Summary

Isolation og kultur af primær epikardielle celler, der stammer fra menneskelige voksen og fostrets hjerte prøver

Published: April 24, 2018
doi:

Summary

Epicardium spiller en afgørende rolle i udviklingen og reparation af hjertet ved at give celler og vækstfaktorer Myokardie væg. Her, beskriver vi en metode til at kultur menneskelige primære epikardielle celler, der giver mulighed for undersøgelse og sammenligning af deres udviklingsmæssige og voksen egenskaber.

Abstract

Epicardium, en epitelcelle lag dækker myokardiet, har en væsentlig rolle under hjerte udvikling, samt reparation svar af hjertet efter iskæmisk skade. Når aktiveret, gennemgå epikardielle celler en proces kendt som epitelial mesenchymale overgangen (EMT) at levere celler til regenererende myokardiet. Desuden bidrager epicardium via sekretion af væsentlige paracrine faktorer. For fuldt ud at værdsætte epicardium regenerativ potentiale, er en menneskelig celle model påkrævet. Her skitsere vi en roman celle kultur model for at udlede primære epikardielle afledte celler (EPDCs) fra menneskelige voksen og fostrets hjerte væv. For at isolere EPDCs, er epicardium dissekeret fra ydersiden af hjertet modellen og forarbejdet til en enkelt cellesuspension. Næste, EPDCs er belagte og kulturperler i EPDC medium indeholdende ALK 5-kinase inhibitor SB431542 at opretholde deres epitelial fænotype. EMT er foranlediget ved stimulation med TGFβ. Denne metode giver mulighed for undersøgelse af processen med menneskelige epikardielle EMT i kontrollerede omgivelser, for første gang, og gør det lettere at få mere indsigt i secretome af EPDCs, der kan støtte hjerte regenerering. Desuden, denne ensartede fremgangsmåde giver mulighed for direkte sammenligning af menneskelig voksne og føtale epikardielle adfærd.

Introduction

Epicardium, en enkelt celle epitel lag at konvolutter hjertet, er af vital betydning for udvikling af hjerte og reparation (gennemgik i Smits et al. 1). udviklingshæmmede, epicardium udspringer af proepicardial orglet, en lille struktur placeret i bunden af den udvikle hjerte. Omkring udviklingsmæssige dag E9.5 i mus, og 4 uger efter undfangelse i menneskelige begynde cellerne at migrere fra denne blomkål struktur og dække den udvikle myokardiet2. Når en enkelt epitelcelle lag er dannet, gennemgår en del af de epikardielle celler epitelial mesenchymale overgangen (EMT). Under EMT, celler mister deres epitelial egenskaber, såsom celle-celle sammenvoksninger, og opnå en mesenchymale fænotype, som giver dem evnen til at overflytte til udviklingslandene myokardiet. De dannede epikardielle afledte celler (EPDCs) kan udvikle sig til flere hjerte celletyper, herunder fibroblaster, glatte muskelceller, og potentielt cardiomyocytes og endotelceller3, selv om differentiering af sidstnævnte to celle befolkningsgrupper er stadig genstand for debat (gennemgik i Smits et al. 4). Derudover epicardium giver lærerigt paracrine signaler at myokardiet at regulere dens vækst og vascularization5,6,7,8. Flere undersøgelser har vist, at nedsat epikardielle dannelse fører til udviklingsmæssige mangler i hjertemuskulaturen9,10, vaskulatur11og varmeledning system12, understreger væsentlige bidrag af epicardium til dannelsen af hjertet.

Selv om voksen midt i epicardium er til stede som en sovende lag, bliver det genaktiveret ved iskæmi13. Epikardielle reaktivering efter skade sammenfatter flere af processerne beskrevet for kardiale udvikling, herunder spredning og EMT14, omend mindre effektivt. Interessant, selv om de nøjagtige mekanisme ikke er fuldt forstået, de epikardielle bidrag til at reparere kan forbedres ved behandling med fxThymosin β415 eller ændret VEGF-A mRNA16, hvilket resulterer i afhjælpes hjerte funktionen efter myokardieinfarkt. Epicardium er derfor en interessant celle kilden øge endogen reparation af de sårede hjerte.

Mekanismer af cardiac udvikling er ofte sammenfattet under skade, dog i en mindre effektiv måde. På jagt efter epikardielle aktivatorer er det altafgørende, at vi kan bestemme og sammenligne den fulde kapacitet af den føtale og voksne epicardium. Derudover fra et terapeutisk synspunkt er det vigtigt, at ud over dyreforsøg, vi udvide viden om reaktion af den menneskelige epicardium. Her, beskriver vi en metode til at isolere og kultur menneskelige voksen og fostrets epikardielle afledte celler (EPDCs) i en epitel-celle-lignende morfologi og fremkalde EMT. Med denne model, vi sigter mod at undersøge og sammenligne voksne og føtale epikardielle celle adfærd.

