra giftige skader eller optagelse af patogener1,2, som bidrager til vedligeholdelse af hjernen homøostase og dens funktioner3. Denne barriere er så effektiv, at kun få stoffer kan krydse BBB4,5. I øjeblikket består de tilgængelige metoder til at forudsige, om et molekyle vil passere BBB og diffuse ind i hjernen af ex vivo undersøgelser om obduktion materiale, billede sporing i hjernen af menneskers frivillige af Mr (magnetisk resonans imaging) eller PET (position emission tomografi) eller farmakodynamik og farmakokinetiske prækliniske undersøgelser i dyr6,7,8. Disse teknikker og modeller har nogle begrænsninger, såsom begrænset løsning af PET og Mr6,8, er vanskeligheden at kvantificere molekyler (dvs. antistof baseret molekyler for eksempel) så dårligt lav følsomhed trænge ind i hjernen7, og for de prækliniske undersøgelser deres høje omkostninger og resort i dyreforsøg.

Det sidste punkt er vigtigt, fordi ifølge 3R’s regler, (, og erstatning af dyreforsøg) de regulerende myndigheder har anmodet om, at forskerne hurtigst muligt udvikle videnskabeligt nøjagtig alternativ til dyr eksperimenter9,10,11,12,13,14,15.

I de sidste årtier, flere in vitro-modeller af BBB er blevet foreslået16,17,18 ved at dyrke på filter membran indsætter endotelceller fra forskellige arter såsom mus, rotte, kvæg og svin. Hvad angår den menneskelige art, bedt den knappe og vanskelige tilgængelighed af primærelementer forskere til at udvikle menneskelige modeller baseret på udødeliggjort hjernen endotelceller eller menneske-afledte stamceller19,20, 21. Disse hindringer er ordentlig in vitro-surrogater af BBB, forudsat at de udtrykker endotel celle markører, tight junction markører, efflux transportvirksomheder, opløste luftfartsselskaber, receptorer, og reagere på i endothelial stimuli 20. Et par BBB modeller bruger filter membran skær belagt med endotelceller og andre celletyper (dvs, astrocytter, neuroner eller pericytes22,23,24) blev analyseret. Målet med disse Co kulturer var at øge BBB fysiske egenskaber ved at drage fordel af udskillelsen af opløselige faktorer af astrocytter/neuroner eller pericytes.

Dog omfatter ingen af disse modeller hjernen parenkym for at studere og forudsige skæbnen af en lægemiddelkandidat, når det har bestået dæmningen. Derfor vores mål var at bygge en i cellulo blod/hjerne interface, BBB-Minibrain, ved at kombinere en BBB model og en kultur af blandet hjerneceller i et enkelt kit. BBB-Minibrain bruger en kultur system bestående af en porøs filter indsat i en brønd i en multiwell celle kultur plade. Filteret er belagt med hCMEC/D3 celler, en menneskehjerne endotel cellelinie, der har vist sig meget pålidelig for BBB drug test25,26,27, til at danne BBB. Minibrain, som er en co differentieret kultur menneskelige neuroner og astrocytter stammer fra NTera/Cl2.D1 celle linje28,29 blandet sammen med menneskelig microglial cellelinje CHME/Cl530 i forhold svarende til den mikroglia vs neuron-astrocytter nøgletal af hjernen31, er dyrket i bunden af pladen godt.

