Brainstem вызвал ответ аудиометрии является важным инструментом в клинической нейрофизиологии. В настоящее время, ствол вызываемых ответ аудиометрии также применяется в фундаментальной науки и доклинических исследований с участием как фармакологических и генетических моделей животных. Здесь мы предоставляем подробное описание того, как слуховые ответы ствола мозга могут быть успешно записаны и проанализированы у мышей.
Brainstem вызвал ответ аудиометрии (BERA) имеет центральное значение в клинической нейрофизиологии. По мере того как другие evoked потенциальные (EP) методы, such as визуально evoked потенциалы (VEPs) или somatosensory вызвали потенциалы (SEPs), слуховые вызвали потенциалы (AEPs) вызваны повторяющимся представлением идентичных стимулов, электроэнцефалографическая (ЭЭГ) реакция, ответ которой впоследствии усреднен, что приводит к выраженным положительным (р) и отрицательным (n) отклонениям. У людей, как амплитуда и задержка отдельных пиков могут быть использованы для характеристики изменений в синхронизации и скорости проводимости в основных нейронных схем. Важно отметить, что АЭП также применяются в базовой и доклинической науке для выявления и характеристики слуховой функции в фармакологических и генетических моделях животных. Более того, модели животных в сочетании с фармакологическим тестированием используются для исследования потенциальных преимуществ в лечении сенсоневральной потери слуха (например, возрастной или шумоизоляционный дефицит слуха). Здесь мы предоставляем подробное и интегративное описание того, как записывать слуховые реакции на мозг,вызванные (ABRs) у мышей с помощью приложения, щелчка и тона-всплеска. Особое внимание в этом протоколе уделяется предэкспериментальному корпусу животных, анестезии, записи ABR, процессам фильтрации ABR, автоматизированному анализу функции амплитуды на основе волн и обнаружению задержки.
Центральным аспектом физиологии мозга является его способность обрабатывать экологическую информацию, в результате чего различные внутренние или экстраинсиквых выходных данных, таких как обучение, память, эмоциональные реакции, или двигательные реакции. Различные экспериментальные и диагностические подходы могут быть использованы для характеристики электрофизиологической отзывчивости отдельных типов нейрональных клеток или кластеров / ансамблей нейронов в рамках связанных с стимулом нейронных схем. Эти электрофизиологические методы охватывают различные пространственно-временные измерения намикро-, мезо- и макромасштабе 1. Микромасштабный уровень включает в себя напряжение и текущие подходы зажима в различных режимах патч-зажима, используя, например, культурные или остро разрозненные нейроны1. Эти методы in vitro позволяют охарактеризовать отдельныетекущие объекты и их фармакологическую модуляцию 2,3. Однако существенным недостатком является отсутствие системной информации о микро- и макросхемной интеграции и обработке информации. Это нарушение частично преодолеть в пробирке методы мезошкалы, такие как мультиэлектродные массивы, которые позволяют одновременно внеклеточных многоэлектрических записей не только в культурных нейронов, но и в острых ломтиков мозга4, 5. В то время как микроcircuitries могут быть сохранены в мозге ломтики в определенной степени (например, в гиппокампе), дальние взаимосвязи, как правило, потеряли6. В конечном счете, для изучения функциональных взаимосвязей в нейронных схемах, системные электрофизиологические методы in vivo на макромасштабе являются методом выбора7. Эти подходы включают, среди прочего, поверхностные (эпидуральные) и глубокие (внутримозговые)записи ЭЭГ, которые проводятся как у людей, так и у животных моделей 1. ЭЭГ сигналы в основном основаны на синхронизированных синаптический вход на пирамидальных нейронов в различных корковых слоев, которые могут быть ингибирующими или возбуждающим в основном, несмотря на общее преобладание возбуждающего ввода8. При синхронизации, возбуждающих postsynaptic потенциальных сдвигов в внеклеточных электрических полей суммируются, чтобы сформировать сигнал достаточной силы, чтобы быть записаны на кожу головы с помощью поверхностных электродов. Примечательно, что обнаруживаемая запись кожи головы с отдельного электрода требует активности десяти тысяч пирамидальных нейронов и сложного вооружения технических устройств и инструментов обработки, включая усилитель, процессы фильтрации (фильтр с низким проходом, высокопроходной фильтр, выемка фильтра и электроды с определенными свойствами проводника.
