Summary

Приобретение данных и анализ в Brainstem вызвал ответ аудиометрии у мышей

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

Brainstem вызвал ответ аудиометрии является важным инструментом в клинической нейрофизиологии. В настоящее время, ствол вызываемых ответ аудиометрии также применяется в фундаментальной науки и доклинических исследований с участием как фармакологических и генетических моделей животных. Здесь мы предоставляем подробное описание того, как слуховые ответы ствола мозга могут быть успешно записаны и проанализированы у мышей.

Abstract

Brainstem вызвал ответ аудиометрии (BERA) имеет центральное значение в клинической нейрофизиологии. По мере того как другие evoked потенциальные (EP) методы, such as визуально evoked потенциалы (VEPs) или somatosensory вызвали потенциалы (SEPs), слуховые вызвали потенциалы (AEPs) вызваны повторяющимся представлением идентичных стимулов, электроэнцефалографическая (ЭЭГ) реакция, ответ которой впоследствии усреднен, что приводит к выраженным положительным (р) и отрицательным (n) отклонениям. У людей, как амплитуда и задержка отдельных пиков могут быть использованы для характеристики изменений в синхронизации и скорости проводимости в основных нейронных схем. Важно отметить, что АЭП также применяются в базовой и доклинической науке для выявления и характеристики слуховой функции в фармакологических и генетических моделях животных. Более того, модели животных в сочетании с фармакологическим тестированием используются для исследования потенциальных преимуществ в лечении сенсоневральной потери слуха (например, возрастной или шумоизоляционный дефицит слуха). Здесь мы предоставляем подробное и интегративное описание того, как записывать слуховые реакции на мозг,вызванные (ABRs) у мышей с помощью приложения, щелчка и тона-всплеска. Особое внимание в этом протоколе уделяется предэкспериментальному корпусу животных, анестезии, записи ABR, процессам фильтрации ABR, автоматизированному анализу функции амплитуды на основе волн и обнаружению задержки.

Introduction

Центральным аспектом физиологии мозга является его способность обрабатывать экологическую информацию, в результате чего различные внутренние или экстраинсиквых выходных данных, таких как обучение, память, эмоциональные реакции, или двигательные реакции. Различные экспериментальные и диагностические подходы могут быть использованы для характеристики электрофизиологической отзывчивости отдельных типов нейрональных клеток или кластеров / ансамблей нейронов в рамках связанных с стимулом нейронных схем. Эти электрофизиологические методы охватывают различные пространственно-временные измерения намикро-, мезо- и макромасштабе 1. Микромасштабный уровень включает в себя напряжение и текущие подходы зажима в различных режимах патч-зажима, используя, например, культурные или остро разрозненные нейроны1. Эти методы in vitro позволяют охарактеризовать отдельныетекущие объекты и их фармакологическую модуляцию 2,3. Однако существенным недостатком является отсутствие системной информации о микро- и макросхемной интеграции и обработке информации. Это нарушение частично преодолеть в пробирке методы мезошкалы, такие как мультиэлектродные массивы, которые позволяют одновременно внеклеточных многоэлектрических записей не только в культурных нейронов, но и в острых ломтиков мозга4, 5. В то время как микроcircuitries могут быть сохранены в мозге ломтики в определенной степени (например, в гиппокампе), дальние взаимосвязи, как правило, потеряли6. В конечном счете, для изучения функциональных взаимосвязей в нейронных схемах, системные электрофизиологические методы in vivo на макромасштабе являются методом выбора7. Эти подходы включают, среди прочего, поверхностные (эпидуральные) и глубокие (внутримозговые)записи ЭЭГ, которые проводятся как у людей, так и у животных моделей 1. ЭЭГ сигналы в основном основаны на синхронизированных синаптический вход на пирамидальных нейронов в различных корковых слоев, которые могут быть ингибирующими или возбуждающим в основном, несмотря на общее преобладание возбуждающего ввода8. При синхронизации, возбуждающих postsynaptic потенциальных сдвигов в внеклеточных электрических полей суммируются, чтобы сформировать сигнал достаточной силы, чтобы быть записаны на кожу головы с помощью поверхностных электродов. Примечательно, что обнаруживаемая запись кожи головы с отдельного электрода требует активности десяти тысяч пирамидальных нейронов и сложного вооружения технических устройств и инструментов обработки, включая усилитель, процессы фильтрации (фильтр с низким проходом, высокопроходной фильтр, выемка фильтра и электроды с определенными свойствами проводника.