Udover at studere passage af lægemidler på tværs af BBB og deres skæbne i parenkym, kunne blod-hjerne-interface i cellulo model være et effektivt redskab til optagelse af patogener i hjernen (neuroinvasiveness), spredning til hjernen (neurotropisme) og toksicitet (neurovirulence) de kan udøve på hjernen parenkym celler. Neurovirulence og neuroinvasiveness undersøgelser ville drage fordel af udviklingen af en effektiv i cellulo model og være fordelagtigt at erstatte dyremodeller. Ved hjælp af BBB-Minibrain kit32, vi viste neuroinvasive Fænotypen af sjældne viral mutanter, der opsamlet i den franske Neurotropic virusstamme af gul feber Virus (dvs., FNV-YFV33,34) anvendes til at udarbejde en Udgåede levende YFV vaccine og passage af en neuroregenerative og neuroprotektive biomolekyle kaldet Neurovita (omtalt som NV fremover i håndskriftet)35. Fordi NV hverken naturligvis krydser cellemembranen eller BBB, NV var sammenvokset med den variable del (VHH) i en enkelt kæde antistof af Lama, der krydser de biologiske membraner, herunder BBB og fungerer som en celle gennemtrængende molekyle (CPM)36. Egenskaben CPM i VHH synes at afhænge af det isoelektriske punkt og længden af VHH37.

Dette i cellulo test bør gøre det muligt at sortere de molekyler, der potentielt kunne krydse BBB før udførelsen farmakokinetiske og farmakodynamik analyse i dyr, og ideelt set i samme tid at være i stand til at forudsige deres adfærd i de nervøse parenkym. Dette system er biologisk relevante og nemt at oprette og håndtere af professionelle veluddannede i celle kultur26,29,30,38. Sådan interesse i cellulo test ville være dobbelt: at reducere udgifter til prækliniske undersøgelser på den ene side og reducere brugen af dyreforsøg på anden side.

Protocol

1. celle kultur arbejde af Ntera/CL2. D1 til at forberede en fælles kultur af post mitotiske hNeurons og hAstrocytes (NT2-/ t) Bemærk: Dette er komponenten i Minibrain (figur 1). Dyrkning af Ntera/Cl2.D1 Fjerne et hætteglas med frosne celler fra flydende kvælstof tank. Holde på is. Tø celler hurtigt i et 37 ° C vandbad. Overføre cellerne i en 15 mL tube indeholder 10 mL af komplet DMEM F12 medium (Dulbeccos modificer…

Representative Results

BBB-Minibrain er en i cellulo eksperimentel model af blod-hjerne interface. BBB-Minibrain er sat op på polyester membran kultur Indsæt system til at efterligne en blod rum på det øverste niveau og en hjerne rum på det lavere niveau af blod-hjerne-interface (figur 2AB). Det består af en luminale rum med hCMEC/D3 endotelceller på filteret danner BBB og et ablum…

Discussion

I denne artikel vi vist, hvordan man opbygger en i cellulo blod/hjerne interface, BBB-Minibrain, ved at kombinere en BBB model og en kultur af blandet hjernen cerebral celler (Minibrain) i en enkelt kit. Dette system er biologisk relevante, nemt at oprette og håndtere for eksperimentatorer veluddannede i cellekultur.

Som for alle andre in vitro-model for BBB, ville pålidelige resultater opnås hvis drastisk kontrol af tæthed af barrieren er anvendt. Skær skal testes omhyggeligt, for permea…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af indre tilskud fra Institut Pasteur herunder en skal grant (PTR 435) og af tilskud “Contrat de Soutien à la Recherche” leveret af Sanofi Pasteur til Institut Pasteur. A. da Costa støttedes Sanofi Pasteur grant og Florian Bakoa er modtager af et ph.d.-stipendium leveres af ANRT (Association Nationale de la Recherche et de la Technologie). Vi står i gæld til Pr Pierre-Olivier Couraud og Dr Florence Miller til nyttige diskussioner.