В большинстве экспериментальных видов животных (т.е. мышей и крыс), человека основе кожи головы ЭЭГ подход технически не применим, так как сигнал, генерируемый основной коры слишком слаб из-за ограниченного числа синхронизированных пирамидальных нейронов9, 10,11. У грызунов, поверхностные (скальп) электроды или субдермальные электроды, таким образом, сильно загрязнены электрокардиограммой и преимущественно электромиограммы артефакты, которые делают высококачественные записи ЭЭГ невозможно9,11, 12. При использовании безнеоснего свободно движущихся мышей и крыс, поэтому обязательным для непосредственной записи либо из коры с помощью эпидуральных электродов или от глубоких, внутримозговых структур для обеспечения прямой физической связи зондирования отзыв свинца/имплантированного электрода к генерирующих сигнал нейронные клетки кластеров. Эти эЭГ-подходы могут быть осуществлены либо в установке удерживающей привязной системы, либос использованием необуздающего имплантируемого имплантируемого эЭГ-радиотелеметрии 9,10,11. Оба метода имеют свои плюсы и минусы и могут быть ценным подходом в качественной и количественной характеристике восприимчивости захвата/ активности захвата, циркадной ритмичности, архитектуры сна, колепийной активности и синхронизации, включая анализ времени-частоты,анализ источника, etc. 9,10,13,14,15,16,17.
В то время как привязываемые системы и радиотелеметрия позволяют записывать ЭЭГ в сдерживающих/полусдерживающих или неограниченных условиях, соответственно, связанные с этим экспериментальные условия не соответствуют требованиям к записям АБР. Последний спрос на определенные акустические стимулы, которые представляются повторяющиеся с течением времени с определенными положениями громкоговорителя и экспериментальных животных и контролируемых уровней звукового давления (SPLs). Это может быть достигнуто либо путем фиксации головы в условиях ограничения или после анестезии18,19. Чтобы уменьшить экспериментальный стресс, животные, как правило, анестезируется во время экспериментов ABR, но следует учитывать, что анестезия может помешать ABRs19,20.
Как общая характеристика, ЭЭГ построена из различных частот в диапазоне напряжения 50-100 ЗВ. Фоновые частоты и амплитуды сильно зависят от физиологического состояния экспериментального животного. В состоянии бодрствования преобладают бета-версии (я) и гамма-частоты с более низкой амплитудой. Когда животные становятся сонливыми или засыпают, возникают альфа(я), тета (я) и дельта (я) частоты, демонстрирующие повышенную эЭГ-амплитуду21. После того, как сенсорный канал (например, акустический путь) стимулируется, распространение информации опосредовано через нейронную активность через периферийную и центральную нервную систему. Такая сенсорная (например, акустическая) стимуляция вызывает так называемые EPs или вызывает реакции. Примечательно, что потенциалы, связанные с событиями (ERP), гораздо ниже по амплитуде, чем ЭЭГ (т.е. только несколько микровольт). Таким образом, любой индивидуальный ERP, основанный на одном стимуле, будет потерян на фоне ЭЭГ с более высокой амплитудой. Таким образом, запись ERP требует повторного применения идентичных стимулов (например, кликов в записях ABR) и последующего усреднения для устранения любых фоновых действий ЭЭГ и артефактов. Если записи ABR сделаны в анестезированных животных, то легко использовать субдермальные электроды здесь.
В основном, AEPs включают ePs с короткой задержкой, которые обычно связаны с ABR или BERA, и далее, более поздние потенциалы, такие как ePs среднего затяжного (ответы на средние возможности (ответы на средние возможности) и долгосрочные EPs22. Важно отметить, что нарушение в обработке информации слуховой информации часто является центральной особенностью нейропсихиатрических заболеваний (демиелинизирующих заболеваний, шизофрении и т.д.) и связанных с изменениями AEP23,24 ,25. В то время как поведенческие исследования способны только выявление функциональных нарушений, AEP исследования позволяют точный пространствентемпоральный анализ слуховой дисфункции, связанные с конкретными нейроанатомическими структурами26.
ABRs как раньше, короткие задержки акустически EPs, как правило, обнаружены на умеренной и высокоинтенсивной нажмите приложение, и там может произойти до семи пиков ABR (WI-WVII). Наиболее важныеволны (W I-WV) связаны со следующими нейроанатомическими структурами: WI к слуховому нерву (дистальная часть, в пределах внутреннего уха); WII к кохлеарное ядро (проксимальная часть слухового нерва, прекращение ствола мозга); WIII к превосходному комплексу оливари (SOC); WIV к боковому лемнику (LL); WV к прекращению бокового лемниска (LL) в нижней колликул (IC) на контралатеральной стороне27 (Дополнительнаярисунок 1). Следует отметить, чтоW II-WV, вероятно, имеют более чем одну анатомическую структуру восходящего слухового пути, способствующего им. Примечательно, что точная корреляция пиков и основных структур слухового тракта до сих пор полностью не выяснена.