Den største fordel ved denne protokol er brug af menneskelige epikardielle materiale, som ikke er blevet grundigt undersøgt. Vigtigere, giver beskrevet isolation og celle kultur protokollen en enkelt ensartet metode til at udlede begge føtale og voksne cobble EPDCs, gør det muligt for en direkte sammenligning mellem disse to celle kilder. Derudover da epicardium er isoleret baseret på dens placering, er det sikret, at cellerne er faktisk epicardially afledte17.

Mens menneskelige EPDC isolation metoder har oprettet tidligere, regne disse for det meste udvækst protokoller hvor stykker af hjerte- eller epikardielle væv er belagt på en celle kultur parabol18,19. Denne tilgang markerer dermed specielt til celler der delvist mister deres epitelial fænotype for at migrere, og der er mere tilbøjelige til at gennemgå spontan EMT. I den nuværende protokol behandles epicardium først i en enkelt celle løsning, som giver mulighed for de isolerede EPDCs til at opretholde deres epitelial tilstand. Denne metode giver derfor et solidt in vitro- model for at studere epikardielle EMT.

Protocol

Alle eksperimenter med humant væv individer blev godkendt af den etiske komité i Leiden University Medical Center og er i overensstemmelse med Helsinki-erklæringen. Alle trin er udført med sterilt udstyr i en celle kultur flow kabinet. 1. præparater Forberede EPDC medium ved at blande Dulbeccos modificerede Eagle medium (DMEM low-glucose) og Medium 199 (M199) i forholdet 1:1. Tilføje 10% varme inaktiveret føtal bovint serum (FBS, varme inaktiveres i 25 min ved 56 ° C) o…

Representative Results

Her, skitsere vi en enkel protokol for at isolere EPDCs fra menneskelige voksen og fostrets hjerte væv (figur 1). Denne protokol udnytter epicardium lettilgængelig placering på ydersiden af hjertet (figur 1A). Farvning af hjertet øret efter dissektion viser, at WT1 + epicardium fjernes, mens den underliggende subepicardial ekstracellulære matrix og Myokardie væv forbliver intakt (figur 1J). Omf…

Discussion

Her beskriver vi en detaljeret protokol til at isolere og kultur primære epikardielle celler stammer fra menneskelige voksne og føtale hjerter. Omfattende karakterisering af disse celler har været tidligere udgivet17. Vi har vist, at begge celletyper kan opretholdes som brostensbelagte-lignende epitelceller når kulturperler med ALK5 kinase inhibitor SB431542. EMT er en integreret del af epikardielle aktivering i vivo under både udvikling og efter skade svar. EMT kan studeres ved hjæ…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning er støttet af den nederlandske organisation for videnskabelig forskning (NWO) (VENI 016.146.079) og en LUMC Research fellowship både til AMS og LUMC Bontius Stichting (MJG).

Materials

Dulbecco’s modified Eagle’s medium + GlutaMAX Gibco 21885-025
Medium 199  Gibco 31150-022
Fetal Bovine Serum  Gibco 10270-106
Trypsin 0.25% Invitrogen 25200-056
Penicillin G sodium salt Roth HP48
Streptomycin sulphate Roth HP66
Trypsin 1:250 from bovine pancreas Serva 37289
EDTA Sigma E4884
Gelatin from porcine skin Sigma-Aldrich G1890
Culture plates 6 well Greiner bio-one 657160
Culture plates 12 well Corning 3512
Culture plates 24 well Greiner bio-one 662160
SB 431542 Tocris 1614
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Merck 102931
100-1000µL Filtered Pipet Tips Corning 4809
10-ml pipet Greiner bio-one 607180
5-ml pipet Greiner bio-one 606180
Cell culture dish 100/20 mm Greiner bio-one 664160
PBS Gibco 10010056 Or home-made and sterilized
Eppendorf tubes 1.5 mL Eppendorf 0030120086
15-ml centrifuge tubes Greiner bio-one 188271
50-ml centrifuge tubes Greiner bio-one 227261
10 mL Syringe Becton Dickinson 305959
Needles 19 Gauge Becton Dickinson 301700
Needles 21 Gauge Becton Dickinson 304432
EASYstrainer Cell Sieves, 100 µm Greiner bio-one 542000
TGFβ3  R&D systems 243-B3
Monoclonal Anti-Actin, α-Smooth Muscle Sigma A2547 
Anti-Mouse Alexa Fluor 555 Invitrogen A31570
Alexa Fluor 488 Phalloidin Invitrogen A12379
Equipment
Name Company Catalog Number Comments
Pipet P1,000 Gilson F123602
Pipet controller Integra 155 015
Stereomicroscope Leica M80
Inverted Light Microscope Olympus CK2
Centrifuge Eppendorf 5702
Waterbath GFL 1083

