JoVE Journal > Neuroscience
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Resultados
Discussion
Declarações
Acknowledgements
Materials
Referências
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Neurociência

마우스에서 뇌간 에서 데이터 수집 및 분석 음성 응답 청력 측정

Published: May 10, 2019
doi:
10.3791/59200
, , , , , , , , , , ,
1Experimental Neuropsychopharmacology,Federal Institute for Drugs and Medical Devices, 2KBRwyle GmbH, 3Cognitive Neurophysiology, Department of Psychiatry and Psychotherapy, Faculty of Medicine,University of Cologne, 4Molecular and Cellular Cognition,German Center for Neurodegenerative Diseases (DZNE), 5Institute of Neurophysiology, Faculty of Medicine,University of Cologne, 6Federal Institute for Drugs and Medical Devices (BfArM), 7Thescon GmbH

Summary

뇌간 은 임상 신경 생리학에서 중요한 도구입니다 반응 청력 측정을 불러 일으켰다. 요즘, 뇌간 은 약리학 및 유전 동물 모델 모두를 포함하는 기초 과학 및 전임상 연구에서도 반응 청력 측정을 불러 일으켰다. 여기에서 우리는 청각 뇌간 반응이 마우스에서 성공적으로 기록되고 분석될 수 있는 방법에 대한 상세한 설명을 제공합니다.

Abstract

뇌간 유발 반응 청력 측정 (BERA)는 임상 신경 생리학에서 중앙 관련성입니다. 시각적으로 유발된 전위(EP) 전위(EP) 또는 체감각 유발 전위(SEP)와 같은 다른 자극전위(EP) 기술이 바와 같이, 청각 유발 전위(AEP)는 동일한 자극의 반복적인 프리젠테이션에 의해 촉발됩니다. 뇌전도 (EEG) 응답은 이후에 뚜렷한 양성 (p) 및 음의 (n) 편향의 결과로 평균화됩니다. 인간에서는, 개별 피크의 진폭 그리고 대기 시간 둘 다 근본적인 신경 회로에 있는 동기화 및 전도 속도의 변경을 특성화하기 위하여 이용될 수 있습니다. 중요한 것은, AE는 또한 약리학 및 유전 동물 모형에 있는 청각 기능을 확인하고 특성화하기 위하여 기초와 전임상 과학에서 적용됩니다. 더욱이, 약리학적 인 테스트와 함께 동물 모델은 감각 신경성 난청 (예 : 연령 또는 소음 유발 청력 적자)의 치료에 잠재적 인 이점을 조사하기 위해 활용됩니다. 여기에서우리는 클릭과 톤 버스트 응용 프로그램을 사용하여 마우스에 청각 뇌간 유발 응답 (AR)을 기록하는 방법에 대한 상세하고 통합적인 설명을 제공합니다. 이 프로토콜의 특정 초점은 실험 전 동물 하우징, 마취, ABR 기록, ABR 필터링 프로세스, 자동화된 웨이블릿 기반 진폭 성장 함수 분석 및 대기 시간 감지에 있습니다.

Introduction

뇌 생리학의 핵심 측면은 학습, 기억, 정서적 반응 또는 운동 반응과 같은 다양한 본질 또는 외적 출력을 초래하는 환경 정보를 처리하는 기능입니다. 다양한 실험 및 진단 접근법은 자극 관련 뉴런 회로 내에서 개별 신경 세포 유형 또는 클러스터/뉴런의 반응성의 전기생리학적 반응을 특성화하는 데 사용될 수 있다. 이러한 전기 생리학적 기술은 마이크로, 메소 및 대용량 1에 대한상이한 시공간적 치수를 다룹니다. 마이크로 스케일 레벨은 예를 들어 배양 또는 급성 해리 뉴런 1을 사용하는 다른 패치 클램프모드에서 전압 및 전류 클램프 접근법을 포함합니다. 이러한 시험관내 기술은 개별적인 현재 엔티티 및 그들의약리학적 변조2,3의특성화를 허용한다. 그러나 중요한 단점은 마이크로 및 매크로 회로 정보 통합 및 처리와 관련하여 체계적인 정보가 부족하다는 것입니다. 이 손상은 배양 된 뉴런뿐만 아니라 급성 뇌 슬라이스에서도 동시에 세포 외 다전극 기록을 허용하는 다전극 배열과 같은 메조 스케일의 생체 외 기술에 의해 부분적으로 극복됩니다4. 5.마이크로 회로는 특정 범위 (예를 들어, 해마에서)로 뇌 슬라이스에 보존 될 수 있지만, 장거리 상호 연결은 전형적으로손실6. 궁극적으로, 뉴런 회로내의 기능적 상호연결을 연구하기 위해, 거시적 척도에 대한 생체내 전기생리학적 기술이 선택된7의방법이다. 이러한 접근법은 무엇보다도, 인간 및 동물 모델 둘 다에서 수행되는 표면(경막외) 및 깊은(intracerebral) EEG 기록을 포함한다. EEG 신호는 주로 흥분제 입력8의 일반적인 우세에도 불구하고 주체에서 억제 또는 흥분될 수 있는 상이한 피질 층에서 피라미드 형 뉴런에동기화 된 시냅스 입력을 기반으로합니다. 동기화시, 세포외 전기장에서의 흥분성 세포내전위 전위-기반 이동은 표면 전극을 사용하여 두피에 기록될 수 있는 충분한 강도의 신호를 형성하기 위해 합산된다. 특히, 개별 전극에서 검출 가능한 두피 기록은 증폭기, 필터링 프로세스(로우 패스 필터, 하이 패스 필터, 노치 필터 및 특정 도체 특성을 가진 전극.