В аудиологии, ABRs могут быть использованы в качестве скрининга и диагностического инструмента и для хирургического мониторинга28,29. Это наиболее важно для выявления дисакуза, гипакузы и анакусиса (например, при возрастной потере слуха, вызванной шумом потере слуха, метаболической и врожденной потере слуха, а симметричной потере слуха и слуха из-за деформаций или пороки развития, травмы и неоплазмы)28. ABRs также актуальны в качестве скрининг-теста для гиперактивных, умственно отсталых детей или для других детей, которые не смогут реагировать на обычные аудиометрии (например, при неврологических/психиатрических заболеваниях, таких как СДВГ, МС, аутизм и т.д.29 , 30)и в разработке и хирургической установке кохлеарных имплантов28. Наконец, ABRs может обеспечить ценную информацию о потенциальных ототоксических побочных эффектов нейропсихофармацевтических препаратов, таких как противоэпилептики31,32.
Ценность перевода нейрофизиологических знаний, полученных от фармакологических или трансгенных моделей мыши для человека, была продемонстрирована во многих условиях, особенно на уровне ERPs в слуховых парадигму у мышей и крыс33, 34,35. Новое понимание измененных ранних AEPs и связанных с ними изменений в обработке слуховой информации у мышей и крыс, таким образом, может быть переведено на людей и имеет центральное значение в характеристике и эндофенотипизации слуховых, неврологических и нейропсихиатрических заболеваний в будущем. Здесь мы предоставляем подробное описание того, как ABRs могут быть успешно записаны и проанализированы на мышах для основных научных, токсикологических и фармакологических целей.
Этот протокол содержит подробное и интегративное описание того, как записывать слуховые реакции мозга вызвали у мышей. Особое внимание уделяется предварительной обработке животных, анестезии и потенциальным методологическим смешанным факторам. К последним относятся, в частности, по?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить д-ра Кристину Колб (Немецкий центр нейродегенеративных заболеваний (ДЗНЕ) и д-ра Роберта Старка (ДЗНЕ) за помощь в животноводстве и охране здоровья животных. Эта работа была финансово поддержана Федеральным институтом лекарственных средств и медицинских приборов (Bundesinstitut f’r Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Германия).
AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) | Tucker-Davis Technologies (TDT) | BioSigRZ | |
Binocular surgical magnification microscope | Zeiss Stemi 2000 | 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000 | |
Cages (Macrolon) | Techniplast | 1264C, 1290D | |
Carprox vet, 50mg/ml | Virbac Tierarzneimittel GmbH | PZN 11149509 | |
Cold light source | Schott KL2500 LCD | 9.705 202 | |
Cotton tip applicators (sterile) | Carl Roth | EH12.1 | |
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) | custom made | custom made | |
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) | Bayer Vital GmbH | PZN: 01578681 | |
Disposable Subdermal stainless steel Needle electrodes, 27GA, 12mm |
Rochester Electro-Medical, Inc. | S03366-18 | |
Surgical drape sheets (sterile) | Hartmann | PZN 0366787 | |
Ethanol, 70% | Carl Roth | 9065.5 | |
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit | Tucker-Davis Technologies (TDT) | PCB-378C0 | |
Gloves (sterile) | Unigloves | 1570 | |
Graefe Forceps-curved, serrated | FST | 11052-10 | |
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 | GraphPad Prism Software, Inc. | https://www.graphpad.com/ | |
Heat-based surgical instrument sterilizer | FST | 18000-50 | |
Homeothermic heating blanked |
ThermoLux | 461265 / -67 | |
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml | Pfizer | PZN 08707288 | |
Ringer’s solution (sterile) | B.Braun | PZN 01471434 | |
Matlab software | MathWorks, Inc. | https://de.mathworks.com/products/matlab.html | |
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RA4LI | |
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RA4PA | |
Microphone | PCB Pieztronics | 378C01 | |
Multi Field Speaker- Stereo | Tucker-Davis Technologies (TDT) | MF1-S | |
Oscilloscope | Tektronix | DPO3012 | |
Optical PC1 express card for Optibit Interface) | Tucker-Davis Systems (TDT) | PO5e | |
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) | B.Braun | PZN 8473637 | |
Preamplifier | PCB Pieztronics | 480C02 | |
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RZ6-A-PI | |
0.9% saline (NaCl, sterile) | B.Braun | PZN:8609255 | |
SigGenRZ software | Tucker-Davis Technologies (TDT) | https://www.tdt.com/ | |
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) | The R Foundation, R Core Team 2015 | Open Source Software (freely distributable) | |
Sound attenuating cubicle | Med Associates Inc. | ENV-018V | |
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length | FST | 11000-12, 11000-14 | |
Leukosilk tape | BSN medical GmbH & Co. KG | PZN 00397109 | |
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm | FST | 11021-12 | |
Uniprotect ventilated cabinet | Bioscape | THF3378 | |
Ventilated cabinet | Tecniplast | 9AV125P | |
Xylazine (Rompun), 2% | Bayer Vital GmbH | PZN 1320422 |