Referências

  1. Smits, A. M., Dronkers, E., Goumans, M. J. The epicardium as a source of multipotent adult cardiac progenitor cells: Their origin, role and fate. Pharmacological research. 127, 129-140 (2017).
  2. Risebro, C. A., Vieira, J. M., Klotz, L., Riley, P. R. Characterisation of the human embryonic and foetal epicardium during heart development. Development. 142 (21), 3630-3636 (2015).
  3. Zhou, B., Ma, Q., et al. Epicardial progenitors contribute to the cardiomyocyte lineage in the developing heart. Nature. 454 (7200), 109-113 (2008).
  4. Smits, A., Riley, P. Epicardium-Derived Heart Repair. Journal of Developmental Biology. 2 (2), 84-100 (2014).
  5. Chen, T. H. P., Chang, T. C., et al. Epicardial Induction of Fetal Cardiomyocyte Proliferation via a Retinoic Acid-Inducible Trophic Factor. Biologia do Desenvolvimento. 250 (1), 198-207 (2002).
  6. Pennisi, D. J., Ballard, V. L. T., Mikawa, T. Epicardium is required for the full rate of myocyte proliferation and levels of expression of myocyte mitogenic factors FGF2 and its receptor, FGFR-1, but not for transmural myocardial patterning in the embryonic chick heart. Developmental Dynamics. 228 (2), 161-172 (2003).
  7. Lavine, K. J., Yu, K., et al. Endocardial and epicardial derived FGF signals regulate myocardial proliferation and differentiation in vivo. Developmental Cell. 8 (1), 85-95 (2005).
  8. Stuckmann, I., Evans, S., Lassar, A. B. Erythropoietin and retinoic acid, secreted from the epicardium, are required for cardiac myocyte proliferation. Developmental biology. 255 (2), 334-349 (2003).
  9. Männer, J., Schlueter, J., Brand, T. Experimental analyses of the function of the proepicardium using a new microsurgical procedure to induce loss-of-proepicardial-function in chick embryos. Developmental Dynamics. 233 (4), 1454-1463 (2005).
  10. Weeke-Klimp, A., Bax, N. A. M., et al. Epicardium-derived cells enhance proliferation, cellular maturation and alignment of cardiomyocytes. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 49 (4), 606-616 (2010).
  11. Eralp, I., Lie-Venema, H., et al. Coronary Artery and Orifice Development Is Associated With Proper Timing of Epicardial Outgrowth and Correlated Fas Ligand Associated Apoptosis Patterns. Circulation Research. 96 (5), (2005).
  12. Kelder, T. P., Duim, S. N., et al. The epicardium as modulator of the cardiac autonomic response during early development. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 89, 251-259 (2015).
  13. van Wijk, B., Gunst, Q. D., Moorman, A. F. M., van den Hoff, M. J. B. Cardiac regeneration from activated epicardium. PloS one. 7 (9), e44692 (2012).
  14. Zhou, B., Honor, L. B., et al. Adult mouse epicardium modulates myocardial injury by secreting paracrine factors. The Journal of clinical investigation. 121 (5), 1894-1904 (2011).
  15. Smart, N., Bollini, S., et al. De novo cardiomyocytes from within the activated adult heart after injury. Nature. 474 (7353), 640-644 (2011).
  16. Zangi, L., Lui, K. O., et al. Modified mRNA directs the fate of heart progenitor cells and induces vascular regeneration after myocardial infarction. Nature Biotechnology. 31 (10), 898-907 (2013).
  17. Moerkamp, A. T., Lodder, K., et al. Human fetal and adult epicardial-derived cells: a novel model to study their activation. Stem Cell Research & Therapy. 7 (1), 1-12 (2016).
  18. Clunie-O’Connor, C., Smits, A. M., et al. The Derivation of Primary Human Epicardium-Derived Cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. 35, 2C.5.1-2C.5.12 (2015).
  19. Van Tuyn, J., Atsma, D. E., et al. Epicardial Cells of Human Adults Can Undergo an Epithelial-to- Mesenchymal Transition and Obtain Characteristics of Smooth Muscle Cells In Vitro. Stem Cells. 25 (2), 271-278 (2007).
  20. Bax, N. A. M., van Oorschot, A. A. M., et al. In vitro epithelial-to-mesenchymal transformation in human adult epicardial cells is regulated by TGFβ-signaling and WT1. Basic research in cardiology. 106 (5), 829-847 (2011).
  21. Chechi, K., Richard, D. Thermogenic potential and physiological relevance of human epicardial adipose tissue. International Journal of Obesity Supplements. 5 (Suppl 1), S28-S34 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Dronkers, E., Moerkamp, A. T., van Herwaarden, T., Goumans, M., Smits, A. M. The Isolation and Culture of Primary Epicardial Cells Derived from Human Adult and Fetal Heart Specimens. J. Vis. Exp. (134), e57370, doi:10.3791/57370 (2018).

View Video