Materials

12 well plates Corning 3336
5-fluoro-2’deoxyuridine Merck-Sigma Aldrich F0503
85mm Petri Dish Sarstedt 83-3902-500
Anti-Nf200 Merck-Sigma Aldrich N4142
β-mercapto-ethanol Merck-Sigma Aldrich M3148
CHME/Cl5 Unité de Neuroimmunologie Virale On request to Dr Lafon
CMC Calbiochem 217274
Cytosine β-D-arabinofuranoside Merck-Sigma Aldrich C1768
Dark 96 well plates Corning 3915
DMEM F12 Thermofisher Scientific 31330-038
DMSO Merck-Sigma Aldrich D2650
Endogro IV Millipore SCME004 endothelial cell medium
Ethanol Carlo Erba 529121
FBS Hyclone SV30015-04
Formaldehyde Merck-Sigma Aldrich 252549
GIEMSA RAL Diagnostic 320310
Goat-Anti Mouse Jackson Immuno Research 115-545-003
Goat-Anti Rabbit Thermofisher Scientific R37117
HBSS with Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14025-100
hCMEC/D3 Cedarlane CLU512
Hepes 1M Thermofisher Scientific 15630-070
Hoescht 33342 Merck-Sigma Aldrich 33263
Laminine Merck-Sigma Aldrich L6274
L-glutamin Thermofisher Scientific 25030-024
Lucifer Yellow Merck-Sigma Aldrich L0259
MEM 10X Thermofisher Scientific 21430
MEM 1X Thermofisher Scientific 42360
Ntera/Cl2D.1 ATCC CRL-1973
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15714
PBS without Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14190
PBS-Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14040-091
Pen/Strep Eurobio CXXPES00-07
Poly-d-Lysine Merck-Sigma Aldrich P1149
Prolong Gold Thermofisher Scientific P36930
Qiashredder QIAGEN 79656
Rat Collagen I Cultrex 3443-100-01
Retinoic Acid All-Trans Merck-Sigma Aldrich R2625
RNA purification kit QIAGEN 74104
SDS Merck-Sigma Aldrich L4509
Sodium bicarbonate 5.6% Eurobio CXXBIC00-07
Sodium Pyruvate Thermofisher Scientific 11360
T75 Cell+ Flask Sarstedt 83-1813-302 Tissue culture polystyrene flask with specific surface treatment (Cell+) for sensitive adherent cells
Transwell Corning 3460 polyester porous membrane culture inserts
Trypsin-EDTA Merck-Sigma Aldrich T3924
Ultra Pure Water Thermofisher Scientific 10977-035
Uridine Merck-Sigma Aldrich U3750
Versene Thermofisher Scientific 15040-033 EDTA
YFV-FNV IP Dakar Vaccine vial