대부분의 실험 동물 종(즉, 마우스 및 래트)에서, 인간 기반 두피 EEG 접근법은 근본적인 피질에 의해 생성된 신호가 제한된 수의 동기화된피라미드 뉴런(9)으로 인해 너무 약하기 때문에 기술적으로 적용되지않는다. 10,11. 설치류에서, 표면 (두피) 전극 또는 피하 전극은 따라서 심전도에 의해 심각하게 오염되고 고품질 의 EEG 기록을불가능하게 하는 주로 전기 신경학상 유물 9,11, 12. 무마취 자유롭게 움직이는 마우스와 쥐를 사용하는 경우, 따라서 직접 감지 팁의 직접 물리적 연결을 보장하기 위해 경막 외 전극을 통해 피질또는 깊은, 내추적 구조에서 중 하나를 기록하는 것이 필수적이다 신호 생성 신경 세포 클러스터에 납 /이식 된 전극의. 이러한 EEG 접근법은 구속된 테더링 시스템 설정에서 또는 비억제 이식형 EEG 무선 원격측정 접근법 9,10,11을사용하여 수행될 수 있다. 두 기술은 자신의 장점과 단점을 가지고 있으며 발작 감수성 / 발작 활동, circadian 리듬, 수면 아키텍처, 진동 활동 및 동기화의 질적 및 정량적 특성화에 귀중한 접근 이 될 수 있습니다. 시간 주파수 분석, 소스 분석등을 포함하여 9,10,13,14,15,16,17.

테더링 된 시스템 및 무선 원격 측정은 각각 억제 / 반억제 또는 비 억제 조건하에서 EEG 기록을 허용하는 반면, 관련 실험 조건은 ABR 기록에 대한 요구 사항과 일치하지 않습니다. 라우드 스피커와 실험 동물의 정의된 위치와 제어된 음압 레벨(SPL)으로 시간이 지남에 따라 반복적으로 제시되는 정의된 음향 자극에 대한 후자의 요구. 이것은 제지 조건 하에서 머리 고정또는 마취18,19에의해 달성될 수 있습니다. 실험 적 스트레스를 줄이기 위해, 동물은 일반적으로 ABR 실험 동안 마취되지만 마취가 ABR19,20을방해 할 수 있다고 고려해야합니다.

일반적인 특성으로서, EEG는 50-100 μV. 배경 주파수 및 진폭의 전압 범위에서 상이한 주파수로 구축되어 실험 동물의 생리적 상태에 크게 의존한다. 깨어 있는 상태에서, 베타(β) 및 감마(γ) 주파수가 더 낮은 진폭을 가진 우세. 동물이 졸리거나 잠들 때, 알파(α), 세타(θ), 및 델타(δ) 주파수가 발생하여, 증가된 EEG진폭(21)을 나타낸다. 일단 감각 채널 (예를 들어, 음향 통로)가 자극되면, 정보 전파는 말초 및 중추 신경계를 통해 신경 활동을 통해 중재됩니다. 이러한 감각(예: 음향) 자극은 소위 EP 또는 유발 된 응답을 유발합니다. 특히, 이벤트 관련 전위(ERP)는 EEG(즉, 몇 마이크로볼트만)보다 진폭이 훨씬 낮다. 따라서, 단일 자극에 기초한 임의의 개별 ERP는 더 높은 진폭 의 EEG 배경에 대하여 손실될 것이다. 따라서 ERP를 기록하려면 동일한 자극(예: ABR 기록의 클릭)과 후속 평균화의 반복적인 적용이 필요하며, 이는 임의의 EEG 배경 활동 및 아티팩트를 제거한다. ABR 기록이 마취 된 동물에서 수행되는 경우, 여기에서 피하 전극을 사용하기 쉽습니다.

주로 AEP에는 일반적으로 A벌또는 BERA와 관련된 짧은 대기 시간 EP가 포함되며, 또한 중간 지연 EP(중간 지연 응답 [MLR]) 및 긴 대기 시간 EPs22와같은 이후 발병 전위가 포함됩니다. 중요한 것은, 청각 정보의 정보 처리에 있는 교란은 수시로 신경 정신병병 (demyelinating 질병, 정신 분열증 등)의 중앙 특징 및 AEP 변경과 관련되었던23,24 ,25. 행동 조사는 기능적 장애를 드러낼 수 있는 반면, AEP 연구는 특정 신경 해부학 적 구조와 관련된 청각 기능 장애의 정확한 시공간 분석을 허용합니다26.

