ここで他の大腸菌の欠失変異株を作るための基盤として、既存の抗生物質抵抗カセット削除構造の使用のためのプロトコルを提案する.このような欠失変異体を動員し、P1 ファージ伝達を使用して受信者負担の対応する軌跡に挿入することができます。
細菌の未知遺伝子の機能を勉強する最初のアプローチは、この遺伝子のノックアウトを作成することです。ここでは、バクテリオファージ P1 と一般化伝達を使用して別に 1 つのエシェリヒア属大腸菌の緊張から遺伝子欠失変異体を転送するための堅牢で高速なプロトコルについて述べる。このメソッドは、変異が選択可能な (例えば、抗生物質のカセット挿入を使用して遺伝子破壊に基づく) にする必要があります。このような抗生物質のカセット ドナーひずみから動員できる興味の受信者にすばやく導入し、遺伝子失変異を簡単に生成します。抗生物質のカセットは、ゲノムのシーケンスでのみ 〜 100 ベース ペア長い傷跡きれいなノックアウトを生成するサイト固有のリコンビナーゼによってカセットの切除ができる flippase の認識部位を含むように設計できます。プロトコルを示す細胞の生合成に関与するアセンブリ因子多摩遺伝子をノックアウトし、器官にこのノックアウトの効果と 2 つの三量体細胞アドヘシンの機能をテストします。P1 伝達によって遺伝子の欠失は、その制限があります、使いやすさとその実装の速度は、遺伝子欠失の他の方法に代わる。
遺伝子の機能を検討する共通の最初のアプローチは、ノックアウト変異を実行し、結果の表現型を観察することです。これはまた逆遺伝学と呼ばれます。最後の 70 年間またはそう、その培養と遺伝子操作1こうして容易なため細菌エシェリヒア属大腸菌分子生物学の主力となっています。エシェリヒア属大腸菌、マーカー交換変異2,3と、最近では、λ 赤または Rac ET システム4,5を使用してジーンを含む遺伝子の削除を生成するいくつかの方法が開発されています。,6。
広く使われているシステムでは、個々 の遺伝子のコード配列が染色体5,7から後で摘出することができます抗生物質耐性カセットに置き換えられます。いずれかの側に flippase (FLP) 認識対象 (FRT) サイトが並ぶされているカナマイシン (菅) 抵抗カセットによって例えばコーディング シーケンスが置き換えられます。FRT サイトは菅カセットの削除につながる FRT サイト間の部位特異的組換えを媒介する FLP リコンビナーゼによって認識されます。この方法で、約 100 塩基対 (bp) (図 1) のシーケンスでのみ最小限の傷跡を残して、ある特定の遺伝子のコーディング シーケンスの完全な削除を実現できます。
わずか 10 年前、いわゆる慶應義塾コレクションが開発されました。ほぼすべての非本質的な遺伝子が λ 赤組換え7,8によって削除された個別に標準検査大腸菌K12 株に基づく細菌ライブラリです。このコレクションの各内のクローンは、物品税課税対象の菅抵抗カセットに置き換えられます 1 つのコーディング シーケンスを持っています。慶應コレクションは、多くのアプリケーション9便利なツールを証明しています。そのようなアプリケーションは、他の大腸菌の欠失変異株の生産です。特定削除クローンから菅カセットは、バクテリオファージ P110、11,12,13,14などを一般に伝達によって動員することができます。そのようなストレスから調製したファージ株式使用できます受信者、関心の大腸菌に感染する、低いが信頼性の高い周波数菅でカセットを含む地域に組み込むことが受信者のゲノムの相同組み換えによる(図 2)。菅含有培地で成長形質を選択できます。この後、抗生物質耐性カセットの除去が必要な場合、FLP リコンビナーゼはトランスで transductant 株に指定できます。抵抗、アンピシリン (Amp) のマーカーを運ぶ、FLP を含むプラスミドを硬化後、菅とアンプに敏感なクローンを上映するほか、正しい切除野生型のコーディング シーケンスと菅カセットはコロニー PCR によって確認されます。
ここでは、ノックアウト上記戦略に基づく大腸菌の菌株の生産のステップのそれぞれを記述する詳細なプロトコルが表示されます。例として、多摩遺伝子の削除が示されています。多摩は、アセンブリ モジュール (TAM)、特定の細胞蛋白質と線毛15,16,17の生合成に関与する輸送の一部である外膜 β バレル型タンパク質をエンコードします。このノックアウトのひずみを 2 つの三量体細胞アドヘシン (TAAs)、エルシニア双球菌矢田、エシェリヒア属大腸菌免疫グロブリン (Ig) の器官に多摩の削除の影響を調べる使用して-バインド TAA EibD18,19。
P1 伝達は、エシェリヒア属大腸菌の遺伝子の削除を生成するための高速、堅牢で、信頼性の高い方法です。BL21 由来の受信者に慶應義塾ドナーひずみから多摩失変異を伝達でここでこれを示します。伝達プロセスの主要な段階は、ライセートの生産、伝達自体、菅抵抗カセットの切除および PCR によるノック アウトの検証です。合計では、プロセスは約 1 週間ほどかかります、?…
The authors have nothing to disclose.
