Summary

Évaluation de la productivité des colonies sociales de guie (Vespinae) et introduction à la technique japonaise traditionnelle de chasse à la guet vespula japonaise

Published: September 11, 2019
doi:

Summary

Cet article méthodologique évalue la productivité d’une colonie de guêpes sociales en examinant le nombre de méconias par 100 cellules de peigne, pour estimer le nombre total d’adultes produits par les guêpes. La vidéo associée décrit comment rechercher des nids de guetve Vespula, une méthode développée par les chasseurs de guets amateurs.

Abstract

Pour les guêpes vespine, la productivité des colonies est généralement estimée en comptant le nombre de cellules larvaires. Cet article présente une méthode améliorée qui permet aux chercheurs d’estimer plus précisément le nombre d’adultes produits, en comptant le nombre de méconias (les selles laissées dans les cellules par les larves de guêpes lors de la pupaison dans les adultes, par 100 cellules) dans chaque peigne. Cette méthode peut être appliquée avant ou après l’effondrement de la colonie(c.-à-d., dans les nids actifs ou inactifs). L’article décrit également comment localiser les colonies sauvages de guets Vespula en « signalant » les appâts de guet et en chassant les guets les collectant, en utilisant une méthode traditionnellement exécutée par les populations locales dans le centre du Japon (comme illustré dans la vidéo associée). La méthode de chasse Vespula décrite a plusieurs avantages: il est facile de relancer la chasse à partir d’un point où le fourrager de retour au nid a été perdu, et il est facile de localiser l’emplacement du nid que les guêpes marquées perdent souvent leur drapeau au nid entrée. Ces méthodes d’estimation de la productivité des colonies et de collecte des nids peuvent être utiles pour les chercheurs qui étudient les guêpes sociales.

Introduction

On pense que chaque espèce développe une stratégie optimale de survie et de reproduction parmi un vaste éventail de stratégies possibles. Dans la sélection naturelle, les individus avec des traits qui maximisent le succès reproducteur d’un individu laisseront plus de progéniture (et de gènes) à la prochaine génération. Par conséquent, le nombre de descendants produits par un individu peut être utilisé comme un indicateur de la condition physique évolutive relative de l’individu. Dans un contexte écologique donné, la comparaison du nombre de descendants produits par rapport à d’autres stratégies comportementales peut aider les chercheurs à prédire la meilleure stratégie pour optimiser la condition physique1.

Les hyménoptères sociaux (comme les guêpes, les abeilles et les fourmis) ont un système de trois castes différentes, qui sont des travailleurs (femelles stériles), des reines (gynes) et des mâles1. Seules les nouvelles reines (gynes) et les mâles comptent pour la forme physique dans les Hyménoptères sociaux. La production des travailleurs ne contribue pas directement à la condition physique puisque le travailleur est infertile. D’autre part, une reine qui peut produire une productivité plus élevée de colonie (telle qu’un plus grand nombre de cellules totales ou un nid plus lourd) est considérée pour avoir une forme plus élevée dans les Hyménoptères sociaux, indépendamment du nombre de nouvelles reines et mâles réellement produits (voir , par exemple,Tibbetts et Reeve2 et Mattila et Seeley3). En général, il est difficile de compter avec précision le nombre de descendants produits par une colonie d’hyménoptères sociaux. En fait, les reines de nombreux insectes sociaux vivent pendant plus d’un an(par exemple,les reines fourmis coupe-feuilles peuvent vivre ’20 ans4 et les reines des abeilles peuvent vivre pendant 8 ans5). En outre, une reine peut produire des milliers de descendants reproducteurs au cours de plusieurs semaines ou mois, même dans les espèces annuelles de genres Vespa et Vespula6,7,8. En outre, la durée de vie des travailleurs est plus courte que celle de leur reine mère, et les travailleurs meurent souvent loin de leurs nids. Par conséquent, même si l’on pouvait compter avec précision tous les adultes dans un nid à un moment donné, un tel décompte ne représenterait pas exactement le nombre de descendants produits. Par conséquent, le nombre de descendants produits a été estimé à peu près à partir de la taille du nid, le nombre de travailleurs dans le nid, ou le poids du nid à un moment donné dans le temps3,9,10. Le nombre de cellules larvaires pourrait entraîner une surestimation de la production de la progéniture lorsque certaines cellules sont vides. La même méthode pourrait également entraîner une sous-estimation potentielle de la production de la progéniture parce que les peignes de petites cellules qui contiennent de la couvée ouvrière peuvent produire deux ou trois cohortes de larves6,7,11.

