Eine In-Vivo -Bewertung der Störung der Blut - Hirn-Schranke in einem Rattenmodell des ischämischen Schlaganfalls
Summary
Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, eine hoch reproduzierbare Technik für in Vivo Beurteilung der Blut – Hirn-Schranke Störung in Ratte-Modelle des ischämischen Schlaganfalls liefern.
Abstract
Ischämischen Schlaganfall führt zu Vasogenic zerebrales Ödem und anschließende primäre Hirnverletzung, die durch Zerstörung der Blut – Hirn-Schranke (BBB) vermittelt wird. Ratten mit induzierter ischämischen Schlaganfall wurden gegründet und als in Vivo Modellen verwendet, um die Funktionsfähigkeit der BBB zu untersuchen. Photometrische Erkennung von Evans blau (EB) in den Gehirn-Proben mit ischämischen Verletzungen konnte die Forschung und Entwicklung von neuartigen therapeutischen Modalitäten zuverlässig begründet. Diese Methode liefert reproduzierbare Ergebnisse und gilt in jedem Labor ohne spezielle Ausrüstung. Hier präsentieren wir Ihnen eine visualisierte und technische Leitlinie zur Detektion der Extravasation von EB nach Induktion der ischämische Schlaganfall bei Ratten.
Introduction
Vasogenic Hirnödem wegen Störung der Blut – Hirn-Schranke (BBB) bleibt eine wichtige Komplikation des ischämischen Schlaganfalls und eine wichtige Determinante für die Überlebensrate in der Schlaganfall-Patienten1,2. Die Blut – Hirn-Schranke (BBB), die durch Kapillare endothelial Zellen im Gehirn (BCECs) gebildet und besteht aus verschiedenen neurovaskuläre Komponenten (z. B. enge Kreuzungen unter Perizyten, BCECs, Astroglial und neuronalen Zellen3), bietet eine spezialisierte und dynamische Schnittstelle zwischen dem zentralen Nervensystem (ZNS) und peripheren Durchblutung4,5. Beleidigungen wie Ischämie-Reperfusion Verletzungen könnte stören die funktionelle Integrität der BBB und führen nachträgliche Eindringen von zirkulierenden Leukozyten in das Gehirn Parenchym, die letztlich zerebrale Entzündung und primäre Hirnverletzungen auslösen 6 , 7. Tiermodelle für die genaue Erfassung der Dysfunktion des BBB nach Auftreten eines Schlaganfalls erforderlich sind. Solche Modelle sind von großer Bedeutung für die Untersuchung zugrunde liegenden pathophysiologische Mechanismen und Einführung von neuen neuroprotektive Strategien. In-vitro- Kultur-basierte Zellmodelle der BBB hoch entwickelt und verwendet für molekulare Studie der BBB Physiopathologie8,9,10. In Vivo Tiermodellen, die ischämische Schaden der BBB analog zu menschlichen klinischen Bedingungen zu produzieren, sind jedoch auch in dieser Hinsicht sehr lohnenswert. Quantitativen Nachweis der Extravasation von Evans blau (EB) ist eine gut angenommen und empfindliche Technik, die für die Beurteilung der BBB Integrität und Funktion bei neurodegenerativen Erkrankungen, einschließlich der ischämischen Schlaganfall11, verwendet worden ist 12 , 13 , 14. diese Methode ist kostengünstig, machbar, reproduzierbare und völlig zutreffend in einem experimentellen Labor. Ihre Umsetzung erfordert keine vorgerückte Ausrüstung, wie radioaktive Tracer15 oder Magnetresonanz-Bildgebung (MRI)16, die Voraussetzung für andere Methoden sind. In diesem Artikel zeigen wir umfassend grundlegende technische Prozesse der BBB Bewertung mit EB Extravasation in Ratte-Modelle des ischämischen Schlaganfalls.
Protocol
Representative Results
Discussion
So weit, verschiedene Methoden wie Autoradiographie und Erkennung der radioaktiven Tracern24,25, Immunfluoreszenz-Mikroskopie26,27und EB Extravasation Technik20, 23 wurden verwendet, um die Blut – Hirn-Schranke Schaden zu bewerten. EB-Farbstoff kann sich stark an der Serum-Albumin gebunden und dient als Tracer für vaskuläre Leckagen Erkennung u…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Die Autoren sind dankbar für den Vizekanzler für Forschung der Ardabil Universität der medizinischen Wissenschaften (Ardabil, Iran) für die finanzielle Unterstützung (No zu gewähren: 9607).
Materials
| Isoflurane | Piramal | AWN 34041100 | 20 – 25 °C |
| 2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride (TTC) | Molekula | 31216368 | 4 years |
| Sprague–Dawley rats | Pasture Institute (Tehran, Iran) | 300-350g | |
| Evans Blue | Sigma-Aldrich | 314-13-6 | |
| Trichloroacetic acid | Sigma-Aldrich | 76-03-9 | 2 years |
| Bupivacaine HCl (0.5%) | Delpharm Tours | below 25 °C | |
| Bupernorphine | Exir (Iran) | ||
| Sodium Carbonate | Sigma-Aldrich | 497-19-8 | |
| Sodium chloride | Sigma-Aldrich | 7647-14-5 | |
| Di- Sodium hydrogen phosphate | EMD Millipore | 231-448-7 | |
| Potassium chloride | Sigma-Aldrich | 7447-40-7 | |
| Ethanol | Sigma-Aldrich | 64-17-5 | |
| silicone(Xantopren) | Heraeus | EN ISO 4823 | |
| Activator universal plus | Heraeus | 66037445 | |
| Micro-Dissecting forceps | Stoelting | 52100-41 | |
| Spring Scisors | Stoelting | 52130-00 | |
| Operating Scissors | Roboz | 52140-70 | |
| Brain matrix | Stoelting | 51390 | |
| Anesthesia Machine for Small Animals | | Kent Scientific | SS-01 | |
| Power Lab system | AD Instruments | ML880 | |
| Laser Doppler flowmeter | AD Instruments | ML191 | |
| Heating feed back system | Harvard Appratus | 72-7560 | |
| Vascular micro clamp | FineScience Tools | 18055-03 | |
| Silk 5-0 suture thread | Ethicon | 682G | |
| Ethilon 4-0 suture thread | Ethicon | EH6740G |
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