慶應コレクション系統は、ナショナルバイオ リソース プロジェクト (遺伝研, 日本) から得られた:エシェリヒア属大腸菌。彼の継続サポートありがとうダーク リンケ (バイオ サイエンス学科、オスロ大学)。この作品は、ノルウェー若手研究者グラント 249793 (ジャック C. レオ) に研究評議会によって賄われていた。
Strains | |||
E. coli BW25113 | NIG | ME6092 | Wild-type strain of Keio collection |
E. coli BL21(DE3) | Merck | 69450-3 | Expression strain |
E. coli BL21DABCF | Addgene | 102270 | Derived from BL21(DE3) |
E. coli JW4179 | NIG | JW4179-KC | tamA deletion mutant |
P1 vir | NIG | HR16 | Generally transducing bacteriophage |
Plasmids | |||
pCP20 | CGSC | 14177 | conditionally replicating plasmid with FLP |
pASK-IBA2 | IBA GmbH | 2-1301-000 | expression vector |
pEibD10 | N/A | N/A | for production of EibD; plasmid available on request |
pET22b+ | Merck | 69744-3 | expression vector |
pIBA2-YadA | N/A | N/A | for production of YadA; plasmid available on request |
Chemicals | |||
Acetic acid | ThermoFisher | 33209 | |
Agar | BD Bacto | 214010 | |
Agarose | Lonza | 50004 | |
Ampicillin | Applichem | A0839 | |
Anhydrotetracycline | Abcam | ab145350 | |
anti-collagen type I antibody COL-1 | Sigma | C2456 | |
Bovine collagen type I | Sigma | C9791 | |
Calcium chloride | Merck | 102382 | |
Chloroform | Merck | 102445 | |
Di-sodium hydrogen phosphate | VWR | 28029 | |
DNA dye | Thermo | S33102 | |
DNA molecular size marker | New England BioLabs | N3232S | |
DNase I | Sigma | DN25 | |
dNTP mix | New England Biolabs | N0447 | |
ECL HRP substrate | Advansta | K-12045 | |
EDTA | Applichem | A2937 | |
Glycerol | VWR | 24388 | |
goat anti-mouse IgG-HRP | Santa Cruz | sc-2005 | |
goat anti-rabbit IgG-HRP | Agrisera | AS10668 | |
HEPES | VWR | 30487 | |
Isopropyl thiogalactoside | VWR | 43714 | |
Kanamycin | Applichem | A1493 | |
Lysozyme | Applichem | A4972 | |
Magnesium chloride | VWR | 25108 | |
Manganese chloride | Sigma | 221279 | |
N-lauroyl sarcosine | Sigma | L9150 | |
Skim milk powder | Sigma | 70166 | |
Sodium chloride | VWR | 27808 | |
tamA forward primer | Invitrogen | N/A | Sequence 5'-GAAAAAAGGATATTCAGGAGAAAATGTG-3' |
tamA reverse primer | Invitrogen | N/A | Sequence 5'-TCATAATTCTGGCCCCAGACC-3' |
Taq DNA polymerase | New England Biolabs | M0267 | |
Tri-sodium citrate | Merck | 106448 | |
Tryptone | VWR | 84610 | |
Tween20 | Sigma | P1379 | |
Yeast extract | Merck | 103753 | |
Equipment | |||
Agarose gel electrophoresis chamber | Hoefer | SUB13 | |
Bead beater | Thermo | FP120A-115 | |
CCD camera | Kodak | 4000R | |
Electroporation cuvettes | Bio-Rad | 165-2089 | |
Electroporation unit | Bio-Rad | 1652100 | |
Gel imager | Nippon Genetics | GP-03LED | |
Incubating shaker | Infors HT | Minitron | |
Incubator | VWR | 390-0482 | |
Microcentrifuge | Eppendorf | 5415D | |
Microwave oven | Samsung | CM1099A | |
PCR machine | Biometra | Tpersonal | |
PCR strips | Axygen | PCR-0208-CP-C | |
pH meter | Hanna Instruments | HI2211-01 | |
PVDF membrane | ThermoFisher | 88518 | |
SDS-PAG electrophoresis chamber | ThermoFisher | A25977 | |
Tabletop centrifuge | Beckman Coulter | B06322 | |
Vortex mixer | Scientific Industries | SI-0236 | |
Water bath | GFL | D3006 | |
Wet transfer unit | Hoefer | TE22 |