Le premier objectif de ce travail est de fournir une méthode améliorée pour estimer la productivité des colonies de guêp vespine en termes de nombre d’adultes produits. Yamane et Yamane ont suggéré que la meilleure façon d’estimer le nombre de descendants produits par une colonie est de compter la méconia dans le nid12. La méconia est la pastille fécale comprenant la cuticule larvaire, l’intestin et le contenu intestinal qu’une larve laisse dans sa cellule lors de la pupaison (Figure 1A). Le nombre total de méconias produites par peigne est calculé en multipliant le nombre total de cellules présentes par le nombre moyen de méconias par cellule. Il y a souvent plusieurs couches de méconia dans une cellule, et chaque méconia indique qu’un individu a pupaté avec succès dans cette cellule6,11 (Figure 1B). Lors de l’estimation du nombre moyen de méconia par cellule, si le nombre de cellules examinées est faible (une petite taille d’échantillon), l’erreur standard (SE) augmente, et par conséquent, l’erreur pour le nombre total de meconia par peigne devient plus élevé que si la taille de l’échantillon était plus grande. Le SE de la moyenne (SEM) est une mesure de la dispersion des moyens d’échantillon autour de la moyenne de population. Par conséquent, dans cette étude, je me concentre sur le SEM du nombre de méconias par cellule pour estimer la population (le nombre d’adultes produits) à partir de la moyenne de l’échantillon (le nombre moyen de méconia par cellule). Cette étude tente de déterminer combien d’échantillons sont nécessaires pour obtenir un taux de SE inférieur à 0,05 par cellule. Pour ce faire, une simulation numérique est effectuée avec des données réelles sur le nombre de meconia par peigne, afin de déterminer la taille minimale de l’échantillon (pour les peignes des travailleurs et des reines) nécessaire pour estimer cette valeur avec précision dans le SE défini de 0,05.

Les colonies de guetve vespine vivent dans des nids cachés (sous-sol ou aériens) composés de peignes horizontaux multiples, construits en série de haut en bas6,7,11. La taille moyenne des cellules augmente du premier (en haut) au dernier peigne (en bas). Dans les peignes inférieurs, un changement soudain de la taille moyenne des cellules peut être vu. Ces cellules plus larges sont construites pour le développement de nouvelles reines. Par conséquent, une estimation plus précise de la productivité des colonies(c.-à-d.le nombre d’individus produits) peut être obtenue lorsque l’on considère le nombre total de méconia dans les cellules ouvrières (petites cellules) et les cellules reines (grandes cellules). Afin d’estimer la condition physique au niveau de la colonie, les chercheurs ont pu estimer le nombre de reines produites et se concentrer sur la méconia dans les cellules reines seulement. Quant aux mâles reproducteurs, ils sont rémunéris dans des cellules ouvrières ou reines, selon l’espèce. Ainsi, il peut être difficile d’estimer la production masculine d’une colonie, sauf chez les espèces où les mâles ont une troisième taille cellulaire unique13 (par exemple, Dolichovespula arenaria).

Le deuxième objectif de ce travail est de présenter une technique utile pour localiser les colonies de guets vespine sauvages dans le champ et les transplanter dans des niches de laboratoire. Bien que certains chercheurs obtiennent des nids de guêp à partir d’appels de lutte antiparasitaire(c.-à-d., les personnes les signalant comme des ravageurs14,15), cette méthode n’est pas toujours possible ou souhaitable. Les chercheurs pourraient avoir besoin de recueillir des nids dans des zones sauvages et habitées où les contrôleurs antiparasitaires ne fonctionnent pas, ou de mener leurs recherches en obtenant plus souplement des nids à des moments précis. Fait intéressant, les personnes vivant dans les zones montagneuses du centre du Japon collectent traditionnellement et les guêpes arrière (Vespula shidai, Vespula flaviceps, et Vespula vulgaris) pour la nourriture. Par conséquent, les techniques de collecte et d’élevage artificiel pour ces guêpes sont bien développées dans ces zones17.