В большинстве экспериментальных видов животных (т.е. мышей и крыс), человека основе кожи головы ЭЭГ подход технически не применим, так как сигнал, генерируемый основной коры слишком слаб из-за ограниченного числа синхронизированных пирамидальных нейронов9, 10,11. У грызунов, поверхностные (скальп) электроды или субдермальные электроды, таким образом, сильно загрязнены электрокардиограммой и преимущественно электромиограммы артефакты, которые делают высококачественные записи ЭЭГ невозможно9,11, 12. При использовании безнеоснего свободно движущихся мышей и крыс, поэтому обязательным для непосредственной записи либо из коры с помощью эпидуральных электродов или от глубоких, внутримозговых структур для обеспечения прямой физической связи зондирования отзыв свинца/имплантированного электрода к генерирующих сигнал нейронные клетки кластеров. Эти эЭГ-подходы могут быть осуществлены либо в установке удерживающей привязной системы, либос использованием необуздающего имплантируемого имплантируемого эЭГ-радиотелеметрии 9,10,11. Оба метода имеют свои плюсы и минусы и могут быть ценным подходом в качественной и количественной характеристике восприимчивости захвата/ активности захвата, циркадной ритмичности, архитектуры сна, колепийной активности и синхронизации, включая анализ времени-частоты,анализ источника, etc. 9,10,13,14,15,16,17.

В то время как привязываемые системы и радиотелеметрия позволяют записывать ЭЭГ в сдерживающих/полусдерживающих или неограниченных условиях, соответственно, связанные с этим экспериментальные условия не соответствуют требованиям к записям АБР. Последний спрос на определенные акустические стимулы, которые представляются повторяющиеся с течением времени с определенными положениями громкоговорителя и экспериментальных животных и контролируемых уровней звукового давления (SPLs). Это может быть достигнуто либо путем фиксации головы в условиях ограничения или после анестезии18,19. Чтобы уменьшить экспериментальный стресс, животные, как правило, анестезируется во время экспериментов ABR, но следует учитывать, что анестезия может помешать ABRs19,20.

Как общая характеристика, ЭЭГ построена из различных частот в диапазоне напряжения 50-100 ЗВ. Фоновые частоты и амплитуды сильно зависят от физиологического состояния экспериментального животного. В состоянии бодрствования преобладают бета-версии (я) и гамма-частоты с более низкой амплитудой. Когда животные становятся сонливыми или засыпают, возникают альфа(я), тета (я) и дельта (я) частоты, демонстрирующие повышенную эЭГ-амплитуду21. После того, как сенсорный канал (например, акустический путь) стимулируется, распространение информации опосредовано через нейронную активность через периферийную и центральную нервную систему. Такая сенсорная (например, акустическая) стимуляция вызывает так называемые EPs или вызывает реакции. Примечательно, что потенциалы, связанные с событиями (ERP), гораздо ниже по амплитуде, чем ЭЭГ (т.е. только несколько микровольт). Таким образом, любой индивидуальный ERP, основанный на одном стимуле, будет потерян на фоне ЭЭГ с более высокой амплитудой. Таким образом, запись ERP требует повторного применения идентичных стимулов (например, кликов в записях ABR) и последующего усреднения для устранения любых фоновых действий ЭЭГ и артефактов. Если записи ABR сделаны в анестезированных животных, то легко использовать субдермальные электроды здесь.

В основном, AEPs включают ePs с короткой задержкой, которые обычно связаны с ABR или BERA, и далее, более поздние потенциалы, такие как ePs среднего затяжного (ответы на средние возможности (ответы на средние возможности) и долгосрочные EPs22. Важно отметить, что нарушение в обработке информации слуховой информации часто является центральной особенностью нейропсихиатрических заболеваний (демиелинизирующих заболеваний, шизофрении и т.д.) и связанных с изменениями AEP23,24 ,25. В то время как поведенческие исследования способны только выявление функциональных нарушений, AEP исследования позволяют точный пространствентемпоральный анализ слуховой дисфункции, связанные с конкретными нейроанатомическими структурами26.