Referências

  1. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiology of Disease. 37 (1), 13-25 (2010).
  2. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nature Reviews Neuroscience. 7 (1), 41-53 (2006).
  3. Iadecola, C. The Neurovascular Unit Coming of Age: A Journey through Neurovascular Coupling in Health and Disease. Neuron. 96 (1), 17-42 (2017).
  4. Bicker, J., Alves, G., Fortuna, A., Falcao, A. Blood-brain barrier models and their relevance for a successful development of CNS drug delivery systems: a review. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 87 (3), 409-432 (2014).
  5. Banks, W. A. From blood-brain barrier to blood-brain interface: new opportunities for CNS drug delivery. Nature Reviews Drug Discovery. 15 (4), 275-292 (2016).
  6. Montagne, A., et al. Brain imaging of neurovascular dysfunction in Alzheimer’s disease. Acta Neuropathologica. 131 (5), 687-707 (2016).
  7. Stanimirovic, D., Kemmerich, K., Haqqani, A. S., Farrington, G. K. Engineering and pharmacology of blood-brain barrier-permeable bispecific antibodies. Advances in Pharmacology. 71, 301-335 (2014).
  8. Albrecht, D. S., Granziera, C., Hooker, J. M., Loggia, M. L. In Vivo Imaging of Human Neuroinflammation. ACS Chemical Neuroscience. 7 (4), 470-483 (2016).
  9. Caloni, F., et al. Alternative methods: 3Rs, research and regulatory aspects. ALTEX. 30 (3), 378-380 (2013).
  10. Whittall, H. Information on the 3Rs in animal research publications is crucial. The American Journal of Bioethics. 9 (12), 60-61 (2009).
  11. Sneddon, L. U. Pain in laboratory animals: A possible confounding factor. Alternatives to Laboratory Animals. 45 (3), 161-164 (2017).
  12. Sneddon, L. U., Halsey, L. G., Bury, N. R. Considering aspects of the 3Rs principles within experimental animal biology. The Journal of Experimental Biology. 220, 3007-3016 (2017).
  13. Wells, D. J. Animal welfare and the 3Rs in European biomedical research. Annals of the New York Academy of Sciences. 1245, 14-16 (2011).
  14. Daneshian, M., et al. A framework program for the teaching of alternative methods (replacement, reduction, refinement) to animal experimentation. ALTEX. 28 (4), 341-352 (2011).
  15. Niemi, S. M., Davies, G. F. Animal Research, the 3Rs, and the "Internet of Things": Opportunities and Oversight in International Pharmaceutical Development. ILAR Journal. 57 (2), 246-253 (2016).
  16. Modarres, H. P., et al. In vitro models and systems for evaluating the dynamics of drug delivery to the healthy and diseased brain. Journal of Controlled Release. 273, 108-130 (2018).
  17. Jamieson, J. J., Searson, P. C., Gerecht, S. Engineering the human blood-brain barrier in vitro. Journal of Biological Engineering. 11, 37 (2017).
  18. Kaisar, M. A., et al. New experimental models of the blood-brain barrier for CNS drug discovery. Expert Opinion on Drug Discovery. 12 (1), 89-103 (2017).
  19. Aday, S., Cecchelli, R., Hallier-Vanuxeem, D., Dehouck, M. P., Ferreira, L. Stem Cell-Based Human Blood-Brain Barrier Models for Drug Discovery and Delivery. Trends in Biotechnology. 34 (5), 382-393 (2016).
  20. Helms, H. C., et al. In vitro models of the blood-brain barrier: An overview of commonly used brain endothelial cell culture models and guidelines for their use. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 36 (5), 862-890 (2016).
  21. Lippmann, E. S., et al. Derivation of blood-brain barrier endothelial cells from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 30 (8), 783-791 (2012).
  22. Nakagawa, S., et al. A new blood-brain barrier model using primary rat brain endothelial cells, pericytes and astrocytes. Neurochemistry International. 54 (3-4), 253-263 (2009).
  23. Hatherell, K., Couraud, P. O., Romero, I. A., Weksler, B., Pilkington, G. J. Development of a three-dimensional, all-human in vitro model of the blood-brain barrier using mono-, co-, and tri-cultivation Transwell models. Journal of Neuroscience Methods. 199 (2), 223-229 (2011).
  24. Nakagawa, S., et al. Pericytes from brain microvessels strengthen the barrier integrity in primary cultures of rat brain endothelial cells. Cellular and Molecular Neurobiology. 27 (6), 687-694 (2007).
  25. Ohtsuki, S., et al. Quantitative targeted absolute proteomic analysis of transporters, receptors and junction proteins for validation of human cerebral microvascular endothelial cell line hCMEC/D3 as a human blood-brain barrier model. Molecular Pharmaceutics. 10 (1), 289-296 (2013).