Cet article résume également les méthodes employées pour élever les guêpes Vespula. L’organisme expérimental de cette étude était V. shidai, une guleuse sociale qui niche au sol et qui habite l’Asie occidentale et le Japon. V. shidai possède la plus grande taille de colonie parmi toutes les guêpes japonaises, avec un total de 8.000 à 12.000 cellules par nid, avec un maximum de 33.400 cellules14,18. Les travailleurs de V. shidai ont un poids moyen humide de 67,62 à 9,56 mg. Les mâles sont habituellement élevés dans les cellules ouvrières; en revanche, les nouvelles reines sont rémunées dans des cellules reines spécialement construites et plus larges14.

Figure 1
Figure 1 : Méconium dans une cellule larvaire. (A) Section transversale d’un peigne de Vespula shidai. La méconia est indiquée par des flèches rouges. (B) Deux méconias sont superposés. Chaque flèche bleue indique un méconium. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.

Protocol

1. Évaluation de la productivité des colonies Estimation du nombre de cellules par peigne Séparez les peignes un par un. Balayez toutes les guêpes adultes du peigne et retirez toutes les larves et les pupae des cellules avec des pinces. Mesurer les mesures carrées de 10 cellules choisies au hasard par peigne, à l’aide d’un logiciel d’imagerie(p. ex.,image J version 1.48, voir http://imagej.nih.gov/ij/). Prenez une photo avec la référence d’échelle…

Representative Results

L’un des objectifs de cette étude était de déterminer combien d’échantillons sont nécessaires pour obtenir un SEM du nombre de méconia par cellule qui est inférieur à 0,05. Dans cette étude, un peigne d’une taille moyenne de 20 mm2 a été défini comme un peigne de travailleur, tandis que les peignes plus grands ont été définis comme des peignes de reine. J’ai compté le nombre de cellules pour les peignes de reine et les peignes de travailleur (dans cette étude, …

Discussion

La productivité des colonies d’abeilles, de fourmis et de guêpes a été estimée précédemment par le nombre de travailleurs et de cellules dans les nids ou par le poids des nids3,9,10. Cette étude montre que l’estimation du nombre de méconias fournit une meilleure estimation du nombre total d’individus produits(c.-à-d.un meilleur indicateur de la productivité des colonies). En fait, il a été constaté que, po…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L’auteur tient à remercier Katsuyuki Takahashi, Hiroo Kobayashi, Fumihiro Sato, Daikichi Ogiso, Toshihiro Hayakawa et Hisaki Imai pour lui avoir enseigné la méthode traditionnelle de chasse aux gules. L’auteur tient à remercier tout particulièrement Kevin J. Loope et Davide Santoro pour avoir soigneusement relu le manuscrit. L’auteur est reconnaissant à Masato Abe, Yasukazu Okada, Yuichiro Kobayashi, Masakazu Shimada et Koji Tsuchida pour leur discussion. L’auteur tient à remercier Yuya Shimizu et Haruna Fujioka pour leur assistance technique dans l’évaluation de la productivité des colonies. L’auteur tient à remercier le club d’abeilles noires De Tsukechi pour son soutien au tournage vidéo. L’auteur tient à remercier trois critiques anonymes pour leurs commentaires sur une première version de ce document. Cette étude a été soutenue en partie par Takeda Science Foundation, Fujiwara Natural History Foundation, Funding of the Nagano Society for The Promotion of Science, Shimonaka Memories Foundation, Takara Harmonist Fund et le Dream Project de Come on UP, Ltd.