ABRs как раньше, короткие задержки акустически EPs, как правило, обнаружены на умеренной и высокоинтенсивной нажмите приложение, и там может произойти до семи пиков ABR (WI-WVII). Наиболее важныеволны (W I-WV) связаны со следующими нейроанатомическими структурами: WI к слуховому нерву (дистальная часть, в пределах внутреннего уха); WII к кохлеарное ядро (проксимальная часть слухового нерва, прекращение ствола мозга); WIII к превосходному комплексу оливари (SOC); WIV к боковому лемнику (LL); WV к прекращению бокового лемниска (LL) в нижней колликул (IC) на контралатеральной стороне27 (Дополнительнаярисунок 1). Следует отметить, чтоW II-WV, вероятно, имеют более чем одну анатомическую структуру восходящего слухового пути, способствующего им. Примечательно, что точная корреляция пиков и основных структур слухового тракта до сих пор полностью не выяснена.

В аудиологии, ABRs могут быть использованы в качестве скрининга и диагностического инструмента и для хирургического мониторинга28,29. Это наиболее важно для выявления дисакуза, гипакузы и анакусиса (например, при возрастной потере слуха, вызванной шумом потере слуха, метаболической и врожденной потере слуха, а симметричной потере слуха и слуха из-за деформаций или пороки развития, травмы и неоплазмы)28. ABRs также актуальны в качестве скрининг-теста для гиперактивных, умственно отсталых детей или для других детей, которые не смогут реагировать на обычные аудиометрии (например, при неврологических/психиатрических заболеваниях, таких как СДВГ, МС, аутизм и т.д.29 , 30)и в разработке и хирургической установке кохлеарных имплантов28. Наконец, ABRs может обеспечить ценную информацию о потенциальных ототоксических побочных эффектов нейропсихофармацевтических препаратов, таких как противоэпилептики31,32.

Ценность перевода нейрофизиологических знаний, полученных от фармакологических или трансгенных моделей мыши для человека, была продемонстрирована во многих условиях, особенно на уровне ERPs в слуховых парадигму у мышей и крыс33, 34,35. Новое понимание измененных ранних AEPs и связанных с ними изменений в обработке слуховой информации у мышей и крыс, таким образом, может быть переведено на людей и имеет центральное значение в характеристике и эндофенотипизации слуховых, неврологических и нейропсихиатрических заболеваний в будущем. Здесь мы предоставляем подробное описание того, как ABRs могут быть успешно записаны и проанализированы на мышах для основных научных, токсикологических и фармакологических целей.

Protocol

Все процедуры для животных были выполнены в соответствии с руководящими принципами Немецкого совета по уходу за животными, и все протоколы были одобрены местным институциональным и национальным комитетом по уходу за животными (Landesamt f’r Natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State Офис Северного Рейна-Вест…

Representative Results

Записи ABR, вызванные приливами и тоном, могут использоваться для оценки различий порогов слуха, функции роста амплитуды и сравнения задержки. Click-вызванные ABRs в режиме увеличения SPL изображены на рисунке 1 для элементов управления и двух образцовых лини?…

Discussion

Этот протокол содержит подробное и интегративное описание того, как записывать слуховые реакции мозга вызвали у мышей. Особое внимание уделяется предварительной обработке животных, анестезии и потенциальным методологическим смешанным факторам. К последним относятся, в частности, по?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить д-ра Кристину Колб (Немецкий центр нейродегенеративных заболеваний (ДЗНЕ) и д-ра Роберта Старка (ДЗНЕ) за помощь в животноводстве и охране здоровья животных. Эта работа была финансово поддержана Федеральным институтом лекарственных средств и медицинских приборов (Bundesinstitut f’r Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Германия).

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

Referências

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. Neurociência. , (2019).

Play Video

Citar este artigo
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

View Video