ABR은 보통 에서 높은 강렬한 클릭 응용 프로그램에서 일반적으로 감지되며, 최대 7개의 ABR 피크(W I-WVII)가발생할 수 있습니다. 가장 중요한 파도(W I-W V)는 다음과 같은 신경 해부학 구조와 관련이 있습니다 : WI은 청각 신경 (말단 부분, 내이 내); W II를 달팽이관 핵(청각 신경의 근위 부분, 뇌간 종단); W III상수체(SOC)에 우수한 올리바리 복합체; W IV를 측면 렘니스커스(LL);; W V는 반대측에서 열등한 콜리큘러스(IC) 내의 측면 렘니스커스(LL)의 종결(27)(보충도 1)이다. WII-W V는 그(것)들에 기여하는 오름차순 청각 통로의 하나 이상의 해부학 적 구조를 가질 가능성이 있다는 것을 유의해야 한다. 특히, 피크와 청각 지역의 기본 구조의 정확한 상관 관계는 여전히 완전히 명확히되지 않습니다.

청각학에서 ABE는 스크리닝 및 진단 도구로 사용할 수 있으며 외과 모니터링28,29. 이형성증, 히pacusis 및 아나쿠스시스(예: 노화 관련 난청, 소음 유발 난청, 대사 및 선천성 난청, 기형 또는 기형으로 인한 비대칭 청력 상실 및 청력 결핍) 식별에 가장 중요합니다. 기형, 부상 및 신 생물)28. AAB는 또한 활동적이고 지적 장애가 있는 어린이 또는 기존의 청력 측정에 반응할 수 없는 다른 어린이(예: ADHD, MS, 자폐증 등)에 대한 선별 검사와 관련이 있습니다29 , 30)인공와우의 개발 및 외과적 피팅에28. 마지막으로, A브라스는 항간질제31,32와같은 신경정신병치료제의 잠재적이독성 부작용에 대한 귀중한 통찰력을 제공할 수 있다.

약리학 또는 형질전환 마우스 모델에서 인간으로 의한 신경 생리학적 지식의 번역의 가치는 쥐와 쥐33의 청각 패러다임에서 ERPs의 수준에서, 특히 수많은 설정에서 입증되었습니다. 34,35. 변경된 초기 AEP에 대한 새로운 통찰력 및 마우스와 쥐의 청각 정보 처리의 관련 변화에 대한 새로운 통찰력은 따라서 인간에게 번역될 수 있으며 청각, 신경학상 및 신경 정신 질환이 미래에. 여기에서 우리는 ABE가 기본적인 과학, 독성 학 및 약리학적 인 목적을 위해 마우스에서 성공적으로 기록되고 분석 될 수있는 방법에 대한 자세한 설명을 제공합니다.

Protocol

모든 동물 절차는 독일 동물 관리 위원회의 지침에 따라 수행되었으며 모든 프로토콜은 동물 관리에 대한 지역 기관 및 국가위원회의 승인을 받았습니다 (Landesamt für Natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, 주 노스 라인 – 웨스트 팔리아의 사무실, 자연, 환경 및 소비주의의 학과 [LANUV NRW], 독일). 저자는 모든 동물 실험이 실험실 동물의 관리 및 사용을위한 건강 가이드의 국립 연구소에 따라 수행되었다는 것…

Representative Results

클릭 및 톤 버스트 유발 ABR 레코딩을 사용하여 청력 임계값 차이, 진폭 증가 함수 및 대기 시간 비교를 평가할 수 있습니다. SPL 증가 모드에서 클릭 유발 AV는 Cav3.2 T 형 전압 게이트 Ca2 + 채널 (즉, Cav3.2+/- 및 Ca)에 대한 부족한 컨트롤과 두 가지 예시돌연변이 마우스 라인에 대한 그림 1에 설명되어 있습니다. v3.2…

Discussion

이 프로토콜은 마우스에서 청각 유발 뇌간 반응을 기록하는 방법에 대한 상세하고 통합적인 설명을 제공합니다. 그것은 동물 전처리에 특정 초점을 두고, 마 취, 그리고 잠재적인 방법론 혼란 요인. 후자는 포함, 다른 사람의 사이에서, 성별, 마우스 라인, 나이, 및 주거 조건. 이러한 모든 요인은 감각신경성 난청및 청각 정보 처리의 근본적인 측면에 영향을 미칠 수 있다는 점에 유의해야 합니다. …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 크리스티나 콜브 박사 (신경 퇴행성 질환에 대한 독일 센터 [DZNE]) 박사 로버트 스타크 (DZNE) 동물 사육 및 동물 건강 관리에 도움을 감사드립니다. 이 작품은 재정적으로 마약 및 의료 장치에 대한 연방 연구소에 의해 지원되었다 (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, 본, 독일).

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm		 Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked		 ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referências

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. Neurociência. , (2019).

Tags

Data AcquisitionAuditory Brainstem ResponseABRMiceEvoked ResponseAudiometryClickTone-burstElectrophysiologyHearing LossAnesthesiaCalibrationStimulusThresholdLatencyAmplitude

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citar este artigo
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).
Baixar citação
Reimpressões e Permissões

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image