Materials

cuttlefish Any fresh/ as a bait
dace Any fresh/ as a bait
chichken heart Any fresh/ as a bait
plastic bag (polyethylene) Any as a flag
bamboo skewer Any
industrial sewing thread FUJIX Ltd. King polyester, No.100
paint marker pen Mitsubishi pencil UNI, POSCA, PC5M
fishing rod ANY
carrying box made of wood
nest box made of wood

Referências

  1. Davies, N. B., Krebs, J. R., West, S. A. . An introduction to Behavioural Ecology. , (2012).
  2. Tibbetts, E. A., Reeve, H. K. Benefits of foundress associations in the paper wasp Polistes dominulus: increased productivity and survival, but no assurance of fitness returns. Behavioural Ecology. 14, 510-514 (2003).
  3. Mattila, H. R., Seeley, T. D. Genetic Diversity in Honey Bee colonies Enhances Productivity and Fitness. Science. 317, 362 (2007).
  4. Weber, N. A. Gardening Ants, the Attines. American Philosophical Society. , (1972).
  5. Baer, B., Schmid-Hempel, P. Sperm influences female hibernation success, survival and fitness in the bumble-bee Bombus terrestris. Proceedings: Biological Science. 272 (1560), 319-323 (2005).
  6. Spradbery, J. P. . Wasps. An Account of the Biology and Natural History of Social and Solitary Wasps, with Particular Reference to Those of the British Isles. , (1973).
  7. Matsuura, M., Yamane, S. . Comparative Ethology of the Vespine Wasps. , (1984).
  8. Greene, A. Production schedules of vespine wasps: an empirical test of the bang-bang optimization model. Journal of Kansas Entomological Society. 57 (4), 545-568 (1984).
  9. Cole, B. J. Multiple mating and the evolution of social behavior in the Hymenoptera. Behavior Ecology Sociobiology. 12, 191-201 (1983).
  10. Goodisman, M. A. D., Kovacs, J. L., Hoffman, E. A. The significance of multiple mating in the social wasps Vespula maculifrons. Evolution. 61 (9), 2260-2267 (2007).
  11. Greene, A., Ross, K. G., Matthews, R. W. Dolichovespula and Vespula. The Social Biology of Wasps. , 263-305 (1991).
  12. Yamane, S., Yamane, S. Investigating methods of dead vespine nests (Hymenoptera, Vespidae) (Methods of taxonomic and bio-sociological studies on social wasps. II). Teaching Materials for Biology. 12, 18-39 (1975).
  13. Loope, K. J. Matricide and queen sex allocation in a yellowjacket wasp. The Science of Nature. 103 (57), 1-11 (2016).
  14. Matsuura, M. . Social Wasps of Japan in Color. , (1995).
  15. Foster, K. R., Ratnieks, F. L. W., Gyllenstrand, N., Thoren, P. A. Colony kin structure and male production in Dolichovespula wasps. Molecular Ecology. 10 (4), 1003-1010 (2001).
  16. Loope, K. J., Chien, C., Juhl, M. Colony size is linked to paternity frequency and paternity skew in yellowjacket wasps and hornets. BMC Evolutionary Biology. 14 (1), 1-12 (2014).
  17. Nonaka, K. Cultural and commercial roles of edible wasps in Japan. Forest Insects as Food: Humans Bite Back. Proceedings of a workshop on Asia-Pacific resources and their potential for development. , 123-130 (2010).
  18. Yamane, S., Funakoshi, K. The unique ecology of Vespula shidai amamiana and the origin of distribution. Ecological Society of Japan. Biodiversity of the Nansei Islands, its formation and conservation. , (2015).
  19. . R: The R Project for Statistical Computing Available from: https://www.R-project.org/ (2018)
  20. Saga, T., Kanai, M., Shimada, M., Okada, Y. Mutual intra- and interspecific social parasitism between parapatric sister species of Vespula wasps. Insectes Sociaux. 64 (1), 95-101 (2017).
  21. Van Huis, A., et al. . Edible insects: future prospects for food and feed security. , (2013).
check_url/pt/59044?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Saga, T. Evaluation of the Productivity of Social Wasp Colonies (Vespinae) and an Introduction to the Traditional Japanese Vespula Wasp Hunting Technique. J. Vis. Exp. (151), e59044, doi:10.3791/59044 (2019).

View Video