  26. Weksler, B., Romero, I. A., Couraud, P. O. The hCMEC/D3 cell line as a model of the human blood brain barrier. Fluids Barriers CNS. 10 (1), 16 (2013).
  27. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19 (13), 1872-1874 (2005).
  28. Andrews, P. W. Retinoic acid induces neuronal differentiation of a cloned human embryonal carcinoma cell line in vitro. Biologia do Desenvolvimento. 103 (2), 285-293 (1984).
  29. Lafon, M., et al. Modulation of HLA-G expression in human neural cells after neurotropic viral infections. Journal of Virology. 79 (24), 15226-15237 (2005).
  30. Janabi, N., Peudenier, S., Heron, B., Ng, K. H., Tardieu, M. Establishment of human microglial cell lines after transfection of primary cultures of embryonic microglial cells with the SV40 large T antigen. Neuroscience Letters. 195 (2), 105-108 (1995).
  31. von Bartheld, C. S., Bahney, J., Herculano-Houzel, S. The search for true numbers of neurons and glial cells in the human brain: A review of 150 years of cell counting. The Journal of Comparative Neurology. 524 (18), 3865-3895 (2016).
  32. Prehaud, C., Lafon, M., Ceccaldi, P. E., Afonso, P., Lafaye, P. New in vitro Blood-Brain Barrier model. PCT. EP2015, 0706671 (2014).
  33. Holbrook, M. R., Li, L., Suderman, M. T., Wang, H., Barrett, A. D. The French neurotropic vaccine strain of yellow fever virus accumulates mutations slowly during passage in cell culture. Virus Research. 69 (1), 31-39 (2000).
  34. da Costa, A., et al. Innovative in cellulo method as an alternative to in vivo neurovirulence test for the characterization and quality control of human live Yellow Fever virus vaccines: A pilot study. Biologicals. 53, 19-29 (2018).
  35. Prehaud, C., Lafon, M., Lafaye, P. Nanobodies suitable for neuron regeneration therapy. Patent. , (2014).
  36. Li, T., et al. Selection of similar single domain antibodies from two immune VHH libraries obtained from two alpacas by using different selection methods. Immunology Letters. 188, 89-95 (2017).
  37. Schumacher, D., Helma, J., Schneider, A. F. L., Leonhardt, H., Hackenberger, C. P. R. Nanobodies: Chemical Functionalization Strategies and Intracellular Applications. Angewandte Chemie International Edition. 57 (9), 2314-2333 (2018).
  38. Prehaud, C., Megret, F., Lafage, M., Lafon, M. Virus infection switches TLR-3-positive human neurons to become strong producers of beta interferon. J Journal of Virology. 79 (20), 12893-12904 (2005).
  39. Siflinger-Birnboim, A., et al. Molecular sieving characteristics of the cultured endothelial monolayer. Journal of Cellular Physiology. 132 (1), 111-117 (1987).
  40. Prehaud, C., Lafon, M., Wolff, N., Khan, Z., Terrien, E., Sanderine, V. High Mast2-affinity polypeptides and uses thereof. Patent. , (2011).
  41. Cucullo, L., et al. Immortalized human brain endothelial cells and flow-based vascular modeling: a marriage of convenience for rational neurovascular studies. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 28 (2), 312-328 (2008).
  42. Beck, A. S., Wood, T. G., Widen, S. G., Thompson, J. K., Barrett, A. D. T. Analysis By Deep Sequencing of Discontinued Neurotropic Yellow Fever Vaccine Strains. Scientific Reports. 8 (1), 13408 (2018).
  43. Staples, J. E., Monath, T. P. Yellow fever: 100 years of discovery. The Journal of the American Medical Association. 300 (8), 960-962 (2008).
  44. Wang, E., et al. Comparison of the genomes of the wild-type French viscerotropic strain of yellow fever virus with its vaccine derivative French neurotropic vaccine. Journal of General Virology. 76 (Pt 11), 2749-2755 (1995).
  45. Li, T., et al. Cell-penetrating anti-GFAP VHH and corresponding fluorescent fusion protein VHH-GFP spontaneously cross the blood-brain barrier and specifically recognize astrocytes: application to brain imaging. FASEB J. 26 (10), 3969-3979 (2012).
  46. Garcia-Mesa, Y., et al. Immortalization of primary microglia: a new platform to study HIV regulation in the central nervous system. Journal of NeuroVirology. 23 (1), 47-66 (2017).

Play Video

Citar este artigo
da Costa, A., Prehaud, C., Bakoa, F., Afonso, P., Ceccaldi, P., Lafaye, P., Lafon, M. A Human Blood-Brain Interface Model to Study Barrier Crossings by Pathogens or Medicines and Their Interactions with the Brain. J. Vis. Exp. (146), e59220, doi:10.3791/59220 (2019).

View Video